LPS对天然免疫细胞能量代谢影响的研究进展

doi:10.3969/j.issn.1000⁃484X.2021.05.023
LPS 对天然免疫细胞能量代谢影响的研究进展①
龙全梅 张天琦 王建发 武 瑞 连 帅 
(黑龙江八一农垦大学动物科技学院,黑龙江省牛病防制重点实验室,大庆163319)
  中图分类号 R392.12  文献标志码 A  文章编号 1000⁃484X (2021)05⁃0630⁃05
①本文为国家自然科学资金面上项目(31772698);黑龙江省自然科学基金面上项目(C2016045)㊂
经济与社会发展研究
作者简介:龙全梅,女,在读硕士,主要从事奶牛乳腺免疫代谢学方
面的研究,E⁃mail:1145893806@qq㊂
镜泊湖的黄昏
通信作者及指导教师:王建发,男,博士,副教授,硕士生导师,主要
从事奶牛乳腺健康管理方面的研究,E⁃mail:wjflw@sina㊂
[摘 要] 血液和组织中参与天然免疫应答的细胞有单核细胞㊁巨噬细胞㊁淋巴细胞及中性粒细胞等,免
疫功能受抗原㊁细胞因子㊁能量代谢等多种因素影响㊂脂多糖(LPS)是革兰氏阴性菌细胞壁的主要成分,可引发天然免疫应答及能量代谢重编程㊂免疫细胞对代谢途径的选择会进一步调控其免疫功能,细胞免疫功能变化对机体稳态维持至关重要,对糖尿病㊁心血管疾病等疾病的发生㊁发展㊁转归及预后具有重要意义㊂本文对LPS 刺激下参与天然免疫应答的细胞和能量代谢间的联系进行梳理,以期选择更合理的免疫代谢调控方案维持人和动物天然免疫稳态㊂
[关键词] LPS;天然免疫细胞;能量代谢途径;免疫代谢
Progress of lipopolysaccharide⁃induced metabolic reprogramming in innate immune cells球面投影
LONG Quan⁃Mei ,ZHANG Tian⁃Qi ,WANG Jian⁃Fa ,WU Rui ,LIAN Shuai .College of Animal Science and Veterinary Medicine ,Heilongjiang Bayi Agricultural University ,Heilongjiang Provincial Key Laboratory of Prevention and Control of Bovine Diseases ,Daqing 163319,China
[Abstract ] Immune cells,including monocytes,macrophages,neutrophils and lymphoid cells in blood or in tissues immunity,are
分数阶傅立叶变换participates in inate immune response pathogens or cytokines and energy metabolism.Lipopolysaccharide (LPS)is major component of cell wall of gram⁃negative bacteria,whic
h can cause innate immune response and reprogramming of energy metabolism,Selection of
metabolic pathways by immune cells will further regulate their immune function,and change of cellular immune function is crucial to maintenance of homeostasis,and is of great significance for occurrence,development,outcome and prognosis of diabetes,
cardiovascular disease and other diseases.In this paper,relationship between cells and energy metabolism involved in innate immune response under LPS stimulation was combed in order to select a more reasonable regulation scheme of immune metabolism to ensure innate immune homeostasis of human and animal.
