OC-IΔD86 (Oryzacystatin-IΔD86)基因的原核表达及活性分析

生物工程学报Chin J Biotech2008, July 25; 24(7): 1194-1198 journals.im.ac                                          Chinese Journal of Biotechnology  ISSN 1000-3061  cjb@im.ac© 2008 Institute of Microbiology, CAS & CSM, All rights reserved
OC-IΔD86 (Oryzacystatin-IΔD86)基因的原核表达及活性分析
霍雨猛1, 何启伟2, 赵双宜3, 徐苑芳4
1. 山东农业大学园艺科学与工程学院, 泰安 271018
2. 山东省农业科学院蔬菜研究所, 济南 250100
3. 山东大学生命科学院, 济南 250100
4. 济南北方农艺科学研究所, 济南 250100
摘要: 根据OC-IΔD86基因序列, 设计合成了7条寡核苷酸片段, 通过重叠延伸PCR技术合成了OC-IΔD86基因, 利用设计好的Bam H I/ Xho I酶切位点将OC-IΔD86基因克隆到原核表达载体pet21b中, 在1 mmol/L的
IPTG 诱导后5 h, OC-IΔD86融合基因在大肠杆菌中得到表达, 表达产物处于可溶状态, 其表达量占总蛋白的11.4%, 可溶性蛋白的16.4%; 利用Ni-NTA系统纯化该蛋白并经PEG20000浓缩后, 活性分析表明该蛋白酶抑制剂在体外表现出对木瓜蛋白酶明显的抑制作用。这为转OC-IΔD86基因的抗根结线虫植物基因工程抗体制备, 以及进一步体内的抗根结线虫研究奠定了基础。
关键词:OC-IΔD86, 重叠延伸PCR, 抑制剂, 纯化
Prokaryotic Expression of OC-IΔD86(Oryzacystatin- IΔD86) Gene and Analysis of Its Activity
Yumeng Huo1, Qiwei He 2, Shuangyi Zhao3, and Yuanfang Xu 4
1 College of Horticulture Science and Engineering, Shandong Agricultural University, Tai’an 271018, China
2 Institute of Vegetable, Shandong Academy of Agricultural Sciences, Ji’nan 250100, China
3 School of Life Sciences, Shandong University, Ji’nan 250100, China
4 Jinan North Institute of Agronomy, Ji’nan 250100, China
Abstract: According to the amino acids sequence of OC-IΔD86 gene and Escherichia coli codon usage, we synthesized this gene by overlap extension PCR method with 7 oligonucleotides DNA fragments. The PCR fragment was inserted into pGEM-T-easy vector and the recombined plasmid was named pGEM-T-OC-IΔD86. Two oligonucleotides into which the Bam H I and Xho I sites were introduced were designed and synthesized based on pGEM-T-OC-IΔD86 and pet21b, and the PCR fragment into which the Bam H I and Xho I sites were introduced was obtained. After digesting it with Bam H I and Xho I, OC-IΔD86 gene was cloned into the corresponding sites of pet21b and obtained prokaryotic expression vector pet21b-OC-IΔD86. OC-IΔD86 gene was expressed in E. coli (BL21(DE3)plysS) after IPTG(Isopropyl β-D-1-thiogalactopyranoside) inducement for 5 hours. The fusion protein of OC-IΔD86:6His gene accounted for 11.4% of total protein and 16.4% of soluble protein, which had been successfully purified by Ni-NTA and concentrated by PEG20000. This protein can effectively inhibit papain activity in vitro and may be used in anti-nematode research in vivo.
Received: October 30, 2007; Accepted: January 10, 2008
镰鳍斑纹海豚
Supported by: Shandong Agricultural Improved Variety Project.
