GB 8588─88 渔业资源基本术语—第一部分
1 仔鱼prelarva: 从卵膜内孵出后靠卵黄供应营养的鱼类早期发育个体。 2 稚鱼postlarva: 卵黄吸收完毕，开始主动掇取外界食饵，尚未出现性分化，正处于变态期的鱼类早期发育个体。
3 幼鱼juvenile: 完成了变态并具有与成鱼相同的形态特征，自性腺开始发育至性成熟阶段的鱼类个体。
配合力4 成鱼adult: 性成熟的鱼类个体。
5 生长率growth rate: 水生动物个体在一定时期内体长（或体重）的增量与期初体长（或体重）的比值。
6 生长系数instantaneous rate of growth: 水生动物个体体长（或体重）的生长速度（d L/d t或d W/d t）和该个体当时的体长（或体重）之比值，通常以符号G表示，与瞬时生长率同义。
7 渐近体长asymptotic length: 水生动物的生长参数，体长生长的理论渐近值。以符号L∞表示。
8 死亡率mortality rate: 水生动物种在一定时期内个体减少的数量与期初该种个体总数量之比值。因捕捞所造成的死亡率称捕捞死亡率；因捕捞以外的自然原因所造成的死亡率称自然死亡率。
9 死亡系数instantaneous mortality rate: 水生动物种的个体数量减少速度（d N/d t）和该种当时的个体数量N之比值。以符号Z表示。
10 残存率survival rate: 在某一定时期（通常为一年）的终止时和起始时水生动物种中个体数量之比值。以符号S表示。
11 世代generation: 在同年或同一繁殖期内出生的某水生动物种个体之总称。
12 渔获量catch: 在天然水域中所采捕的渔业生物的重量。
13 渔捞记录fishing record: 捕捞作业的位置、时间、渔获物种类、渔获量和海洋环境因子等与生产活动有关的记实。
14 捕捞过度overfishing: 因捕捞量超过渔业资源再生产量，使平均单位捕捞力量渔获量（CPUE）和总渔获量都持续下降。
15 禁渔期closed season: 在规定水域内禁止对某种渔业资源的捕捞或某类渔具作业的时期。
16 禁渔区closed area: 全面禁止一切捕捞生产或某类渔具作业的水域。
17 幼鱼保护区juvenile protection area：为禁止一切损害幼鱼的作业而划定的水域。
18 开捕期opening date：在规定水域内，准许开始某种渔业生产或某类渔具作业的法定日期。
19 人工鱼礁artificial fish reef: 改善水域生态环境，诱集鱼类栖息或繁殖的水中固定设施。
20 渔业资源评估fish stock assessment: 评价捕捞和环境因素对渔业资源种数量和质量的影响程度。
21 渔业管理fishery management: 渔业上投入和产出关系间的决策和实施。
杨丽娟近况22 渔业管理目标objective of fishery management: 通过控制捕捞活动，保护和改良环境，从渔业资源获得某种预期的社会和经济效益。
23 限额分配制quota system: 将某海区或某鱼种的允许捕捞量按一定的原则定量分配给各生产单位（国家、渔业公司或渔船）的分配办法。
24 捕捞能力指数power factor: 某渔船（或渔具）与选定的标准渔船（或标准渔具）在相同渔业资源密度和相同的渔场条件下单位时间内的渔获量之比值。
25 捕捞能力fishing power: 某种渔船（或渔具）的相对捕鱼效率，以参数“捕捞能力指数”计量。
26 捕捞强度fishing intensity：在单位时间、单位面积水域内投入作业的标准捕捞力量。
27 捕捞力量fishing effort: 在特定时期内（通常为一年或一汛期）投入某渔业的标准作业单位数。用“标准作业小时”作单位，以符号f表示。