[Key words ] LPS;Innate immune cell;Energy metabolism pathway;Immunometabolism
  天然免疫应答是机体最早也是发生最快的免疫应答,在机体抗感染中具有重要作用㊂抗原穿越皮肤㊁黏膜等第一道防线进入组织后,首先激活天然免疫细胞,启动非特异免疫反应,之后引发由淋巴细胞介导的特异性免疫应答㊂能量代谢可塑性对免疫细胞功能起重要作用,免疫细胞依赖氧化磷酸化代谢和糖酵解代谢以及磷酸戊糖途径代谢等代谢平衡维持生理状态下细胞免疫稳态㊂癌症㊁肥胖㊁高血脂㊁
细菌感染等代谢性疾病中,细菌细胞壁降解,其主要成分LPS 大量进入血液循环,激活免疫细胞,刺激机体启动免疫反应[1]㊂血液循环中LPS 浓度过高时,则诱导过度的免疫效应导致机体损伤[2⁃3]㊂LPS 可引发天然免疫细胞代谢重编程从而激活细胞,免疫细胞氧化磷酸化水平降低而选择糖酵解㊁磷酸戊糖途径及脂肪酸代谢㊂糖酵解途径仅能产生2分子ATP,而氧化磷酸化可产生至少32分子ATP,LPS 刺激下免疫细胞选择利用低产能的糖酵解途径[4]㊂LPS 刺激下天然免疫细胞选择不同的能量代谢途径从而发挥不同的免疫作用,能量代谢途径的可塑性与免疫功能的可塑性密切相关㊂本文对LPS 刺激下天然免疫细胞和能量代谢之间的关系进行梳理,选择更合理的免疫代谢调控方案以维持人和动物的天然免疫稳态㊂
1 LPS抑制天然免疫细胞氧化磷酸化过程LPS可识别天然免疫细胞表面Toll样受体4 (TLR4),通过TLR4信号通路抑制呼吸酶活性,损伤细胞呼吸链,导致催化三羧酸(tricarboxylic acid, TCA)循环的酶活性降低[5⁃6]㊂TCA循环与呼吸链偶联,影响NADH㊁FADH2生成,无法通过呼吸链将电子传递给氧原子,线粒体膜两侧质子梯度被破坏,从而抑制氧化磷酸化合成ATP㊂由于氧化磷酸化代谢为底物水平磷酸化和呼吸链电子传递链偶联生成ATP的过程,是机体供能的主要方式,因此TCA循环物蓄积及呼吸链抑制均可影响免疫细胞功能[7]㊂体外培养单核细胞经LPS刺激,TCA循环中异柠檬酸裂解酶和琥珀酸脱氢酶活性降低,柠檬酸盐和琥珀酸盐蓄积,蓄积的柠檬酸盐在免疫应答基因1 (IRG1)作用下衍生为代谢产物衣康酸,起直接杀菌作用[8]㊂琥珀酸盐则通过抑制脯氨酰羟化酶(proline hydroxylose,P
HO)诱导缺氧诱导因子⁃1α(hypoxia⁃in ducible faction⁃1α,HIF⁃1α)及核因子⁃κB(NF⁃κB)产生IL⁃1β和TNF⁃α引发炎症反应[9⁃10]㊂HIF⁃1α是糖酵解途径的关键激酶,氧正常条件下由PHO催化降解,PHO活性降低则减少HIF⁃1α降解[3]㊂LPS刺激下,单核细胞耗氧率下降,电子传递㊁H+传递受阻,氧利用率下降㊂电子传递链中的NADH⁃Q还原酶复合体Ⅰ㊁琥珀酸⁃Q还原酶复合体Ⅱ及细胞素还原酶复合体㊁细胞素氧化酶复合体等酶活性降低,细胞氧化磷酸化途径受到抑制㊂糖酵解生成的丙酮酸无法进入TCA循环彻底氧化生成ATP,由于细胞对能量的需求导致糖酵解代谢代偿性增强㊂低浓度LPS并不会导致氧化磷酸化减少[7,11⁃12]㊂
