乔姗姗;郑时奇;方明月;师朵芝;李德利;王腾宇;王如峰
【摘 要】Objective To compare the difference of transformation profile and transformation rate of tecomin by using two in vitro liver metabolism models. Methods Liver microsomes and liver S9 fraction models were employed to transform tecomin. HPLC was used to determine the contents of tecomin and its metabolites at the detecting wavelength of 254 nm. The gradient elution (0–6 min, 5％–40％ A; 6–9 min, 40％–50％ A; 9–11 min, 50％–5％ A) was carried out by using mobile phase of acetonitrile (A) - 1％ acetic acid (B) at a flow rate of 1 mL/min. Results Both models could transform tecomin into veratric acid; however, the metabolites obtained with liver S9 were more than those obtained with liver microsomes, and the transformation rate of the former was higher than that of the latter. Conclusion The liver S9 fraction can more efficiently transform esters than liver microsomes.%目的 比较2种体外肝代谢模型转化藜芦酸葡萄糖酯的转化样式和转化率差异.方法 通过大鼠肝微粒体和肝S9体外转化模型对藜芦酸葡萄糖酯进行生物转化,采用HPLC检测 转化底物及产物的含量,检测波长254 nm,流动相为乙腈(A)-1％乙酸溶液(B),梯度洗脱(0～6 min,5％～40％A;6～9 min,40％～50％A;9～11 min,50％～5％A),流速1.0 mL/min.结果 2种模型均可将藜芦酸葡萄糖酯转化为藜芦酸,但应用肝S9模型得到的代谢产物多于肝微粒体模型,且肝S9模型对酯类的转化率高于肝微粒体模型.结论 肝S9模型对酯类的转化能力高于肝微粒体模型.
【期刊名称】《中国中医药信息杂志》
【年(卷),期】2017(024)012
【总页数】4页(P60-63)大民3307
【关键词】藜芦酸葡萄糖酯;藜芦酸;肝微粒体;肝S9知艾家园
ddp【作 者】乔姗姗;郑时奇;方明月;师朵芝;李德利;王腾宇;王如峰
【作者单位】北京中医药大学生命科学学院,北京 100102;北京中医药大学生命科学学院,北京 100102;北京中医药大学生命科学学院,北京 100102;北京中医药大学生命科学学院,北京
100102;北京中医药大学生命科学学院,北京 100102;北京中医药大学生命科学学院,北京 100102;北京中医药大学生命科学学院,北京 100102
【正文语种】中 文
【中图分类】R285.6