Corresponding author: Qiwei He. Tel: +86-531-83179275; Fax: +86-531-88960357; E-mail: hqw1215@sohu
山东省农业良种工程资助。
霍雨猛等: OC-I ΔD86 (Oryzacystatin-I ΔD86)基因的原核表达及活性分析
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Keywords : OC-I ΔD86, overlap extension PCR, inhibitor, purification
半胱氨酸蛋白酶抑制剂对许多害虫的消化酶具有显著的抑制活性, OC-I 为水稻巯基蛋白酶抑制剂, OC-I ΔD86为该抑制剂的突变基因, Urwin 等人的研究发现, OC-I ΔD86对木瓜蛋白酶的抑制效果比OC-I 本
身高13~14倍, 在很多方面要优于丝氨酸蛋白酶抑制剂, 其田间应用可有效的降低根结线虫和胞囊线虫的数量, 具有较好的控制效果[1]
, 是一种很有前途的抗线虫效应物[2]。植物在受伤害或被虫食时均可诱导产生多种蛋白酶抑制剂, 人类的很多食品中均有半胱氨酸蛋白酶抑制剂(例如向日葵、大豆、玉米、水稻)[3−6], 但人类的消化系统中并不存在半胱氨酸蛋白酶, 因此该酶的抑制剂应用于抗植物抗根结线虫和胞囊线虫的研究具有很高的生物安全性, 根据目前的田间试验和安全性试验研究结果, 半胱氨酸蛋白酶抑制剂并没有影响植物生长和产 量[7]; 也没有发现对哺乳动物有毒的证据[8]。已有几例作物转基因的报道可以提高其对线虫的抗性[9,10], 在番茄根毛中表达Oc-I 和其基因突变体Oc-I ΔD86 可以抑制马铃薯胞囊线虫的发育(Globodera pallida ), 在拟南芥菜中表达Oc-I ΔD86可以十分有效的控制其胞囊线虫和根结线虫的大小和数量(Heterodera schachtii  和Meloidogyne incognita ), 单子叶植物植物水稻中的转基因研究也证明, 该抑制剂对线虫(M. incognita )的抗性同样有效。
本文根据GenBank 已公布的OC-I 基因序列, 参照文献中的突变序列和大肠杆菌对密码子的偏好性设计引物, 成功获得了OC-I ΔD86基因, 构建了基于pet21b 的原核表达载体, 并对其表达和活性进行了研究, 为转OC-I ΔD86基因植物基因工程后期研究创造了条件。
1  材料与方法
1.1  质粒、菌株和生化试剂
克隆载体pGEM-T Easy Vector Systems 购自Promega 公司; BL21(DE3)plysS 由天根公司购得; 限制性内切酶以及Taq 酶(Hot Start Taq) 购自TaKaRa 公司; 重结晶木瓜蛋白酶购自Sigma 公司; 木瓜蛋白酶抑制剂(Antipain dihydrochloride, Ultra Pure Grade)购自Amresco 公司; 6×His 纯化柱购自北京韦氏博慧谱科技有限公司; 高保真Pfu(BBI)聚合酶和其他
塑料制油
试剂购自上海生工。
1.2  引物
参照GenBank(AF435976)公布的OCI 序列设计7条引物(表1), 利用重叠PCR 延伸技术, 构建OC-I
ΔD86突变基因。
表1  化学合成Oc-I ΔD86基因的寡核苷酸片段
Table 1 The oligonucleotides fragments for chemical synthesis
of Oc-I ΔD86 gene
No. Sequence (5′→3′)
O1 TA GGATCC AGAAGATGTCGAGCGACGGAGGGCCG
GTGCTTGGCGGCGTCGAGCCGGTGG
O2 CGGCGAAGCGGGCGAGGTCGACGAGGTGGAGGTC GTTCTCGTTCCCCACCGGCTCGACG
O3 CGCCCGCTTCGCCGTCACCGAGCACAACAAGAAG GCCAATTCTCTGCTGGAGTTCGAGA
O4 AGTACAAAGTGCCAGCGACAACTTGCTGCTTCACA CTCACAAGCTTCTCGAACTCCAGC
O5 TGGCACTTTGTACTATTTCACAATTGAGGTGAAGG AAGGGGATGCCAAGAAGCTCTATG
O6 CCTGGAGCTCCTTGAACATCCATGGTTTCTCCCAG ACCTTAGCTTCATAGAGCTTCTTG
O7
TA GGTACC TTAGGCATTTGCACTGGCATCGACAGG CTTGAACTCCTGGAGCTCCTTGA
1.3  OC-I ΔD86基因的合成和克隆
