异氟烷预处理对大鼠脑缺血再灌注损伤的作用及机制

第57卷㊀第2期2021年04月
青岛大学学报(医学版)
J O U R N A LO FQ I N G D A O U N I V E R S I T Y (M E D I C A LS C I E N C E S
)V o l .57,N o .2A p
风险投资论文r i l ㊀2021[收稿日期]2019G05G21;㊀[修订日期]2020G12G18
[基金项目]陕西省自然科学基础研究计划项目(2018J M 7121)[第一作者]朱婧(1986G),女,硕士,主治医师.[通信作者]张世平(1983G),男,主治医师.E Gm a i l :x i 681040G
42996@163.c o m
.异氟烷预处理对大鼠脑缺血再灌注损伤的作用及机制
朱婧,赵义康,王臻,常建华,张世平
(陕西省人民医院麻醉科,陕西西安㊀710000
)[摘要]㊀目的㊀探讨异氟烷(I S O )预处理对脑缺血再灌注(I /R )
损伤的影响及其机制.方法㊀用线栓法构建I /R 模型,将50只大鼠随机分为5组:假手术组(A 组)㊁I /R 组(B 组)㊁I /R+I S O 组(C 组)㊁I /R+I S O+吡咯烷二硫代氨基甲酸铵(P D T C )组(D 组)和I /R+I S O+二甲基亚砜(D M S O )组(E 组),每组10只.用L o n g a 评分法评估各组大鼠神经功能损伤评分和TM S 评分,T T C 法检测脑组织梗死面积,T U N E L 法检测神经细胞凋亡率,E L I S A 法检测脑组织中肿瘤坏死因子α(T N F Gα)和白细胞介素1β(I L G1β)的含量,W e s t e r nb l o t 检测脑组织中B c l
G2㊁C l e a v e d C a s p a s e G3和N F GκB p 65蛋白的表达.结果㊀与A 组相比较,B ㊁C ㊁D 和E 组的TM S 评分㊁B c l G2表达水平均明显降低,而神经功能损伤评分㊁神经细胞凋亡率和脑组织梗死面积㊁N F GκB p 65和C l e a v e dC a s p
a s e G3表达水平㊁T N F Gα和I L G1β含量均明显升高(P <0.05).与B 组相比,C ㊁D 和E 组以上各指标有不同程度的逆转(P <0.05).而C 组和D 组比较㊁C 组与E 组比较差异无显著性(P >0.05).结论㊀I S O 预处理可保护脑I /R 损伤,其作用机制可能与抑制N F GκB 信号通路减少神经细胞凋亡和减轻炎症反应有关.
[关键词]㊀再灌注损伤;脑梗死;异氟醚;细胞凋亡;炎症;N F GκB 信号通路;
大鼠[中图分类号]㊀R 977.6;R 364.1㊀㊀[文献标志码]㊀A㊀㊀[文章编号]㊀2096G5532(2021)02G0255G05
d o i :10.11712/j
m s .2096G5532.2021.57.068[开放科学(资源服务)标识码(O S I D )包一峰
][网络出版]㊀h t t p
s ://k n s .c n k i .n e t /k c m s /d e t a i l /37.1517.R.20210222.1126.003.h t m l ;2021G02G22㊀17:07:25E F F E C TA N D M E C H A N I S M O FI S O F L U R A N E P R E C O N D I T I O N I N G O N C E R E B R A LI S C H E M I A /R E P E R F U S I O NI N J U R YI N R A T S ㊀Z HU J i n g ,Z HA O Y i k a n g ,WA N G Z h e n ,C HA N G J i a n h u a ,Z HA N G S h i p i n g ㊀(
邵式平D e p a r t m e n to fA n a e s t h e s i o l o g y ,S h a n x i P r o v i n c i a l P e o p l e  sH o s p
i t a l ,X i ᶄa n710000,C h i n a )[A B S T R A C T ]㊀O b j