LPS刺激树突状细胞(DC)后,其代谢状态发生改变㊂DC中丙酮酸无法彻底氧化,而是生成乳酸分泌到体外或进入脂肪酸的β氧化途径或导致柠檬酸盐蓄积,柠檬酸盐经穿梭作用从线粒体运出,进入胞液用于脂肪酸合成㊂脂肪酸可用于DC中高尔基体和内质网合成和蛋白分泌,对DC的抗原呈递起重要作用[13]㊂BUCK等[14]研究表明LPS刺激T 细胞代谢重塑过程可能导致线粒体大小改变,线粒体嵴紧缩有利于氧化磷酸化和脂肪酸氧化,而线粒体嵴松动,线粒体形态膨胀,影响电子传递链的传输效率,影响TCA循环并导致ATP产生减少(图1)㊂2 LPS促进天然免疫细胞糖酵解
天然免疫细胞激活需要大量的生物能量及合成细胞分泌物所需的底物,能量和底物对于天然免疫细胞合成免疫相关分子㊁发挥免疫作用不可或缺㊂LPS刺激下氧化磷酸化途径受到抑制,代偿性糖酵解途径可快速产生ATP和免疫细胞激活所需底物㊂因此,免疫细胞通过迅速增强糖酵解代谢,部分补偿氧
化磷酸化抑制所缺失的能量和底物[7⁃9]㊂
体外培养单核细胞经LPS刺激后可激活PI3K⁃Akt⁃mTORC2信号通路,细胞膜上的磷脂酰肌醇激酶(PI3K)募集蛋白激酶B(Akt),促进雷帕霉素靶蛋白复合体(mTORC2)磷酸化[15⁃16]㊂Akt在调控免疫细胞功能方面发挥重要作用,包括细胞代谢㊁生长㊁增殖㊁转录及蛋白质合成等㊂Akt促进诱导型一氧化氮(iNOs)生成,iNOs从精氨酸中快速产生一氧化氮(NO)促进糖酵解途径活化㊂缺氧依赖的mTOR磷酸化通过减少HIF⁃1α降解促进糖酵解[17]㊂缺乏HIF⁃1α的细胞中LPS仍能诱导糖酵解的关键激酶磷酸果糖激酶⁃2,提示除HIF⁃1α外,其他分子也参与促进糖酵解㊂LPS刺激下,DC以HIF 非依赖的方式激活TANK结合激酶1(TBK1)或导致NF⁃κB激酶ɛ(IKKɛ)的抑制剂降解,而非通过PI3K/mTORC2信号通路直接激活Akt促进糖酵解代谢发挥抗原呈递功能㊂
LPS刺激巨噬细胞可降低丙酮酸激酶同工酶M2(PKM2)活性,低活性的PKM2可促进乳酸生成,以二聚体形式与HIF⁃1α作用,促进HIF⁃1α依赖基因表达进而增强糖酵解代谢[18]㊂当HIF被抑制时,高活性PKM2以四聚体形式诱导M1型巨噬细胞转化为M2型[9,19]㊂因此,代谢控制免疫细胞表型并进一步影响其炎症调节功能㊂甘油醛⁃3⁃磷酸脱氢酶(GAPDH)是糖酵解酶,与IFN⁃γmRNA结合并抑制其翻译㊂LPS刺激下,IFN⁃γmRNA与GAPDH解离,进入翻译过程,GAPDH促进糖酵解产生ATP,因此,GAPDH可控制免疫细胞IFN⁃γ产生,进一步证明细胞代谢与炎症作用密切相关[20⁃21]
图1 LPS刺激天然免疫细胞后的氧化磷酸化代谢机制图Fig.1 Oxidative phosphorylation metabolic mechanism diagram after LPS stimulates natural imm⁃
une cells
3 LPS调控天然免疫细胞脂肪酸代谢途径
脂肪酸代谢对免疫应激和免疫防御具有重要作用㊂由脂肪酸氧化所产生的ATP数量高于上述2种糖氧化途径[22]㊂LPS刺激下,免疫细胞氧化磷酸化受抑制㊁糖酵解增强㊂但在某些疾病中,如化脓性
脑膜炎㊁胸腔积液或肿瘤等,通常伴有葡萄糖浓度下降,葡萄糖供给量处于负平衡,导致免疫反应无法充分进行[23]㊂