28 单位捕捞力量渔获量catch per unit effort：单位捕捞力量的平均渔获量，通常用作资源密度的指标。以符号CPUE表示。
29 可捕系数catchability coefficient：单位捕捞力量所能捕获某渔业资源种的数量占该种总数量的比值。以符号q表示。
30 补充体recruitment stock: 新参加捕捞体的那部分渔业资源。
31 渔业水域fisheries area：人类从事水产捕捞、养殖和增殖等生产活动的水域。
32 资源增殖stock enhancememt：用人工的方法使渔业资源增加数量，提高质量的措施。
33 丰满度系数coefficient of fatness: 鱼体肥瘦的指标，以符号k表示。以公式
k=100W/L3计算，式中W为鱼体重量（g），L为鱼体长度（cm）。
34 生殖力fecundity: 雌鱼在一个繁殖季节内的产卵数量。
35 鱼体长度length of fish body
35.1 全长total length: 吻端至尾鳍末端的距离，鳎类等鱼类以此代表鱼体长度。
35.2 体长body length: 吻端至尾椎骨末端的距离，石首鱼科、鲷科等鱼类以此代表鱼体长度。
35.3 叉长fork length: 自吻端至尾叉最深点的距离，科、鲱科等鱼类以此代表鱼体长度。
35.4 肛长anal length: 吻端至肛门前缘的距离，鲨鱼、海鳗、带鱼等鱼类以此代表鱼体长度。
35.5 体盘长disc length: 自吻端至胸鳍基底的距离，鳐、等鱼类以此代表鱼体长度。
36 暖水种warm water species: 生长、生殖适温高于20℃，自然分布区月平均水温高于15℃的水生动物。暖水种包括亚热带种和热带种，前者适温范围为20～25℃，后者适温范围高于25℃。
37 温水种temperate water species: 生长、生殖适温范围为4～20℃，自然分布区月平均水温为0～25℃间的水生动物。温水种包括冷温种和暖温种，前者适温范围为4～12℃，后者为12～20℃。
38 冷水种cold water species: 生长、生殖适温低于4℃，自然分布区月平均水温不高于10 ℃水域的水生动物。冷水种包括寒带种和亚寒带种，前者适温为0℃左右，后者为0～4℃。
39 底层鱼类demersal fishes: 大部分时间生活在陆架区底层或近底层的鱼类。
40 上层鱼类pelagic fishes: 栖息在海洋表层或上层的鱼类，它和底层鱼类的区别在于它进行明显的远距离洄游。
41 中层鱼类mesopelagic fishes：栖息在外海和大洋的200至 1000 m水层内的鱼类。
42 深海鱼类abyssopelagic fishes: 栖息在大洋水深1000米以下深海底带（不包括深海床）的鱼类。
43 游乐渔业recreational fishery：以娱乐为目的的渔业，因多数用竿钓，故亦称游钓。
44 多鱼种渔业multispecies fishery:
同时以两种或两种以上鱼类种为捕捞对象的渔业。
45 开发率rate of exploitation：鱼类种在特定时期内被捕捞的数量和期初该种总数量之比值。
GB/T 15805.1—1995 淡水鱼类检疫方法—第一部分
1 主题内容与适用范围
引纸绳
本标准规定了淡水鱼类传染性胰坏死病（IPN）、传染性造血器官坏死病（IHN）、病毒性出血性败血症（VHS）、斑点叉尾病毒病（CCVD）、鲤春病毒病（SVC）、疖疮病、弧菌病和昏眩病的检疫方法。 本标准适用于口岸进口国外淡水鱼类的检疫，也适用于我国国内地区间同种疾病的检疫。
2 设备和器械
检疫中所用设备和器械除根据各个学科有特殊要求外，均指鱼病实验室常用的设备和器械。
