胸腺素β10的生物学功能及临床应用研究进展

胸腺素β10的生物学功能及临床应用研究进展
张轶静,刘波,陈伟
湖北医药学院附属襄阳市第一人民医院,湖北襄阳441000
摘要:胸腺素β10(Tβ10)是一种肌动蛋白结合蛋白,主要通过与G-肌动蛋白单体结合阻止其向F-肌动蛋白转化来发挥生物学活性。Tβ10在细胞增殖、细胞凋亡、细胞迁移、血管及淋巴管生成、唾液腺及牙胚发育、炎症及免疫反应过程中均发挥重要作用。Tβ10可作为相关疾病诊断的分子诊断标记物。Tβ10与多种肿瘤的临床分期、预后密切相关,可能是预测患者不良预后的独立危险因素;Tβ10可用于肿瘤的靶向、软骨修复(如骨关节炎)及促进血管生成(如鹿Tβ10糖尿病足)等;Tβ10可用于帮助化疗患者分层并可能是增敏化疗的靶点。
关键词:胸腺素β10;肌动蛋白结合蛋白;细胞增殖;细胞凋亡;细胞迁移;血管生成;淋巴管生成;唾液腺发育;
牙胚发育;炎症反应;免疫反应
doi:10.3969/j.issn.1002-266X.2021.06.029
中图分类号:R318.5文献标志码:A文章编号:1002-266X(2021)06-0112-04
胸腺素是一种从小牛胸腺中分离出来的蛋白,根据等电点不同可分为α(PI<5)、β(5<PI<7)和γ(PI
>7)三种异构体,其中胸腺素β家族包含近20个多肽,由40~44个氨基酸组成,分子量约为5kDa[1]。胸腺素β可与单体肌动蛋白以1:1比例形成复合物,阻止肌动蛋白聚合成丝状形式,发挥参与细胞骨架重组、介导细胞运动、参与血管形成、炎症免疫反应[2-3]等多种生物学功能。胸腺素β10(Thymosin be‐ta10,Tβ10)是胸腺素β家族的重要成员之一,目前已被发现与甲状腺癌、肝癌、乳腺癌、肾细胞癌、食管癌、胆管癌、胰腺癌、膀胱癌、宫颈癌、黑素瘤、卵巢癌等多种恶性肿瘤的发生发展密切相关,表达特点与肿瘤类型相关。Tβ10在干燥综合征[4]、唐氏综合症[5]、银屑病[6]等非肿瘤性疾病中也存在差异性表达,但其在相关疾病发生发展中的功能和具体作用机制仍有待进一步研究。现将Tβ10的生物学功能及其临床应用情况最新研究进展综述如下。
1Tβ10的生物学功能
Tβ10最初在哺乳动物组织中被描述为胸腺素β4的类似物,是人类β-胸腺素的主要形式[7]。Tβ10在不同人体体液和组织中均有表达,主要存在于细胞质,编码基因定位于第2号染体p11.2位点,基因组位置84986274至84987310,包含3个外显子和2个内含子,分布在一个1.37kb的片段上[8-9]。Tβ10由43个氨基酸组成,氨基酸序列与Tβ4相差23%(10个氨基酸),对G-肌动蛋白的亲和力是Tβ4
的2倍[1]。Tβ10两端各有一个α螺旋,螺旋之间含有2个转角是Tβ10的主要结构特征,其中所含保守序列“17LKKTET22”作为公认的肌动蛋白结合基序发挥重要作用[10]。
1.1参与肿瘤细胞的增殖、迁移、侵袭及凋亡研究[11]发现,Cyclin A可促进细胞周期由S期向G2期/ M期转化,而Cyclin E则为细胞从G0期/G1期进入S 期的限速因子。Tβ10可促进多种肿瘤细胞的增殖。马丽等[12]研究证实,加入外源性Tβ10能增加肺癌A549细胞中Cyclin A、Cyclin E mRNA及蛋白的表达水平,抑制Tβ10功能后各指标表达水平降低,提示Tβ10可能通过促进Cyclin A、Cyclin E的表达影响细胞周期,促进细胞增殖。但曲连悦等[11]发现,加入外源性Tβ10可有效抑制卵巢癌细胞增殖,其具体机制有待进一步阐明。