采用重叠延伸PCR 技术[11], 将所合成的各基因片段(O1, O2, O3, O4, O5, O6, O7)进行拼接(图1)。各基因片段合成后稀释到50 pmol/μL, 采用高保真Pfu 聚合酶进行延伸和扩增。第一次延伸反应合成O1-2、O3-4 及O5-6的三组反应中各引物均取1 μL, 10×PCR buffer 2.0 μL, dNTP 2.0 μL, pf u DNA 聚合酶0.2 μL, 加水至20 μL 。第二组反应O1-2和O3-4; O5-6与O7的纯化产物后各取1 μL, 按上述20 μL 反应体系(不加引物)反应3个循环, 然后加上引物O1和O4, 或O5和O7, 继续进行PCR 反应; 反应条件为: 94o C 2 min, [94o C 30s, 45o C 30 s, 72o C 45 s]循环30次, 最后72o C 延10 min, 第三组O1-4和O5-7拼接为O1234567的反应同第二组, 最后进行加A 反应(加A 试剂盒)。
图1  OC-I-ΔD86基因拼结示意图
Fig. 1  Assembly of the OC-I-ΔD86 gene
洗药机1196    ISSN1000-3061  CN11-1998/Q              Chin J Biotech                July 25, 2008  Vol.24  No.7
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PCR 产物经琼脂糖凝胶电泳、片段回收(参  照TaKaRa 公司提供的用户手册)、与pGEM-T Easy Vector 连接(参照Promega 公司提供的用户手  册), 热激法转化大肠杆菌DH10B 菌株, 蓝白斑分离阳性克隆, 其质粒经测序后命名为pGEM-T- OC-I ΔD86。
1.4  原核表达与纯化
将pGEM-T-OC-I ΔD86质粒, 用引物p1: 5′  TAGGA TCCTA TGTCT(g)AGCGACGGAGGGCC 3′; p2 5′GGTCTCGAGGGCATTTGCACTGGCATC 3′扩增并Bam H I 和Xho  I 双酶切后与pet21b 质粒Bam H I 和Xho  I 双酶切后的大片段连接, 转化大肠杆菌TOP10, 获得阳性克隆为pet21b-OC-I ΔD86, 其质粒再转化BL21(DE3)plysS 菌株, 用1mmol/L IPTG 进行诱导表达。对于表达的蛋白分别制备样品进行电泳分析, 用0.1 mol/L 的PBS 缓冲液(pH 6.0)悬浮菌体, 超声波破碎后, 上清液按照6×His 纯化试剂盒的
操作对所表达的蛋白进行纯化。
1.5  活性分析
在磷酸盐缓冲体系中, 将不同表达量的OC- I ΔD86蛋白与一定量的木瓜蛋白酶混匀, 同时设置严格的阴性(pet21b 表达蛋白)和阳性对照(Antipain dihydrochloride), 于37o C 保温30 min, OC-I ΔD86蛋白与木瓜蛋白酶结合, 非竞争性的抑制木瓜蛋白酶的活性, 加入底物BAPA 后, 未被抑制的木瓜蛋白酶可以水解BAPA 并产生对硝基苯胺, 从而导致 410 nm 处的吸光值增加[12,13]。通过测定410 nm 的 OD 值推断剩余木瓜蛋白酶的活性, 进一步确定OC-I ΔD86抑制能力。
2  结果与分析
2.1  pGEM-T-OC-I ΔD86鉴定
将利用重叠延伸技术获得的PCR 产物, 加A 处理后与pGEM-T Easy Vector 连接后转化至大肠杆菌DH10B 菌株中, 获得阳性克隆, Eco R I 酶切鉴定, 对于菌斑1、2 均切出了目的片段。序列测定结果与原初设计序列完全一致, 与OC-I 序列(AF435976)相比, 恰好有3个碱基的缺失, 即编码天冬氨酸的密码子GAC 缺失。证明已经克隆到了OC-I Δ86整个编码序列。
图2  OC-I-ΔD86的拼接(a)和酶切验证(b)
Fig. 2  OC-I-ΔD86 gene assembly and identification
(a) PCR result of OC-I-ΔD86. M: 100 bp ruler; 1, 2: OC-I ΔD86
gene(arrow 328 bp). (b) Eco R I digested of the pGEM-T- OC-I ΔD86, M: DL2000; 1, 2: OC-I ΔD86 gene(arrow 348 bp)
2.2  pet21b-OC-I ΔD86的鉴定