细胞过度糖酵解,会导致底物耗尽而加快凋亡,LPS刺激下,低糖供应使单核细胞代谢过程转向脂肪酸氧化[23]㊂因此,细胞对脂肪酸代谢的依赖性增加,总AMP数增加,AMP/ATP值上升,激活腺苷酸活化的蛋白激酶(AMPK),启动多种分解代谢途径,如促进葡萄糖和脂肪酸摄取㊁氧化㊁糖酵解和细胞自噬㊁抑制脂肪合成等[24⁃25]㊂AMPK能够促进AMP分解代谢,且在促进糖酵解㊁脂肪酸氧化等ATP产生的代谢同时抑制ATP消耗,但AMPK持续激活导致细胞能量代谢过程紊乱发生自噬[26]㊂LPS刺激下氧化磷酸化抑制导致蓄积的柠檬酸进入胞液,胞液中的柠檬酸裂解酶催化裂解为乙酰辅酶A和草酰乙酸㊂乙酰辅酶A进入脂肪酸合成途径,而草酰乙酸在苹果酸脱氢酶作用下生成苹果酸重新进入线粒体,或在苹果酸酶作用下生成丙酮酸,产生少量NADPH用于脂肪酸合成㊂LPS刺激下,糖酵解受限,免疫细胞选择脂肪酸代谢维持免疫功能㊂但AMPK持续激活表明细胞转向脂肪酸代谢是缺糖保护机制,但并不能完全弥补细胞能量代谢㊂
效应T细胞在LPS刺激下通过促进脂肪酸合成用于生长及炎症因子分泌,而记忆性T细胞生长则由于脂
肪酸氧化抑制而长期滞留于机体[27⁃28]㊂LPS刺激下,由于氧化磷酸化受限,效应T细胞促进糖酵解快速产生ATP发挥促炎作用㊂记忆T细胞由于其免疫效应发生在效应T细胞之后,故其在被LPS激活时不需要依靠高速率的糖酵解产生ATP,而是促进脂肪酸代谢维持其长期促炎作用,与DC中的代谢选择类似㊂由于DC为非增殖性细胞,LPS刺激下,由糖酵解快速产生ATP支持DC激活,而后期(9h后)DC持续激活产生ATP和底物依赖于脂肪酸氧化和脂肪酸于合成[29]㊂LPS刺激下,M1型巨噬细胞氧化磷酸化受抑制,使其依赖于糖酵解快速发挥作用,而M2型巨噬细胞并不产生ROS,呼吸链完整,且磷酸戊糖途径也受限,使M2型巨噬细胞能够更好地发挥炎症抑制作用,阻断氧化磷酸化促使M2型向M1型转化[30]㊂此外,过氧化物酶体增殖剂激活受体(PPARs)是核激素受体家族中的配体激活受体,
LPS刺激下PPARs活性升高,正向调节脂肪酸转运蛋白和肉毒碱棕榈酰转移酶1β表达,促进脂肪酸β氧化抑制脂质合成[27]㊂
4 LPS调控天然免疫细胞磷酸戊糖代谢途径
  磷酸戊糖途径是糖代谢的支路,LPS刺激下,磷酸戊糖代谢增强,生成的中间体可进入TCA循环等生成能量,核糖⁃5⁃磷酸可合成核苷酸辅酶㊁核糖核苷酸及脱氧核苷酸用于细胞DNA及RNA合成㊂磷酸戊糖途径的中间代谢产物还原型辅酶Ⅱ(NADPH)可作为氢供体参与脂肪酸㊁胆固醇和类固醇激素㊁核苷酸及脂类的生物合成,可作为谷胱甘肽还原酶辅酶[31]㊂
LPS刺激下M1型巨噬细胞依赖NADPH在呼吸爆发期间产生ROS发挥杀菌作用,促发磷酸戊糖途径[11]㊂但同时磷酸戊糖途径产生还原型谷胱甘肽(GSH)等抗氧化物与过氧化物及自由基结合防止组织过度损伤㊂碳水化合物激酶样蛋白酶(SHK)是磷酸戊糖途径的限制酶,LPS刺激下M2型巨噬细胞SHK增多,而M1型巨噬细胞SHK含量较低㊂M1型巨噬细胞增殖能力较弱,LPS刺激下磷酸戊糖代谢途径的中间产物支持快速生成mRNA,以基因调控蛋白合成的途径产生促炎细胞因子[13]㊂此外,单核细胞的吞噬作用㊁DC的抗原呈递作用都需要磷酸戊糖途径生成的NADPH及其中间代谢产物㊂可见,LPS刺激下磷酸戊糖途径增强对维持免疫细胞功能具有重要作用(图
2)㊂