e c t i v e ㊀T o i n v e s t i g a t e t h e e
f f e c t a n dm e c h a n i s mo f i s o f l u r a n e (I S O )p r e c o n d i t i o n i n
g o n c e r e b r a l i s c
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i a /r e p e r f u s i o n (I /R )i n
j u r y .㊀M e t h o d s ㊀T h e s u t u r em e t h o dw a s u s e d t o e s t a b l i s h a n I /R m o d e l ,a n d 50r a t sw e r e r a n d o m l y d
i v i d e d i n t o s h a m Go p e r a t i o n g r o u p (g r o u p A ),I /R g r o u p (g r o u p B ),I /R+I S O g r o u p (g r o u p C ),I /R+I S O+p y r r o l i d i n e d i t h i o c a r b a m a t e (P D T C )g r o u p (g r o u p D ),a n d I /R+I S O+d i m e t h y l s u l f o x i d e (D M S O )g r o u p (g r o u p E ),w i t h 10r a t s i n e a c h g r o u p .T h eL o n g
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P <0.05).C o m p a r e dw i t h g r o u p B ,g r o u p sC ,D ,a n dEh a d v a r y i n g d e g r e e s o f r e v e r s a l o f t h e a b o v e i n d i c e s (P <0.05).T h e r e w e r e n o s i g n i f i c a n t d i f f e r e n c e s b e t w e e n g r o u p C a n d g r o u p Da n d b e t w e e n g r o u p C a n d g r o u
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P >0.05).㊀C o n c l u s i o n ㊀I S O p r e Gt r e a t m e n t c a n p r o t e c t t h e b r a i n a g a i n s t I /R i n j u r y ,p o s s i b l y b y i n h i b i t i n g t h eN F GκB s i g n a l i n g p a t h w a y t o r e d u c e n e u r a l c e l l a p o p t o Gs i s a n d a l l e v i a t e i n f l a mm a t o r y r e s p
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;r a t s
㊀㊀脑缺血再灌注(I /R )
损伤是一种由多种因素引起的病理过程,与脑细胞凋亡和炎症反应等密切相
关[1G3]
.N F GκB 信号通路是一种与细胞凋亡和炎症反应关系密切的经典信号传导途径[
4G6
]
.有研究发现,异氟烷(I S O )
预处理可通过抑制脑细胞凋亡和减弱炎症反应等机制改善脑I /R 损伤[7G8
].但N F G
κB 信号通路是否与I S O 的保护机制有关尚不清楚.
因此,本研究旨在探究I S O 对I /R 损伤的影响以及
对N F GκB 信号通路的调控作用.本研究利用N F G