采用OC-I ΔD86特异性PCR 引物(P1: 5′ TAGGATCCTATGTCTAGCGACGGAGGGCC3′, P2: 5′GGTCTCGAGGGCATTTGCACTGGCATC3′), 对pet21b-OC-I ΔD86进行扩增, 获得一条321 bp 的PCR 条带, 证明OC-I ΔD86已经插入pet21b; Bam H I 和Xho  I 双酶切鉴定和测序分析进一步证明了已经构建成功了pet21b-OC-I ΔD86融合表达载体。
图3  pet21b-OC-I ΔD86的PCR 和和酶切验证
Fig. 3  PCR and restriction analysis of pet21b-OC-I ΔD86 (a) PCR result of OC-I ΔD86. M:DL2000; 1:PCR fragment(arrow
321 bp). (b) pet21b-OC-I ΔD86 digestion with Bam H I/Xho  I(arrow
314 bp)
2.3  表达分析
将构建好的融合蛋白表达载体pet21b-OC-I ΔD86, 转入BL21(DE3)plysS, 按照pet 载体原核表达操作手册的程序进行融合表达, 并以pet21b 空质粒以及重组质粒非诱导为对照。由图4, 可以看出, 泳道5为诱导5 h 后, 在14 kD 处有一条诱导表达带, 而空质粒(泳道4、6)和非诱导质粒(泳道3)均无此带, 这一诱导结果与我们预期表达的融合蛋白分子量13.707 kD 较为接近。从泳道7、8、9可以看出, 所表达的蛋白处于可溶性状态, 并未在沉淀中出现。光密度扫描分析表明, 所表达的蛋白占细菌总蛋白的11.4%, 占可溶性蛋白的16.4%。
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图4  pet21b-OC-I ΔD86融合表达产物SDS-PAGE 分析
Fig. 4  SDS-PAGE analysis for the expression of OC-I ΔD86
1: pre-induction for E. coli  (BL21(DE3)plysS) containing pet21b- OC-I ΔD86; 2: pre-induction for E. coli  (BL21(DE3)plysS) containing pet21b; 3: 5 hours of incubation of (BL21(DE3)plysS containing pet21b-OC-I ΔD86) at 37o C without inducement; 4: 5 hours of incubation of incubanation of (BL21(DE3)plysS containing pet21b at 37o C without inducement; 5,7: the total protein of 5 hours induction of BL21 (DE3) plysS containing pet21b- OC-I ΔD86; 6: the total protein of 5 hours induction of BL21 (DE3) plysS containing pet21b; 8: the soluble fraction of BL21 (DE3) plysS containing pet21b -OC-I ΔD86 after 5 hours induction; 9: the insoluble fraction of BL21 (DE3) plysS containing pet21b-OC- I ΔD86 after 5 hours induction; M: low molecular weight protein marker; Arrow: 13.7 kD
2.4  纯化
用PBS 缓冲液洗脱5个床体积(图5 lane 3),  20 mmol/L 咪唑分3次洗脱5个体积(图5 lane 5,6,7), 400 mmol/L 咪唑洗下目的蛋白(图5 lane 8); 蛋白纯化后用0.1 mol/L 的PBS 缓冲液进行透析除去咪唑, PEG20000浓缩(图5 lane 9)。
2.5  活性分析
由图6可以看出, 无论是粗提的pet21b-OC- I ΔD86总蛋白、OC-I ΔD86蛋白的6×His 纯化蛋白还是商品化的木瓜蛋白酶抑制剂(Antipain dihydrochloride)对木瓜蛋白酶均具有有效的抑制效果, 而对照质粒(pet21b)的总蛋白不能抑制该酶活性。对于具有抑制效果的三种制品而言, 其抑制效果随着浓度的增加而增加, 具有相同的变化趋势, 其剩余活力均逐渐降低; 在三种制品中, 阳性对照(Antipain dihydrochloride)对于木瓜蛋白酶的抑制效果最好, 其次是OC-I ΔD86蛋白的6×His 纯化制品, 抑制效果最差的是pet21b-OC-I ΔD86总蛋白。关于其原因我们将在讨论3.1中进行论述。