Tβ10可通过与G-肌动蛋白结合,在细胞内形成充足的G-肌动蛋白储备,在细胞运动时迅速释放G-肌动蛋白,快速形成细胞运动所需F-肌动蛋白,促进肿瘤细胞的转移。沉默细胞Tβ10表达可降低乳腺癌细胞中蛋白激酶B(Akt)、糖原合酶激酶3β、叉头框转录因子4(FOXO4)及FOXO3磷酸化水平,过表达则会得出相反结果。将Akt激酶抑制剂哌立福辛应用于Tβ10过表达乳腺癌细胞时,细胞的迁移及侵袭均受到抑制,表明Tβ10可通过激活AKT/FOXO 通路,促进乳腺癌细胞的进展和转移[13]。LEE等[14]发现,Tβ10促进小鼠乳腺癌转移的作用机制可能为,Tβ10可上调基质金属蛋白酶2(MMP2)、MMP9、
基金项目:湖北省自然科学基金资助项目(2018CFB619);襄阳市医疗卫生项目科技研究开发及成果转化项目(襄科计[2016]75号);湖北医药学院研究生科技创新基金资助项目(YC2020025)。
112
骨髓基质细胞衍生因子1和信号转导与转录活化因子3mRNA表达。ZHANG等[15]通过检测Tβ10敲除前后肾细胞癌细胞中EMT相关标记基因表达变化发现,敲除Tβ10后细胞α-cadherin表达上调,Vimen‐
tin、Fibronectin、Snail、Twist表达下调,表明Tβ10可能通过诱导上皮—间质转化调节肿瘤细胞的转移。有学者[16]研究发现,沉默Tβ10表达可促进胆管癌细胞的迁移和侵袭,加速胆管癌模型小鼠肿瘤的转移,Ras-GTPase抑制剂FPTⅢ可有效阻断Tβ10沉默相关ERK1/2激活、Snail表达,表明Tβ10可能是通过抑制Ras、ERK1/2的激活,下调Snail、MMPs表达,促进胆管癌细胞的迁移和侵袭。FANNL等[17]研究发现,Tβ10可通过通过抑制肺癌A549细胞P53的表达,抑制细胞凋亡。Tβ10过表达后线粒体膜电位降低,活性氧簇(ROS)产生增加,同时,卵巢癌细胞中Fas、Caspase-3表达水平升高,表明Tβ10过表达可促进ROS表达,从而经由Fas途径促进人卵巢癌细胞的凋亡[18]。曲连悦等[11]研究发现,外源性Tβ10在卵巢癌细胞中的促凋亡作用可能是通过降低Bcl-2/BAX的比率
来实现的。牛红丹等[13]通过体外构建Tβ10超表达载体,Tβ10超表达可促进猪原代骨骼肌细胞(Pig skeletal muscle cells,PSC)凋亡,且细胞的ROS含量增多,BAX、热休克蛋白90(Heat shock proteins,HSP90)、HSP27和钙蛋白酶抑制蛋白表达增高,表明Tβ10过表达可能通过氧化应激引起PSC凋亡。
1.2参与血管生成血管生成异常是肿瘤、角膜新生血管、缺血性疾病和动脉粥样硬化等疾病发生发展的主要原因。Tβ10不仅是一种肌动蛋白结合蛋白,还可阻断参与血管生成的细胞信号级联。Tβ10的过表达可有效抑制内皮细胞增殖、迁移、侵袭、导管形成和血管萌芽等多种血管生成过程,其可能作用机制包括直接与Ras结合、抑制Ras激活的MEK/ ERK信号通路等[19]。Tβ10可通过干预肾透明细胞癌细胞中PI3K的磷酸化及VEGF的表达来影响血管生成。
与人Tβ10的作用相反,鹿Tβ10在小鼠主动脉弓试验和鸡绒毛膜尿膜囊试验中均课促进新生血管形成,且血管生成相关蛋白VEGF、VEGF-B、VEGF-C、VEGF-D及其受体VEGFR2、VEGFR3在过表达鹿Tβ10的人脐静脉内皮细胞中表达均升高。通过同源建模和分子动力学模拟发现,鹿Tβ10和人Tβ10有93%的同源性,两者都含有2个α-螺旋,但鹿Tβ10蛋白角度较小。相比而言,人Tβ10的分子结构更为稳定,而鹿Tβ10在分子结构上具有更高的灵活性,可能为其与其他功能蛋白相互作用提供结构基础[20]。