κB 信号通路抑制剂,通过观察I S O 对I /R 大鼠脑细胞凋亡㊁炎症反应及N F GκB 信号通路相关蛋白表达的影响,探讨I S O 保护脑I /R 损伤的作用机制是否
256青㊀岛㊀大㊀学㊀学㊀报㊀(医㊀学㊀版)57卷
与N FGκB信号通路有关.现将结果报告如下.1㊀材料与方法
1.1㊀实验材料
S D雄性大鼠(体质量260~300g,2~3周龄)购于空军军医大学实验动物中心,I S O购于美国B a x t e r公司.细胞裂解液㊁硝酸纤维素膜㊁显影液㊁定影液和B C A蛋白浓度测定试剂盒购于上海碧云天生物技术研究所,N FGκB p65兔多克隆抗体购于美国M I L L I P O R E公司,B细胞淋巴瘤/白血病G2(B c lG2)㊁甘油醛G3G磷酸脱氢酶(G A P D H)和剪切的含半胱氨酸的天冬氨酸蛋白水解酶3(C l e a v e d C a s p a s eG3)兔多克隆抗体和兔源二抗购于美国C e l l S i g n a l i n g公司.N FGκB信号通路抑制剂吡咯烷二硫代氨基甲酸铵(P D T C)购于美国S i g m a公司,肿瘤坏死因子α(T N FGα)和白细胞介素1β(I LG1β) E L I S A试剂盒购于德国R&D G e r m a n y公司.1.2㊀实验方法
1.2.1㊀I/R模型的制备㊁I S O预处理与实验分组I/R模型的制备:以腹腔注射30g/L钠的方法麻醉大鼠,固定大鼠去除颈前毛,并以体积分数0.75乙醇溶液对颈部皮肤进行消毒.在颈正中做切口,分离右侧颈总动脉以及颈内外动脉,将尼龙线栓(直径0.38mm)从颈外动脉残端插入颈内动脉(约长20mm)直至有阻力感.在缺血90m i n后,拔出线栓,进行再灌注24h.I/R大鼠模型制备成功的判断参照L O N G A等[9]的标准.预处理方法: I S O组在I/R前进行I S O预处理,将大鼠置于自制密闭的实验舱中,头端分别连接进气孔和连接麻醉气体监测仪.维持箱内温度35~37ħ,经麻醉机输送体积分数0.015的I S O气体至实验舱内,并调节氧体积分数为0.70左右,逐渐升高麻醉气体浓度,根据D a t e x气体检测仪调节实验舱内I S O浓度为体积分数0.015时,维持以上浓度稳定15m i n后放入大鼠进行预处理.连续5d吸入体积分数0.015的I S O气体,每天1h.吸入I S O气体过程中分别监测脉搏氧分压(S p O2)和脉率.末次预处理24h 后行I/R.
实验分组:将50只大鼠随机分为5组,每组10只.①假手术组(A组):分离血管后不插入线栓.
②I/R组(B组):参照I/R模型的制备方法制备脑中动脉闭塞/再灌注(M C A O/R)大鼠模型,在缺血90m i n后再灌注.③I/R+I S O组(C组):在缺血前60m i n给予体积分数0.02的I S O诱导30m i n,之后行I/R.④I/R+I S O+P D T C组(D组):缺血前60m i n给予体积分数0.02的I S O诱导30m i n,并于侧脑注射10μL的N FGκB信号通路特异性抑制剂P D T C(以二甲基亚砜(D M S O)溶解,0.3m g/ k g),然后再行I/R.⑤I/R+I S O+D M S O组(E 组):缺血前60m i n给予体积分数0.02的I S O诱导30m i n,并于侧脑注射10μL的D M S O,再行I/R.1.2.2㊀神经功能损伤和T M S评分㊀采用L o n g a评分法对缺血再灌注后24h的各组大鼠进行神经功能评估.神经功能损伤评分:无神经损伤记为0分,左前肢出现伸展障碍记为1分,向左打圈记为2分,行走时向左侧倾斜记为3分,意识昏迷记为4分,死亡记为5分;评分越高神经功能损伤程度越严重. T M S评分:各组大鼠在再灌注后2h进行T M S评分,参照L O N G A等[9]报道的方法对大鼠抓屏㊁抓绳和平衡木等3个项目的检测,评分越高表明神经运动功能越好.
1.2.3㊀T T C法检测梗死面积㊀在各组大鼠处理结束后,脱臼处死大鼠.取脑组织,并做厚度为2mm 的冠状组织切片,以10g/L的T C溶液染15~20m i n,其中呈红的为正常脑组织,呈白的为梗死区域脑组织.以40g/L多聚甲醛进行固定.采用I m a g eGP r oP l u s6.0软件对染切片进行分析.梗死面积(%)=白区域面积/(白区域面积+红区域面积)ˑ100%.