图2 LPS刺激天然免疫细胞后的糖脂代谢机制图Fig.2 Glucose and lipid metabolism mechanism diagram after LPS stimulates natural immune cell
5 LPS通过免疫与代谢相互调节影响疾病发生发展
  LPS可刺激多种免疫细胞发生代谢重编程,免疫细胞的激活似乎必须经过代谢重编程㊂代谢重编程下,脂肪酸代谢㊁糖酵解代谢㊁磷酸戊糖代谢可补偿氧化磷酸化受抑制时的生物能量及物质需求,且免疫细胞发挥免疫功能也受代谢重编程调控㊂单核/巨噬细胞在LPS刺激下,氧化磷酸化受抑制,免疫细胞通过代谢重编程增强糖酵解及脂肪酸代谢产生能量维持吞噬细胞吞噬作用,并通过激活多种信号转导通路诱导产生IL⁃1β㊁IL⁃8等促炎细胞因子及TNF⁃α发挥促炎作用[32⁃33]㊂LPS引起的代谢综合征是多种疾病的病理基础,代谢紊乱可导致机体免疫功能紊乱㊂多种代谢性疾病,如肥胖㊁Ⅱ型糖尿病㊁内毒素血症等外周血液循环中都可见LPS浓度升高[34⁃35]㊂因此,生物能量转化使代谢与炎症及免疫功能密切相关㊂慢性代谢性疾病导致机体患其他疾病的可能性更高,代谢与免疫反应的联系对机体健康至关重要㊂
6 小结
LPS可使天然免疫细胞发生代谢重编程,并通过代谢调控天然免疫细胞功能㊂深入理解代谢途径,研究代谢途径对细胞信号传导和细胞增殖分化的调控,研究不同细胞如何响应代谢重编程,将为细菌感染㊁糖尿病㊁脂肪肝甚至癌症等疾病防治提供新思路㊂
参考文献:
[1] TRENT M S,STEAD C M,TRAN A X,et al.Diversity of
endotoxin and its impact on pathogenesis[J].J Endotoxin Res, 2006,12(4):205⁃223.DOI:10.1179/096805106X118825. [2] CRIMEEN⁃IRWIN B,SCALZO K,GLOSTER S,et al.Failure of
immune homeostasis the consequences of under and over reactivity [J].Curr Drug Targets Immune Endocr Metabol Disord,2005,5
(4):413⁃423.DOI:10.2174/156800805774912980. [3] KAISER J.Cholesterol forges link between obesity and breast
cancer[J].Science,2013,342(6162):1028.DOI:10.1126/sci⁃ence.342.6162.1028.
[4] MORENO⁃SÃN R,RODRÃGUEZ⁃ENRÃQUEZ S,MARÃN⁃
HERNÃN A,et al.Energy metabolism in tumor cells[J].FEBS J, 2010,274(6):1393⁃1418.DOI:10.1111/j.1742⁃4658.2007.
<
[5] 罗晓曦,陈国栋,焦 扬,等.TLR4在炎性癌症中的研究现状
[J].中国免疫学杂志,2017,33(11):1735⁃1740.DOI:10.
3969/j.issn.1000⁃484X.2017.11.030.