1.3参与淋巴管生成肿瘤淋巴管生成主要受VEGF-C、VEGF-D和VEGFR-3调控。LI等[16]发现,在肺癌SPC-A-1细胞中加入外源性Tβ10后,P-AKT 及VEGF-C蛋白水平随时间的延长逐渐升高,但是总AKT水平未见明显变化。而加入AKT通路特异性抑制剂LY294002后VEGF-C蛋白及mRNA水平明显下调。这说明Tβ10可能是通过促进AKT磷酸化激活进而促进VEGF-C表达影响淋巴管生成,从而促进肿瘤的淋巴结转移。
1.4参与唾液腺发育IAVARONE等[18]通过对人类胚胎和胎儿发育不同阶段的大、小唾液腺中Tβ10表达进行分析,发现Tβ10在腮腺和颌下腺中的表达水平最高,在小涎腺中的表达水平极低。Tβ10主要定位于幼龄(13周)胚胎的细胞外、20周未成熟导管细胞的细胞质、33周胎儿的腺泡细胞和导管腔内。胚胎发育不同阶段定位的变化提示其在不同胎龄中的不同作用:当定位于细胞外时,可发挥旁分泌作用,有利于发育不全上皮细胞的增殖、生长和分枝;当Tβ10定位于导管细胞的细胞质时,Tβ10可能有利于腺泡细胞的分化;最终在腺泡细胞细胞质和管腔内定位的Tβ10可能表示唾液腺完全成熟,导致Tβ10通过唾液分泌入口腔。IAVARONE等[19]也通过基于质谱的自上而下蛋白质组学方法验证了Tβ10在龈沟液中的表达。
1.5促进牙胚发育小鼠下颌骨、牙胚及小鼠牙髓细胞和小鼠牙上皮细胞中Tβ10表达上调,沉默Tβ10可有效抑制培养器官的牙胚发育及牙源性上皮和间充质细胞的增殖[20]。在生根阶段Tβ10在前成牙本质细胞和前成釉细胞中均有较强表达,表明Tβ10参与了牙根轮廓的形成和牙根的延伸。但Tβ10在牙
胚发育过程中的上下游信号转导途径尚不清楚,需要进一步研究。
1.6参与炎症及免疫反应乙型肝炎及肾炎模型小鼠血清Tβ10表达水平均升高。而在人体发生炎症反应或免疫反应时,单核巨噬细胞中的Tβ10表达水平也有所增加。
2Tβ10的临床应用
Tβ10可作为相关疾病诊断的分子诊断标记物。Tβ10与多种肿瘤的临床分期、预后密切相关,可能是预测患者不良预后的独立危险因素。Tβ10可用于肿瘤的靶向、软骨修复(如骨关节炎)及促进血管生成(如鹿Tβ10糖尿病足)等方面。Tβ10可用于帮助化疗患者分层并可能成为增敏化疗
113
延吉市十二中
的靶点。而通过设计Tβ10变体、替换天然启动子和融合TAT可增加其活性或更有针对性地发挥其临床应用价值。Tβ10在甲状腺乳头状癌、肺癌、乳腺癌、结肠癌、食管癌、膀胱癌、脑胶质瘤、人类皮肤黑素瘤等多数肿瘤组织中表达水平增高,乳腺癌、胰腺癌、肾癌、膀胱癌等肿瘤细胞及乳腺癌患者血清中
Tβ10的表达也明显高于正常对照组[21-26]。而相反,Tβ10在原发性胆管癌组织中表达较高,在转移性胆管癌中则显著减少[27]。Tβ10的mRNA和蛋白在正常卵巢组织中高表达,在所有浆液性癌、
黏液性癌和永生化卵巢癌细胞系中呈低表达[28]。Tβ10在肝细胞癌组织中的表达水平存在一定争议。曹骥等[29]研究发现,Tβ10的mRNA在肝癌组织中表达显著低于正常肝组织及癌旁肝组织,且对早期的肝癌患者癌组织Tβ10mRNA表达水平高于中晚期患者,提示随肝癌病情进展Tβ10的抑癌作用减弱。但SONG 等[30]发现,肝细胞癌组织中Tβ10mRNA和蛋白表达均高于邻近正常肝组织,高表达的Tβ10mRNA和蛋白可促进肝癌细胞的增殖、侵袭及迁移。
Tβ10高表达的乳腺癌患者化疗后的无病生存期长于Tβ10低表达患者,但在接受内分泌或未接受全身的患者中未见此现象,提示Tβ10可作为预测化疗反应的潜在指标,用于乳腺癌的患者分层[12]。