1.2.4㊀T U N E L法检测神经细胞凋亡㊀采用40g/ L多聚甲醛对各组大鼠脑组织固定后,以石蜡进行包埋切片.根据T U N E L试剂盒说明书步骤进行染.其中,呈绿荧光的为阳性细胞.在400倍光镜下随机选取5个视野统计阳性细胞数,以阳性细胞数与总细胞数的比值表示神经细胞的凋亡率.1.2.5㊀W e s t e r nb l o t检测海马组织中N FGκB p65㊁B c lG2和C l e a v e dC a s p a s eG3蛋白的表达㊀向各组脑组织匀浆中加入细胞裂解液提取总蛋白,经B C A法定量总蛋白后,将蛋白样品上样至S D SGP A G E凝胶中进行电泳.待完全分离后,结束电泳.恒流转至硝酸纤维素膜后,加入1ʒ1000的特异性一抗(N FGκB p65㊁B c lG2和C l e a v e dC a s p a s eG3)4ħ下孵育2h.次日,加入1ʒ2000的辣根过氧化酶标记的二抗室温孵育2h.暗室内显影曝光后,以G A P D H为对照,采用凝胶成像系统扫描分析.1.2.6㊀E L I S A法检测脑组织中T N FGα和I LG1β的
2期朱婧,等.异氟烷预处理对大鼠脑缺血再灌注损伤的作用及机制257
含量㊀取各组大鼠的脑组织制备匀浆,严格参照E L I S A试剂盒说明书步骤检测各组大鼠脑组织中T N FGα和I LG1β的含量.
1.3㊀统计学处理
采用S P S S22.0软件进行统计学分析,计量资料数据以 xʃs形式表示,多组组间数据比较采用单因素方差分析,组间两两比较采用S N KGq检验分析.以P<0.05为差异有统计学意义.
2㊀结㊀㊀果
2.1㊀各组神经功能的比较
镶嵌图形测验与假手术组比较,其余4组的神经功能损伤评分明显升高,而T M S评分明显降低(F=38.626㊁404.130,P<0.05);与I/R组相比,I/R+I S O组㊁I/ R+I S O+P D T C组和I/R+I S O+D M S O组的神经功能损伤评分均明显降低,而T M S评分明显升高(q=7.776~15.231,P<0.05);与I/R+I S O组相比,I/R+I S O+P D T C组的神经功能损伤评分明显降低,而T M S评分明显升高(q=4.030㊁12.124, P<0.05),但I/R+I S O+D M S O组无显著差异(q=0.403㊁0.501,P>0.05).见表1.
2.2㊀各组大鼠神经细胞凋亡率与脑组织梗死面积的比较
I/R组㊁I/R+I S O组㊁I/R+I S O+P D T C组和I/R+I S O+D M S O组大鼠神经细胞凋亡率和脑组织梗死面积较假手术组均明显升高(F=111.952㊁272.910,P<0.05).I/R+I S O组㊁I/R+I S O+P D T C组和I/R+I S O+D M S O组大鼠神经细胞凋亡率和脑组织梗死面积较I/R组均明
显降低(q=11.361~19.237,P<0.05);并且,I/R+I S O+P D T C组明显低于I/R+I S O组(q=5.248㊁9.211, P<0.05),而I/R+I S O+D M S O组与I/R+I S O组比较差异无显著意义(q=1.040㊁1.348,P>0.05).见表2.
2.3㊀各组大鼠海马组织中N FGκB p65、B c lG2以及C l e a v e dC a s p a s eG3蛋白表达的比较
与假手术组大鼠相比,其余4组中N FGκB p65和C l e a v e dC a s p a s eG3蛋白的表达水平均明显升高,而B c lG2蛋白的表达水平均明显降低(F=43.929~114.750,P<0.05).同时,与I/R组相比,除假手术组外的另外3组中N FGκB p65和C l e a v e dC a s p a s eG3蛋白表达明显降低,B c lG2蛋白表达明显升高(q=9.192~12.328,P<0.05);并且,在I/R+I S O+P D T C组中上述变化幅度明显小于I/R+I S O组(q=5.527~9.900,P<0.05),而I/R+I S O组与I/ R+I S O+D M S O组无显著差异(q=0.850~1.414, P>0.05).见图1和表3.
