Ca法转染-制备慢病毒和感染细胞protocol(完整版)

***Ca法转染-制备慢病毒和感染细胞***
实验准备:
2×HBS(ul)配方:8g NaCl0.14g Na2HPO4•2H2O0.2g Na2HPO4•7H2O6.5g HEPS,调节pH7.0 最终溶于500ml双蒸水中,4℃保存。
2MCacl中央党校2配方:87.6g Cacl2·6H2O溶于200ml双蒸水中,0.22μm滤器过滤除菌,4℃保存,不可冻牢凝固。
^^^Day 1
昂达vi40精英版1、在转染前24小时,在10cm dish中(面积约为78.5cm2)中铺3.6 x10293T细胞,于9ml DMEMhyclone高糖)+10%FBS+PS,待次日细胞汇合度达到70%
^^^Day 2
2、早上10:00转染,此时转染前无需换液。
3、混合包装质粒和表达质粒如下:
Use
pCMV△R 
10(ug)
PCMV.VSV.G
10(ug)
表达质粒   
20(ug)
2M CaCl
靖江市城北小学
75 (ul)
无菌H2O   
适量ul
无菌2×HBS 
600(ul)
注意:先将各个组分加到离心管中,最后将2×HBS滴加到离心管中,防止局部浓度过高,
混合均匀。
4、将混合好的复合物RT 5min,加入到细胞培养液中。
5、晚上500换液,将培养液换成新鲜的6ml DMEM+10%FBS+PS
^^^Day 3
6、观察24h荧光。
^^^Day 4
7、早上1000观察48h荧光,此时可以收集病毒,也可以到下午300-400再收集病毒(高压离心管和EP)
Ooo感染细胞
^^^Day 1天原杯化学竞赛辅导
1、感染细胞前,消化目的细胞,此时培养液用1640+10FBS+PS\DMEM +10%FBS+PS
铺种在6孔板中,1 x105 cell/well使感染前细胞汇合到20-30%375%CO2孵箱过夜。
^^^Day 2
芳烃抽提2、感染时,37融化病毒储存液(病毒也需慢冻速溶)弃去细胞培养液,加入1000ul病毒液+1000ul 1640\DMEM+10%FBS+PS+2ul Polybrene (10mg/ml) [Polybrene:培养液=1:1000](Polybrene: 聚凝胺,又名为溴化己二甲铵(hexadimethrine bromide),是一种阳离子聚合物。细胞培养中主要用于提高逆转录病毒感染细胞的效率,通过中和细胞表面的唾液酸和病毒粒子之间的电荷排斥实现。聚凝胺在蛋白质测序中也有一定作用。具有可高温高压灭菌特性。用双蒸水配制,20储存,注意分装,反复冻融三次以上将大大降低效果)
3、将细胞放入冶金自动化375%CO2孵箱,4-5h后换液2Ml 1640\DMEM +10%FBS+PS。过夜。
^^^Day 3
4、早上换2ml新鲜的1640\DMEM +10%FBS+PS
^^^Day 4
5、晚上观察48h荧光率。(由于慢病毒表达过程比较慢,到48h才能观察到荧光)开始药筛。
6、药筛:用嘌呤霉素(puro
Puro:储存浓度:10mg\ml(20度保存),使用浓度:2ug\ml
7、药筛48h后观察48h荧光率,之后可以用2ug\ml维持培养一周后改用1ug\ml puro的培养基培养。

本文发布于:2024-09-20 17:25:54,感谢您对本站的认可!

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标签:细胞   病毒   离心管   转染   培养液
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