[6] KIM S J,KIM H M.Dynamic lipopolysaccharide transfer cascade to
TLR4/MD2complex via LBP and CD14[J].BMB Rep,2017,50
(2):55⁃57.DOI:10.5483/bmbrep.2017.50.2.011. [7] LACHMANDAS E,BOUTENS L,RATTER J M,et al.Metabolic
programmes in human monocyt microbial stimulation of different Toll⁃like receptor signalling pathways induces diversees[J].Nat Microbiol,2016,2:16246⁃16256.DOI:10.1038/nmicrobi⁃ol.2016.246.
[8] MICHELUCCI A,CORDES T,GHELFI J,et al.Immune⁃
responsive gene1protein links metabolism to immunity by catalyzing itaconic acid production[J].Proc Natl Acad Sci U S A, 2013,110(19):7820⁃7825.DOI:10.1073/pnas.1218599110.
[9] O"NEILL L A,KISHTON R J,RATHMELL J.A guide to immuno⁃
metabolism for immunologists[J].Nat Rev Immunol,2016,16
(9):553⁃565.DOI:10.1038/nri.2016.70.
[10] 滑雅娜,鲁芙爱,王永福.HIF⁃1α相关信号通路及其在自身
免疫性疾病中作用[J].中国免疫学杂志,2019,35(8):1013⁃
1017.DOI:10.3969/j.issn.1000⁃484X.2019.08.025. [11] TANNAHLL G M,CURTIS A M,ADAMIK J,et al.Succinate is
an inflammatory signal that induces IL⁃1βthrough HIF⁃1α[J].
Nature,2013,496(7444):238⁃242.DOI:10.1038/na⁃
ture11986.
[12] JHA A K,HUANG S C,SERGUSHICHEV A,et al.Network
integration of parallel metabolic and transcriptional data reveals
metabolic modules that regulate macrophage polarization[J].
Immunity,2015,42(3):419⁃430.DOI:10.1016/j.immuni.
2015.02.005.
[13] PFEIFFER T,SCHUSTER S,BONHOEFFER S.Cooperation and
competition in the evolution of ATP⁃producing pathways[J].
Science,2001,292(5516):504⁃507.DOI:10.1126/sci⁃
ence.1058079.
[14] BUCK M D,O′SULLIVAN D,KLEIN R G,et al.Mitochondrial
dynamics controls T cell fate through metabolic programming[J].
Cell,2016,166(1):63⁃76.DOI:10.ll.2016.05.035.
[15] YOON M S.The role of mammalian target of rapamycin(mTOR)
in insulin signaling[J].Nutrients.2017,9(11):1176⁃1193.
DOI:10.3390/nu9111176.
[16] LIEN E C,DIBBLE C C,TOKER A.PI3K signaling in cancer:
beyond AKT[J].Curr Opin Cell Biol,2017,45:62⁃71.DOI:10.
b.2017.02.007.
[17] BERNARDI R,GUERNAH I,JIN D,et al.PML inhibits HIF⁃1α
translation and neoangiogenesis through repression of mTOR[J].
Nature,2006,442(7104):779⁃785.DOI:10.1038/na⁃
ture05029.
[18] DAYTON T L,JACKS T,VANDER HEIDEN M G.PKM2,cancer
metabolism,and the road ahead[J].EMBO Rep,2016,17(12):
1721⁃1730.DOI:10.15252/embr.201643300. [19] TAMADA M,SUEMATSU M,SAYA H.Pyruvate kinase M2:
Multiple faces for conferring benefits on cancer cells[J].Clin
Cancer Res,2012,18(20):5554⁃5561.DOI:10.1158/1078⁃
0432.CCR⁃12⁃0859.
[20] MUKHOPADHYAY R,JIA J,ARIF A,et al.The GAIT system:A
gatekeeper of inflammatory gene expression[J].Trends Biochem
Sci,2009,34(7):324⁃331.DOI:10.1016/j.tibs.2009.03.004.