表1㊀各组神经功能评分比较(n=10, xʃs)
入目三分组别神经功能损伤评分T M S评分
A组0.22ʃ0.158.84ʃ0.67
B组5.58ʃ0.24∗4.25ʃ0.28∗
C组4.06ʃ0.18∗#6.48ʃ0.35∗#
D组2.85ʃ0.12∗#ә7.58ʃ0.54∗#ә
E组4.11ʃ0.15∗#6.37ʃ0.42∗#
㊀㊀注:与A组相比,∗P<0.05;与B组相比,#P<0.05;与C组相比,әP<0.05.
表2㊀各组大鼠神经细胞凋亡率与脑组织梗死面积的比较(n=10,χ/%, xʃs)
组别神经细胞凋亡率梗死面积
A组3.25ʃ1.462.45ʃ1.38
B组48.65ʃ2.08∗37.48ʃ2.15∗
C组29.52ʃ1.63∗#22.57ʃ3.42∗#
D组20.36ʃ1.18∗#ә16.26ʃ1.27∗#ә
E组28.18ʃ2.08∗#ә23.82ʃ1.36∗#ә
㊀㊀注:与假手术组相比,∗P<0.05;与I/R组相比,#P<0.05;与I/R+I S O组相比,әP<0.05
.
A:假手术组,B:I/R组,C:I/R+I S O组,D:I/R+I S O+P D T C 组,E:I/R+I S O+D M S O组.
图1㊀W e s t e r nb l o t检测N FGκB p65㊁B c lG2和C l e a v e dC a s p a s eG3蛋白的表达
表3㊀各组脑组织相关蛋白比较(n=10, xʃs)
组别N FGκB p65㊀B c lG2㊀C l e a v e dC a s p a s eG3A组0.09ʃ0.020.51ʃ0.030.26ʃ0.02
B组0.49ʃ0.03∗0.25ʃ0.02∗0.75ʃ0.06∗
C组0.36ʃ0.03∗#0.42ʃ0.03∗#0.48ʃ0.05∗#
D组0.22ʃ0.02∗#ә0.33ʃ0.02∗#ә0.35ʃ0.03∗#ә
E组0.34ʃ0.02∗#0.44ʃ0.03∗#0.46ʃ0.03∗#
㊀㊀注:与假手术组相比,∗P<0.05;与I/R组相比,#P<0.05;与I/R+I S O组相比,әP<0.05.
2.4㊀各组大鼠脑组织中炎症因子T N FGα和I LG1β含量的比较
与假手术组相比,其余4组中T N FGα和I LG1β含量均明显升高(F=20.613㊁30.197,P<0.05).I/ R+I S O组㊁I/R+I S O+P D T C组和I/R+I S O+
258青㊀岛㊀大㊀学㊀学㊀报㊀(医㊀学㊀版)57卷
D M S O组中T N FGα和I LG1β含量较I/R组均明显降低(q=5.244~7.381,P<0.05).同时,I/R+I S O+P D T C组明显低于I/R+I S O组(q=3.580㊁3.628,P<0.05),而I/R+I S O+D M S O组与I/R+I S O组比较差异无显著性(q=0.218㊁0.636,P>0.05).见表4.
表4㊀各组脑组织T N FGα和I LG1β含量比较(n=10,ρ/ n g L-1, xʃs)
组别T N FGαI LG1β
A组81.28ʃ5.3645.57ʃ3.64
B组128.46ʃ8.75∗78.86ʃ5.28∗
C组107.85ʃ6.92∗#61.75ʃ3.42∗#
D组93.78ʃ5.26∗#ә53.58ʃ3.26∗#ә
E组110.35ʃ7.13∗#62.24ʃ3.55∗#
㊀㊀注:与假手术组相比,∗P<0.05;与I/R组相比,#P<0.05;与I/R+I S O组相比,әP<0.05.