SIRINAPA等[31]发现,5-氟尿嘧啶作用于胆管癌细胞后Tβ10表达水平明显增高,通过建立5-氟尿嘧啶耐药的胆管癌细胞株M214-5FUR,发现M214-5FUR比胆管癌细胞M214相比,Tβ10表达水平增高了16倍,提示Tβ10参与胆管癌细胞对5-FU 的耐药。同时,进一步研究发现,用SiRNA沉默M214-5FUR中Tβ10表达显著降低ABC转运蛋白ABCC3的表达,表明Tβ10通过增强ABC转运蛋白的表达介导5-FU耐药。Tβ10可能作为预测5-FU耐药的生物标志物,并可能成为增敏化疗的靶点。但Tβ10在胆管癌患者多药耐药中可能的分子机制和信号通路尚有待进一步研究。
城市拆迁管理条例
Wiskott-Aldrich综合征蛋白同源区2(Wiskott-Aldrich syndrome protein homology2,WH2)结构域是
指C末端30个氨基酸序列的WASP同源结构域2。Tβ10中也存在WH2,直接介导N-WASP与单体肌动蛋白的结合。WH2/Tβ与G-肌动蛋白-ATP1:1结合到带刺末端,可增强基于肌动蛋白的运动能力,调节肌动蛋白的组装,具有Profilin样功能,促进肌动蛋白纤维形成。进一步理解WH2/βT结构域的结构-功能关系有助于更好控制β胸腺肽在细胞存活和修复的多效性,设计出对疾病更有效的Tβ变体[32]。
端粒酶逆转录酶(Telomerase reverse transcrip‐tase,TERT)已被证实在大多数肿瘤组织中高表达,而在正常组织中不表达。Kim等[18]通过构建重组腺病毒Ad.TERT.Tβ10将天然Tβ10基因启动子替换为人TERT启动子驱动Tβ10表达,发现Ad. TERT.Tβ10在人卵巢癌细胞与正常成纤维细胞共培养模型中显著诱导Tβ10的肿瘤特异性表达和凋亡,与抗癌药物(如紫杉醇和顺铂)联合应用后作用放大,提示Ad.TERT.Tβ10诱导的Tβ10肿瘤特异性过表达可能是一种有效、无副作用的卵巢癌方法。
融合反式转录激活因子(Transactivator of tran‐scription,TAT)具有极强的细胞穿透力,可介导10~100KDa蛋白进行细胞跨膜转运。JIA等[33]利用N端融合TAT,在大肠杆菌表达系统中成功表达出N端含有TAT的Tβ10重组蛋白,增加Tβ10活性。进一步功能分析结果表明,重组Tβ10蛋白在鸡胚绒毛尿膜囊实验和划痕实验中,可明显抑制血管生成、血管内皮细胞迁移。
综上所述,Tβ10作为一种天然小分子多肽,可参与多种类型肿瘤的发生、增殖、凋亡、侵袭和转移等。Tβ10在在疾病诊断、预后预测及中有广泛的应用前景。Tβ10在肿瘤中发挥的作用主要取决于恶性肿瘤组织类型和肿瘤细胞性质,且Tβ10作为肿瘤的生物标志物尚缺乏大样本的数据支持。因此深入阐明Tβ10在不同部位、不同类型恶性肿瘤中的作用机制和作用靶点,寻更多信号转导通路的关键节点,成为下一步研究Tβ10对肿瘤作用的重点。而Tβ10在血管生成、细胞生物学行为等生物学功能表现出的双向调节作用,以及鹿Tβ10和人Tβ10的结构功能差异,提示Tβ10在疾病中有多种可能性,因此,针对Tβ10的不同功能设计各种变体、根据需要诱导其特异性表达或增强其活性对于Tβ10广泛应用于临床同样至关重要。
参考文献:
[1]KUZAN A.Thymosin beta as an Actin-binding Protein with a Vari‐ety of Functions[J].Adv Clin Exp Med,2016,25(6):1331-1336.[2]ZOU S S,WANG J,LI BX,et al.Thymosin participates in antimi‐crobial immunity in zebrafish[J].Fish Shellfish Immunol,2019,87:371-378.
