启动子克隆及活性分析

6 CpLTP3CpLTPI.4基因启动子克隆及瞬时表达分析
  为了深入探索蜡梅nsLTPs基因家族4个成员CpLTP1CpLTP2CpLTP3 CpLTP4在表达和功能上存在差异的原因,需要进一步克隆各个成员的启动子,以便寻调控方面的差异。我们利用hiTAIL-PCR法分离得到了CpLTP3CpLTP4基因的启动子区域,并对调控原件和瞬时表达活性进行了分析,另外两个基因启动子暂时没有得到成功分离,所以没有进行分析。
6.1 实验材料
6.1.1 植物材料
供试蜡梅开花大树品种为罄口蜡梅,种植于西南大学校园内,常规管理。蜡梅小苗通过种子繁殖培育,种子采自西南大学校园罄口蜡梅树。培养条件为湿度85%,16h光照(2000Lx),温度258h黑暗,温度20。烟草W38Nicotiana tobacum cv. Wisconsin 38)由本实验室保存扩繁。
6.1.2 菌种和载体
大肠杆菌(Esherichia coli)菌株TOP10,为质粒转化受体菌由本实验室保存。
根癌农杆菌(Agrobacterium tumefacieusLBA4404用于农杆菌介导的烟草遗传转化,由本实验室保存。
克隆载体pMD19-T购自TaKaRa公司。植物表达载体pBI121具有Km抗性和完整的GUS基因表达元件,用于构建瞬时表达载体。
6.1.3 主要试剂
Taq DNA聚合酶、各种限制性内切酶、Mgcl2dNTPT4 DNA连接酶等购自TaKaRa公司;DL2000DNA Maker、质粒提取和胶回收试剂盒均购自BioFlux公司;PCR引物合成及DNA测序均由生物工程有限公司合成;氨苄青霉素(Ampicillin,Amp)和卡拉霉素(Kanamycin,Km)均购自上海生物工程有限公司
6.1.4 主要设备
紫外分光光度仪(岛津),高速冷冻离心机(HITACHI),台式冷冻离心机(Eppendoff),TGL-16B型台式离心机(上海安亭),Eppendorf PCR仪,IKA型涡旋器(德国产),高压灭菌锅(日本产),超低温冰箱(sanyo),DYY型电泳仪(北京六一厂),超净工作台(苏州净化设备厂), FR-1型凝胶成像系统(上海复日),722型分光光度计(重庆川仪九厂),恒温振荡摇床,恒温培养箱,水浴锅。
6.1.5 常用溶液配方
氨苄青霉素(Amp):水溶,超滤,贮存浓度50mg/mL,﹣20避光保存。
卡那霉素(Km):水溶,超滤,贮存浓度50mg/mL,﹣20避光保存。
TEpH8.0):10mmol/L Tris-ClpH8.0),1mmol/L EDTApH8.0)。
50×TAE(电泳缓冲液),1LTris 242g/L,冰醋酸57.1ml, EDTA(0.5mol/L pH 8.0)100ml/L
琼脂糖凝胶上样缓冲液:溴酚蓝 0.25%W/V),蔗糖40%W/V)。                             
6.1.6基本培养基配方
(1) LB培养基(培养大肠杆菌用)
参照3.1.5
________________________________________________________________________________________________________________________________动子的160_________________________________________________________________________________________________________________________2YEB培养基(培养农杆菌用)               
Trptone        1%国家发改委杨宜勇简介W/V       
Yeast extract      0.1%W/V
MgSO4·7H2O      0.5g/L             
蔗糖            0.5%W/V
pH                7.0               
(固体培养基加1.5%的琼脂)
3)烟草转化基本培养基
MS0MS 基本成分+蔗糖30g/LpH5.8
MS1(高盐胁迫培养基)MS0+1mol·L-1 NaClpH5.8
MS2(干旱胁迫培养基)MS0+25%PEG6000, pH5.8
MS3(脱落酸胁迫培养基)MS0+100mMABA, pH5.8
MS4(赤霉素胁迫培养基)MS0+100mMGA3
每种处理3瓶,重复3
5GUS染液
10.5M MESpH5.6
9.76g MES(啉乙磺酸钠)溶解于100ml MQ-water,pH5.6
2)固定液(0.3%甲醛,10mM MES pH5.6,0.3M甘露醇)
3750ul甲醛,2ul 0.5M
对象数据库
MES,5.46g甘露醇,加水至100ml
450mM NaPO4 Buffer(pH7.0)
57.7ml 1M Na2HPO4,42.3ml 1M NaH2PO4,加水稀释至2000ml
5) 组织化学染试剂X-Gluc
10g X-Gluc溶解于100ul的二甲基甲酰胺中,加50mM NaP04(pH7.0)10ml
670%的乙醇。
6.2 实验方法及操作过程
6.2.1蜡梅基因组DNA的提取、纯化
    蜡梅DNA的提取、纯化见3.2.2
6.2.2 hiTAIL-PCR法扩增启动子序列
1 引物设计
Liu等人改良的TAIL-PCR: hiTAIL-PCR法扩增蜡梅非特异性脂转移蛋白基因的启动子[280]。以已克隆到的腊梅CPLTP3CPLTP4基因5’端序列为基础,分别设计3条特异的巢式引物RB0,RB1,RB2,结合简并引物LADAC0/AC1,分别进行三轮扩增。
LAD1: 5-ACGATGGACTCCAGAGCGGCCGCVNVNNNGGAA-3
LAD2: 5-ACGATGGACTCCAGAGCGGCCGCBNBNNNGGTT-3
LAD3: 5-ACGATGGACTCCAGAGCGGCCGCVVNVNNNCCAC-3
LAD4: 5-ACGATGGACTCCAGAGCGGCCGCBDNBNNNCCAA-3
LAD5: 5-ACGATGGACTCCAGAGCGGCCGCBDNBNNNCGGT-3
AC0: 5-GGACGATGGACTCCAG-3
AC1: 5-ACGATGGACTCCAGAG-3
CPLTP3RB0: 5- GACGCTACCTGCCCACACGTGATTG -3
CPLTP3RB1:5-ACGATGGACTCCAGTCCGGCCCCACGTGAGGAGAGGCCAACAGCAA -3’
CPLTP3RB2:5-CAGCATCAGGCACACAACAACTCCG -3
CPLTP4RB0: 5- CCGGTTCTACTTGTTGAATGGGTGG -3
CPLTP4RB1:5-ACGATGGACTCCAGTCCGGCCCTACATGCTGCACCGGCACAGGCGC -3