3㊀讨㊀㊀论
在I/R过程中,中性粒细胞和内皮细胞等可通过释放T N FGα㊁I LG1β等炎症因子启动炎症反应的发生,加重细胞损伤,而炎症因子的释放受多种信号通路调控[10G13].另外,神经细胞凋亡是导致脑I/R 损伤的重要环节,而信号转导是介导细胞凋亡启动的重要前提[14G15].因此,寻有效抑制细胞凋亡和改善炎症反应的信号靶点对减轻脑I/R损伤具有重要意义.
众所周知,N FGκB是广泛存在于细胞内的多效核转录因子,p65是其重要的功能性亚单位,翻译后修饰能够精细地激活N FGκB信号通路,进而调控多种细胞基因,参与细胞的增殖㊁迁移㊁凋亡㊁炎症和免疫反应等过程[16G17].目前多项研究显示,N FGκB与中枢神经系统疾病㊁肿瘤和心血管疾病等多种疾病的发生发展密切相关[18G20],是多种药物介入方面潜在的靶标.
I S O是一种挥发性麻醉剂,一项研究证实I S O 预处理可通过激活A k t/m T O R/s6K信号通路减轻I/R损伤诱导的神经功能缺损㊁梗死体积㊁脑水肿和细胞凋亡等[7].P E N G等[21]指出,I S O通过T G FGβ2/S m a d3信号通路增强V E G F和C D34的活化来减轻I/R损伤.此外,I S O还能够有效缓解大鼠脑I/ R损伤[22].Z H A O等[23]研究结果显示,在脑I/R 损伤后大鼠脑组织中N FGκB信号通路被
激活,脑梗死体积增大和病理改变加重,神经功能障碍明显,而抑制N FGκB信号通路后,大鼠脑I/R损伤可明显减轻.Z H A N G等[24]研究显示,脂联素通过抑制海马中的P38GMA P K信号通路来改善I S O引起的老年大鼠认知功能障碍.另一项研究显示,I S O诱导C UM S小鼠中B D N FGT r k B信号传导产生抗抑郁作用[25].以上研究提示,I S O能够调控不同信号通路在多种疾病中发挥作用.
本研究通过构建I/R损伤大鼠模型,I S O预处理后I/R损伤大鼠T M S评分㊁B c lG2表达水平均明显升高,而神经功能损伤评分㊁神经细胞凋亡率和脑组织梗死面积㊁N FGκB p65和C l e a v e dC a s p a s eG3表达水平㊁T N FGα和I LG1β含量均明显降低.B c lG2是公认的抑凋亡基因,C a s p a s eG3是凋亡的关键执行因子,活化的C a s p a s eG3以C l e a v e dC a s p a s eG3形式存在;两者均在脑I/R损伤的细胞凋亡过程中发挥着重要作用[26G27].本文结果提示,I S O预处理可通过抑制神经细胞凋亡和减弱炎症反应以发挥保护脑I/R损伤的作用.而以N FGκB信号通路抑制剂P D T C作用后,I/R损伤大鼠的T M S评分㊁B c lG2表达水平均进一步升高,而神经功能损伤评分㊁神经细胞凋亡率和脑组织梗死面积㊁N FGκB p65和C l e a v e d C a s p a s eG3表达水平㊁T N FGα和I LG1β含量进一步降低.本文研究结果表明,I S O对脑I/R损伤的保护作用进一步增强.提示,I S O可通过抑制N FGκB信号通路减少神经细胞凋亡和减轻炎症反应,进而减轻脑I/R损伤发挥神经保护作用.
综上所述,N FGκB信号通路在脑I/R损伤过程中发挥着重要作用,I S O预处理可通过抑制其激活抑制神经细胞凋亡和炎症反应来减轻脑I/R损伤.本研究为脑I/R损伤发病机制的深入研究提供实验依据,并为I
S O用于脑I/R损伤提供一定的理论基础.然而,本实验未涉及I S O是否调控其他信号通路尚显不足,后续研究将对此进行补充和完善,且大鼠体内实验与临床试验也有一定差距,I S O 用于脑I/R损伤仍然需要大量的研究.
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