肝脏是药物代谢的重要器官，是机体进行生物转化的主要场所。以肝脏为基础的体外代谢模型以其特有的优势在药物代谢研究中得到广泛应用。肝微粒体和肝S9是2种常用的模拟药物肝代谢的体外模型。肝S9是将肝组织匀浆后，经9000 r/min离心所得的上清液，可在肝微粒体的早期制备阶段获得，含有微粒体和胞质分数，含有生物转化Ⅰ相反应所需的CYP450酶类和Ⅱ相代谢酶（如葡萄糖酸转移酶、甲基转移酶、硫酸转移酶、乙酰基转移酶等）和其他的一些氧化酶和脱氢酶，如负责酒精代谢的乙醛脱氢酶等[1-2]。与肝S9不同，肝微粒体只含有内质网亚细胞分数，包括负责药物代谢的CYP450酶和极少量的Ⅱ相代谢酶[3-4]。既然二者所含的代谢酶存在差异，它们对药物的代谢是否存在差异值得关注。藜芦酸葡萄糖酯是本课题组从金莲花Flos Trollii中首次分离出的一种酚酸类化合物（见图1），前期研究已经显示其可在肝内代谢，具有抗炎和抑菌活性，被视为金莲花的抗炎和抑菌有
效成分之一[5-7]。从分子结构来看，藜芦酸葡萄糖酯是由藜芦酸的羧基和葡萄糖C1位的羟基脱水形成的糖酯类化合物[8]。前期研究表明，藜芦酸葡萄糖酯在体内可被代谢为藜芦酸，并推测其主要代谢器官为肝脏[9-10]。因此，本研究以藜芦酸葡萄糖酯为底物对这2种模型的代谢样式和代谢速率进行比较，为选择合适可行的体外肝代谢模型提供依据。
SPF级雄性SD大鼠10只，8周龄，体质量（200±10）g，斯贝福（北京）实验动物科技有限公司，动物许可证号SCXK（京）2011-0004，常规饲养于北京中医药大学生物制药实验室动物房。 Waters Breeze 1525型液相谱仪（包括Waters 1525二元溶剂输液泵、Waters 2489紫外检测器、Waters breeze 2谱工作站），美国Waters公司；Phenomenex谱柱（250 mm×4.6 mm，4 µm），美国Phenomenex公司；TU-1901型紫外分光光度计，北京普析通用仪器有限责任公司；T10 basic型匀浆器，德国IKA公司；电热恒温振荡水槽，金坛市华立实验仪器厂；CP100WX型超速离心机，日本株式会社日立制作所；漩涡混匀仪，海门市气林贝雨仪器厂；高速低温离心机，美国Kendro仪器公司；氮气吹干仪，北京市优晟联合科技有限公司；pH计，徐州亚名仪器仪表有限公司；AE240十万分之一电子天平，瑞士Mettler公司。
酸甘化阴 氧化型辅酶Ⅱ（NADP）、还原性辅酶Ⅰ（NADH）、葡萄糖-6-磷酸（G-6-P）、葡萄糖-6-磷酸脱氢酶（G-6-PDH），Sigma公司；DL-硫酸苏糖醇（DTT），北京拜尔迪生物技术有限公司；氯化钾、磷酸二氢钾、磷酸氢二钾、氯化镁、乙二胺四乙酸二钠，北京高华伟业食品添加剂有限公司；分析纯乙腈、甲醇、乙酸乙酯，北京东方飞思科技发展有限公司；谱纯乙腈、甲醇，美国Fisher公司；Folin-酚试剂盒，北京鼎国昌盛生物技术有限公司；钠注射液，中国中医科学院望京医院；藜芦酸葡萄糖酯和藜芦酸均由本实验室从金莲花中分离得到，按照面积归一化法测得其纯度不低于98%。
采用一次离心法制备大鼠肝S9，二次离心法制备大鼠肝微粒体。大鼠在动物房适应1周后，腹腔注射钠注射液（80 mg/kg），连续3 d，诱导肝酶产生。大鼠禁食不禁水12 h后，腹腔注射10%水合氯醛麻醉处死，迅速打开腹腔，从肝门静脉注射冰冷生理盐水，清除肝内残留血液，取出肝脏，用冰冷生理盐水洗净，去除肝脏表面血液，滤纸吸干液体，称重。将肝脏剪成小块后，按1∶3比例加入50 mmol/L磷酸盐缓冲液，用电动匀浆机匀浆，将匀浆液于4 ℃、9000×g离心30 min，弃去上层脂质和下层沉淀后的清液即为制得的肝S9，分装，于-80 ℃冰箱贮存备用。将匀浆液在4 ℃、12 500×g离心15 min，取弃去上层脂质和下层沉淀后的清液，再于105 000×g离心70 min，沉淀部分即肝微粒体，将
肝微粒体重悬浮于磷酸盐缓冲液（20%甘油、50 mmol/L KH2PO4-K2HPO4、0.1 mmol/L EDTA，pH 7.4）中，分装，于-80 ℃冰箱贮存备用。