CPLTP4RB2: 5-CAGAGTGTTGCGTCGGTGCCATTGC-3
2 hiTAIL-PCR过程
50ng的蜡梅基因组DNA为模板,用3个特异性的巢式引物和简并引物LAD1-5,AC0AC1为引物对,进行TAIL-PCR扩增。将预扩增的PCR产物稀释50被作为第一轮PCR扩增的模板,第一轮PCR。各轮PCR全高清视频直播系统反应体系及反应条件见6-1
6-1 TAIL-PCR的扩增体系、反应条件
Table 6-1 Amplif ication condition for TAIL -PCR
反应                  循环体系                  温度条件(时间)                循环数
Reaction              Cycling system /μL          Temperature condition ( Time)            Cycle No.
                      10 Ex-Taq Buffer      2        93ADICOLOR (2min) , 95 (1min)                1
                      25mM MgCl2            1.6      94 (30s) , 60 (1 min) 72(1min)        10
预扩增            2.5 mM dNTP        1.6      94女子冰球 (30s) , 25 (2min) , 72(3min)        1
Pre-amplification        20MLAD            1        94 (20s) , 48 (1min) , 72(3min)        25
                      6MAC0            1        72 (5min)                            1
6MRB0            1
genomic DNA        1
TaKaRa Ex-Taq DNAase    0.1
      ddH2O  up  to      20
第一轮扩增        10 Ex-Taq Buffer      2.5
Primary reaction      25mM MgCl2              2        94 (20s) , 65 (1min) , 72(2min)        1
              2.5 mM dNTP          2        94 (20s) , 68 (1min) , 72(3min)
                    6M AC1              1        94 (20s) , 68 (1min) , 72(3min)
                    6M RB1              1        94 (20s) , 50 (1min) , 72(3min)        13
                501st PCR  product      1        72(5min)                              1
TaKaRa Ex-Taq DNAase    0.2
                    ddH2O  up  to      25
第二轮扩增        10 Ex-Taq Buffer      2.5
Secondary reaction    25mM MgCl2              2        94 (20s) , 68 (1min) , 72(3min)
              2.5 mM dNTP          2        94 (20s) , 68 (1 min) , 72(3min)
                    6M AC1            1        94 (20 s) , 50 (1 min) , 72(3min)        7
                    6M RB1            1        72(5min)                              1
                102st PCR  product      1
TaKaRa Ex-Taq DNAase    0.2
                    ddH2O  up  to      25
  1%琼脂糖胶电泳。预扩增产物通常为涂抹状,在检查少数样品后,不必对所有预扩增产物电泳检测。同一样品的第一轮和第二轮产物在相邻的泳道电泳,特异产物产生相应的大小差异。将获得的PCR产物连接转化后送上海生工测序。
6.2.3 CpLTP3pro , CpLTP4pro启动子片段的获得
根据CpLTP3pro , CpLTP4pro启动子序列,设计含有HindIIIBamHI酶切位点的扩增引物:
FCpLTP3pro: 5- AAGCTT ATTACGATGGACTCCAGAGCGGC-3
      RCpLTP3pro: 5-GGATCCCTCCGCTTACTTACTCAGTCACACT-3
      FCpLTP4pro5- AAGCTT 年降雨量ATTACGATGGACTCCAGAGCGGC-3 
RCpLTP4pro5-GGATCCTTGATGGATTTCACAGAGAATTG-3
以蜡梅基因组DNA为模板进行 PCR扩增,25μl体系:
10ExTaq Buffer                  2.5L
MgCl2                                        1.5L   
dNTP                            1.0L
DNA                            1.0L
FCpLTPpro引物                  1.0L               
RCpLTPpro引物                  1.0L     
Ex Taq DNA聚合酶                0.5L (1U)
ddH2O                          16.5µL
Total                              25.0µL
PCR扩增条件为:95预变性5min95变性45s60退火45s, 72延伸1min30个循环;72延伸10minPCR扩增产物通过琼脂糖凝胶电泳检测。
6.2.4克隆载体pMD- CpLTP3propMD- CpLTP4pro的构建

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