3 传染性胰坏死病（Infectious Pancreatic Necrosis，简称IPN）
该病病原属双链RNA病毒。本病流行于美洲、欧洲和亚洲。
主要感染对象是鱼龄6个月以内的虹鳟、美洲红点鲑等鲑鳟鱼类。6个月以上的鱼可以是无症状的带病毒鱼，鱼卵也可携带病毒。
3.1 临床检查：
3.1.1 活动情况：病鱼游动失调，常作垂直回转游动，不久便沉入底部死亡。从开始回转游动到死亡的时间为1～2h。在有水流的饲养池中可见失去游泳能力的鱼随水流贴在排水口的拦网上。
3.1.2 外部检查：病鱼体暗黑，眼球突出，腹部膨胀。腹壁和鳍基部有出血现象。病鱼多从肛门排出线状粘液样粪便。
3.1.3 剖检：除幽门垂出血外，肝脏和脾脏显著褪，通常消化道内无食物，胃和肠前部积有乳白粘液而肿胀。
3.2 实验室检验
3.2.1 病毒分离：
细胞准备： a. 设备及器械：无菌室、超净工作台、恒温培养箱、低温冰箱（－30℃）、液氮罐、赛氏漏斗和0.3，0.45μm混合纤维素酯微孔滤膜、细胞培养瓶、白橡皮塞等。 b.培养基及试剂：细胞生长液、胰酶-EDTA（乙二胺四乙酸）混合消化液、小牛血清、L-谷氨酰胺、碳酸氢钠、酒精。
细胞生长液等配制方法见附录A（补充件）。
c. 接种前的细胞准备：传染性胰坏死病毒用CHSE-214、RTG-2细胞分离。CHSE-214、RTG-2最适培养温度分别为21℃和20℃。选择生长良好，形成单层的细胞培养物，倒去生长液加入适量胰酶-ED
TA混合消化液消化，然后补加生长液，按1∶2或1∶3 的分种率将原瓶消化的细胞分装入2个或3个培养瓶中，置适温中继续培养，当单层致密度达80％左右，即可用于病毒接种。
a. 设备及器械：同，另增加冷冻离心机和1、2mL规格的移液管。
b. 常用的溶液：细胞维持液、磷酸缓冲盐水[配制方法见附录A（补充件）]。
c.取样：有症状的鱼，取10尾以上样品作病毒分离用。无症状的鱼，取60尾以上样品作病毒分离用。对鱼卵，取60～100粒样品作病毒分离用。对于少量进出口成鱼，从尾动脉抽1～2mL血液，其血浆作病毒分离用，血清作抗体检测。
d. 样品处理：较大的鱼取其肾、肝、脾。仔、稚鱼取鱼体全部，若是带卵黄囊的鱼应去掉卵黄囊。鱼卵则取全卵。
将上述待检样品称重，加磷酸缓冲盐水（PBS）匀浆，并稀释成10-1，离心30min（4 000r/min），弃去沉淀物，将上清液通过0.45μm微孔滤膜除菌，然后再用PBS进行10
倍稀释，即成样品。血液样品置于常温下1h后，再放在4℃下12h以上，以析出血清。然后低速离心，其沉淀作待检样品，按上述方法制备样品液，血清作中和试验。
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元钢e. 接种细胞：倒出细胞瓶中的培养液，然后接种样品液，接种量为维持液的10-1，吸附1h后，加细胞维持液培养，同时设对照。
病毒培养：传染性胰坏死病病毒（IPNV）培养温度是15～20℃。在培养过程中每日观察细胞变化情况，观察7d结束。
结果观察：若接种样品含有病毒，培养2～5d后，即出现明显的细胞致病变作用（CPE），主要特征为细胞崩解，细胞单层破坏。收集阳性细胞悬液，冻融一次后，低速离心除去细胞碎片，上清液作病毒鉴定用。若接种后7d仍未见CPE，则判断为阴性结果。若7d内出现可疑CPE现象，则需将该瓶细胞培养液作为接种材料再接种一次，以判断是否有CPE。蝶形运算
3.2.2 病毒鉴定：
中和试验Ⅰ（固定血清用量──稀释病毒法）
本试验用于鉴定在细胞培养中出现了CPE的样品是否为IPNV。
试验准备： a.细胞 RTG-2细胞培养于96孔微量细胞培养板上。
b. 病毒用标准IPNV毒株，传代后制成病毒悬液。
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