采用Folin-酚试剂盒测定肝S9、肝微粒体的蛋白浓度。按照Lowry法[11]，采用牛血清白蛋白标准工作液（BSA）进行测定，将蛋白含量对紫外可见吸收值（OD）作图，得到标准曲线，OD＝2.019 41C＋0.089 82，r＝0.999 8，表明在0～0.25 mg/mL范围内线性关系良好。最后测定肝S9蛋白浓度为20.92 mg/mL，肝微粒体蛋白浓度为28.13 mg/mL。 精密量取藜芦酸葡萄糖酯适量，溶于磷酸盐缓冲液中备用。将配制好的酶系（NADPH再生系统，包括2.0 mmol/L NADP、1.0 mmol/L NADH、20 mmol/L G-6-P、2.0 IU/mL G-6-PDH、8.0 mmol/L MgCl2）、肝微粒体（蛋白浓度8.0 mg/mL）、肝S9（蛋白浓度8.0 mg/mL）定量加入各反应组中，摇匀后，37 ℃水浴温孵5 min，再定量加入藜芦酸葡萄糖酯开始反应，实验体系见表1。120 min后加入等量冰冻的乙酸乙酯终止反应，14 800 r/min离心10 min，取上清液，加入等量乙酸乙酯萃取3次，氮气吹干，以500 µL甲醇复溶，0.45 µm微孔滤膜过滤后，HPLC分析。
2.4.1 谱条件 Phenomenex谱柱（250 mm×4.6 mm，4 µm），有预柱；流动相为乙
腈（A）-1%乙酸溶液（B），梯度洗脱（0～6 min，5%～40%A；6～9 min，40%～50%A；9～11 min，50%～5%A）；流速1.0 mL/min，检测波长254 nm，柱温35 ℃，进样量10 µL。结果藜芦酸葡萄糖酯与藜芦酸的峰形良好，分离完全，无杂质峰干扰，空白肝微粒体、肝S9对测定无干扰，专属性强，见图2。
2.4.2 系统适用性试验 测定结果显示，藜芦酸葡萄糖酯和藜芦酸的保留时间分别为7.702、9.803 min，理论塔板数分别为26 292、50 607，拖尾因子分别为0.95、1.01，检测限（LOD）分别为0.06、0.03 ng，定量限（LOQ）分别为0.19、0.10 ng。以上数据表明上述条件适用于2种化合物的分析。
2.4.3 方法学考察
女港商刘娟2.4.3.1 线性关系考察 精密称取藜芦酸葡萄糖酯6.40 mg和藜芦酸3.30 mg，置于10 mL容量瓶中，加甲醇溶解并稀释至刻度，摇匀，为对照品贮备液。分别精密吸取对照品贮备液0.125、0.25、0.5、1、1.25、1.75、2、2.5 mL置于5 mL容量瓶中，加甲醇至刻度，摇匀，配制成8个不同浓度的对照品溶液。分别进样测定，以藜芦酸葡萄糖酯和藜芦酸的峰面积对其各自浓度进行线性回归，求得标准曲线回归方程。藜芦酸葡萄糖酯Y＝722 359X－1
文史天地806.3（r＝0.999 2），线性范围0.016～0.32 mg/mL；藜芦酸Y＝2 372 949X＋1061.8（r＝0.999 3），线性范围0.008 25～0.165 mg/mL。
2.4.3.2 精密度和准确度试验 配制3个不同浓度的藜芦酸葡萄糖酯和藜芦酸的混合对照品溶液。按“2.4.1”项下谱条件，在同一日内分别将各浓度的同一样品连续进样6次。根据标准曲线，按照谱峰的峰面积求得样品中藜芦酸葡萄糖酯和藜芦酸的浓度，并计算3个浓度各连续6次进样的RSD和RE，结果表明本方法的日内精密度和准确度良好。然后，分别将各浓度的同一样品每日连续进样2次，连续进样3 d，同法求得样品中藜芦酸葡萄糖酯和藜芦酸的浓度，并计算3个浓度各6次进样的RSD，结果表明本方法的日间精密度良好。见表2。
2.4.3.3 重复性和稳定性试验 用空白温孵体系（肝S9）配制3个不同浓度的藜芦酸葡萄糖酯和藜芦酸溶液，每个浓度6份，按“2.3”项下方法除去蛋白，得到供试品溶液。分别进样，根据标准曲线，按照谱峰的面积求得样品中藜芦酸葡萄糖酯和藜芦酸的浓度，并计算3个浓度各6份样品的RSD，结果表明重复性良好。用空白温孵体系配制3个不同浓度的藜芦酸葡萄糖酯和藜芦酸溶液，每个浓度3份，按“2.3”项下方法除去蛋白，得到供试品溶
液。分别在室温下放置0、4、8 h及-20 ℃放置4、7、10 d进样，根据标准曲线，按照谱峰的面积求得样品中藜芦酸葡萄糖酯和藜芦酸的浓度，并分别计算短期和长期稳定性的RSD，结果表明样品的短期和长期稳定性良好。见表2。
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