[21] CHANG C H,CURTIS J,MAGGI L,et al.Posttranscriptional
control of T cell effector function by aerobic glycolysis[J].Cell,
2013,153(6):1239⁃1251.DOI:10.ll.2013.
05.016.
[22] BERG J M,TYMOCZKO J L,STRYER L.Biochemistry.5th
edition[M].New York:W H Freeman,2002. [23] RAULIEN N,FRIEDRICH K,STROBEL S,et al.Fatty acid
oxidation compensates for lipopolysaccharide⁃induced warburg
effect in glucose⁃deprived monocytes[J].Front Immunol,2017,
8:609.DOI:10.3389/fimmu.2017.00609
[24] LIN S C,HARDIE D G.AMPK:Sensing glucose as well as
cellular energy status[J].Cell Metab,2018,27(2):299⁃313.
DOI:10.2017.10.009.
[25] LIN D S,KAO S H,HO C S,et al.Inflexibility of AMPK⁃
mediated metabolic reprogramming in mitochondrial disease[J].
Oncotarget,2017,8(43):73627⁃73639.DOI:10.18632/onco⁃
target.20617.
[26] FAUBERT B,BOILY G,IZREIG S,et al.AMPK is a negative
regulator of the warburg effect and suppresses tumor growth in
条形码标签vivo[J].Cell Metab,2013,17(1):113⁃124.DOI:10.1016/
<2012.12.001.
[27] POSOKHOVA E N,KHOSHCHENKO O M,CHASOVSKIKH M I,
et al.Lipid synthesis in macrophages during inflammation in vivo:
Effect of agonists of peroxisome proliferator activated receptorsα
andγand of retinoid X receptors[J].Biochemistry(Moscow),
2008,73(3):296.DOI:10.1134/s0006297908030097. [28] RODRIGUEZ⁃PRADOS J C,TRAVES P G,CUENCA J,et al.
Substrate fate in activated macrophages:A comparison between
innate,classic,and alternative activation[J].J Immunol,2010,
185(1):605⁃614.DOI:10.4049/jimmunol.0901698. [29] EVERTS B,AMIEL E,HUANG C C,et al.TLR⁃driven early
glycolytic reprogramming via the kinases TBK1⁃IKKεsupports the
anabolic demands of dendritic cell activation[J].Nat Immunol,
2014,15(4):323⁃332.DOI:10.1038/ni.2833. [30] GALVÁN⁃PEÑA S,O′NEILL L A.Metabolic reprograming in
macrophage polarization[J].Front Immunol,2014,5:420.DOI:
10.3389/fimmu.2014.00420.
[31] XIAO W,WANG R S,HANDY D E,et al.NAD(H)and NADP
(H)redox couples and cellular energy metabolism[J].Antioxid
Redox Signal,2018,28(3):251⁃272.DOI:10.1089/ars.
2017.7216.
[32] ECKER J,LIEBISCH G,ENGLMAIER M,et al.Induction of fatty
acid synthesis is a key requirement for phagocytic differentiation
of human monocytes[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2010,107
(17):7817⁃7822.DOI:10.1073/pnas.0912059107. [33] LIU T F,BROWN C M,EL GAZZAR M,et al.Fueling the flame:
Bioenergy couples metabolism and inflammation[J].J Leukoc
Biol,2012,92(3):499⁃507.DOI:10.1189/jlb.0212078. [34] BOUTAGY N E,MCMILLAN R P,FRISARD M I,et al.
Metabolic endotoxemia with obesity:Is it real and is it relevant?
[J].Biochimie,2016,124:11⁃20.DOI:10.1016/j.biochi.
2015.06.020.
[35] GOMES J M G,COSTA J A,ALFENAS R C G.Metabolic
endotoxemia and diabetes mellitus:A systematic review[J].
Metabolism,2017,68:133⁃144.DOI:10.abol.2016.
12.009.