图5  pet21b-OC-I ΔD86融合表达产物SDS-PAGE 分析
Fig. 5  SDS-PAGE analysis for the purified of OC-I ΔD86
1: the total soluble protein of pet21b-OC-I ΔD86; 2: the total Insoluble protein of pet21b-OC-I ΔD86; 3: PBS buffer eluate; 4: flow-through; 5: the first 20 mmol/L imidazole eluate; 6: the second 20 mmol/L imidazole eluate; 7: the third 20 mmol/L imidazole eluate; 8: the 400 mmol/L imidazole eluate; 9: concentrated by PEG20000; M:
low molecular weight protein marker; Arrow: 13.7 kD
−■−: OC-I ΔD86; −▲−: Total protein of pet21b; −●−: Total protein of pet21b oC- I ΔD86
图6  OC-I ΔD86对木瓜蛋白酶的抑制曲线
Fig. 6  Papain inhibitory curve by OC-I ΔD86
3  讨论
3.1  关于抗根结线虫效应物的评价及活性研究
根结线虫属于植物寄生性线虫活体寄生, 离开了植物, 根结线虫将很难取食而死亡; 目前对转基因植物的抗根结线虫研究又受到许多植物遗传转化体系尚不成熟的制约。因此对抗线虫效应物的评价主要是对C. elegant 进行活体试验和对木瓜蛋白酶进行活性测定试验; C. elegant 虽是线虫但不是植物寄生性根结线虫, 木瓜蛋白酶属于半胱氨酸蛋白酶酶类, 与根结线虫体内的消化酶属于同一酶类, 用此酶作为抗根结线虫效应物的评价标准可以快捷、方便、省时的对抗根结线虫效应物作出评价。在前人的研究中, 已有用此酶作为抗线虫效应物评价标准之一的报道, 故我们采用了此酶做活性分析试验[1]。
高靖海活性分析试验表明, 阳性对照Antipain
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Dihydrochloride 对于木瓜蛋白酶的抑制效果高于我们制备并初步纯化的OC-I ΔD86蛋白, 其原因可能为: (1) 抑制剂纯度上的差异, 阳性对照木瓜蛋白酶抑制剂(Antipain dihydrochloride)为商品化的超纯制品, 而OC-I ΔD86蛋白仅为初步纯化的蛋白, 其纯度低于Antipain dihydrochloride, 精制后其抑制效果有望提高。(2) 抑制机理的差异, 阳性对照木瓜蛋白酶抑制剂(Antipain dihydrochloride)为一种广谱性的蛋白酶抑制剂, 不但可以抑制木瓜蛋白酶的活性, 还可以抑制组蛋白A 、组蛋白B 、以及丝氨酸蛋白酶类的活性[14,15]; 而OC-I ΔD86蛋白抑制半胱氨酸蛋白酶的活性, 专一程度较高, 靶标更明确, 其抑制效果的差异可能与机理上存在的差异有关。
3.2  重叠PCR 技术的应用
我们采用重叠PCR 技术[11], 按照大肠杆菌偏好的密码子, 获得了预期的OC-I ΔD86编码基因, 并且成功的引入了突变和酶切位点, 为基因的克隆和表达提供了方便。在拼接过程中, 由于可能出现错配, 应尽量减少PCR 的次数, 并采用高保真的Taq 酶, 同时所合成DNA 的长度应适中, 这样可以减少拼接的次数和长DNA 片段合成中可能出现的错误。因而更有利于寡核苷酸片段的正确组装。在重叠引物设计时, 重叠区域一般应在20 bp 左右, 实验发现重叠14 bp 也可以成功获得目的片段, 对称拼接可更有效的实现基因的拼接。
3.3  关于PET 载体构建策略
关于载体构建, 开始表达采用了pet21b 载体Nde I 切点与目的基因相连, 进行表达结果未得预期大小的蛋白, 分析发现目的蛋白编码氨基酸序列存在大量的大肠杆菌稀有密码子, 对于原核表达极为不利[16], 进行了密码子优化, 将引物O1 第二个密码子之(G)突变为T, 目的蛋白获得了有效表达, 并具有很高的抑制活性。
致谢  pet21b 由刘春香博士后惠赠。
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