[收稿2019⁃07⁃16 修回2019⁃08⁃26]
(编辑 周文瑜)
(上接第629页)
[34] MATARESE G,CARRIERI P B,LA CAVA A,et al.Leptin
increase in multiple sclerosis associates with reduced number of
CD4+CD25+regulatory T cells[J].Proc Natl Acad Sci U S A,
2005,102(14):5150⁃5155.DOI:10.1073/pnas.0408995102.
[35] FUJITA Y,FUJII T,MIMORI T,et al.Deficient leptin signaling
ameliorates systemic lupus erythematosus lesions in MRL/Mp⁃
faslpr mice[J].J Immunol,2014,192(3):979⁃984.DOI:
10.4049/jimmunol.1301685.
[36] AMARILYO G,IIKUNI N,LIU A,et al.Leptin enhances
availability of apoptotic cell⁃derived self⁃antigen in systemic lupus
erythematosus[J].PLoS One,2014,9(11):e112826.DOI:
10.1371/journal.pone.0112826.
[37] AMARILYO G,IIKUNI N,SHI F D,et al.Leptin promotes lupus
T⁃cell autoimmunity[J].Clin Immunol,2013,149(3):530⁃
533.DOI:10.1016/j.clim.2013.09.002.
[38] 陈海凤,邹耀红,孙凌云.瘦素预处理的MSC体外调节SLE
患者淋巴细胞亚的初步研究[J].中国免疫学杂志,2018,
34(3):417⁃420.DOI:10.3969/j.issn.1000⁃484X.2018.
数字频率计设计
03.020.
[39] 陈海凤,邹耀红,孙凌云.瘦素对骨髓间充质干细胞及免疫
细胞亚的调控作用及其对狼疮鼠病情的影响[J].中华风
湿病学杂志,2018,22(8):516⁃521.DOI:10.3760/
cma.j.issn.1007⁃7480.2018.08.003.
[40] CHEN H,SHI B,FENG X,et al.Leptin and neutrophil⁃activating
peptide2promote mesenchymal stem cell senescence through
activation of the phosphatidylinositol3⁃kinase/Akt pathway in
patients with systemic lupus erythematosus[J].Arthritis
Rheumatol,2015,67(9):2383⁃2393.DOI:10.1002/art.39196.
[41] SANTOS F M,TELLES R W,LANNA C C D,et al.Adipokines,
tumor necrosis factor and its receptors in female patients with
systemic lupus erythematosus[J].Lupus,2017,26(1):10⁃
16.DOI:10.1177/0961203316646463.
[42] NAVARINI L,AFELTRA A,AFFLITTO G G,et al.Polyunsatur⁃
ated fatty acids:Any role in rheumatoid arthritis?[J].Lipids
Health Dis,2017,16(1):197⁃197.DOI:10.1186/s12944⁃017⁃
0586⁃3.
[43] LOZOVOY M A B,SIMAO A N C,MORIMOTO H K,et al.Fish
oil N⁃3fatty acids increase adiponectin and decrease leptin levels
in patients with systemic lupus erythematosus[J].Mar Drugs,
2015,13(2):1071⁃1083.DOI:10.3390/md13021071.
[收稿2019⁃06⁃14 修回2019⁃10⁃22]
(编辑 陈 阳)

本文发布于:2024-09-21 17:52:14,感谢您对本站的认可!

本文链接:https://www.17tex.com/xueshu/351880.html

版权声明:本站内容均来自互联网,仅供演示用,请勿用于商业和其他非法用途。如果侵犯了您的权益请与我们联系,我们将在24小时内删除。

标签:细胞   代谢   免疫   脂肪酸
留言与评论(共有 0 条评论)
   
验证码:
Copyright ©2019-2024 Comsenz Inc.Powered by © 易纺专利技术学习网 豫ICP备2022007602号 豫公网安备41160202000603 站长QQ:729038198 关于我们 投诉建议