[3]CHEN W,YAN F,QIN S,et al.Molecular cloning,expression analysis,and the immune-related role of a thymosin beta in the
goldfish,Carassius auratus[J].Fish Physiol Biochem,2019,45(1):427-437.雄足球论坛
114
[4]BOSELLO S,PELUSO G,IAVARONE F,et al.Thymosin beta4 and beta10in Sjogren's syndrome:saliva proteomics and minor sali‐
vary glands expression[J].Arthritis Res Ther,2016,18(1):229.[5]LIN H,SUI W,LI W,et al.Integrated microRNA and protein ex‐pression analysis reveals novel microRNA regulation of targets in fe‐
tal down syndrome[J].Mol Med Rep,2016,14(5):4109-4118.[6]田畔,于浈,张振颖,等.银屑病患者骨髓造血干细胞差异表达基因的筛选与鉴定[J].中华皮肤科杂志,2011,44(6):407-410.[7]ERICKSON-VIITANEN S,RUGGIERI S,NATALINI P,et al.
Thymosin beta10,a new analog of thymosin beta4in mammalian
tissues[J].Arch Biochem Biophys,1983,225(2):407-413.[8]CABRAS T,IAVARONE F,MARTELLI C,et al.High-resolution mass spectrometry for thymosins detection and characterization
[J].Expert Opin Biol Ther,2015,15Suppl1:191-201.
培训经理认证[9]HOCH K,VOLK D E.Structures of Thymosin Proteins[J].Vi‐tam Horm,2016,102:1-24.
当心生活中的核辐射[10]ROSKOSKI R J.Cyclin-dependent protein serine/threonine ki‐nase inhibitors as anticancer drugs[J].Pharmacol Res,2019,139:471-488.
[11]曲连悦,蔡爽,姜明燕.人重组蛋白胸腺素B10促进卵巢癌细胞系SKOV3凋亡[J].基础医学与临床,2014,34(5):707-708.[12]马丽,石荣珍,邓九零,等.胸腺素β4和β10表达促进小鼠乳腺癌细胞转移[J].中国药理学与毒理学杂志,2018,32(7):565-572.
[13]牛红丹.GRα调控Tβ10致猪骨骼肌细胞氧化应激的研究[D].
武汉:华中农业大学,2018.
[14]LEE S H,SON M J,OH S H,et al.Thymosin beta10inhibits an‐giogenesis and tumor growth by interfering with Ras function[J].
雷诺护垫
Cancer Res,2005,65(1):137-148.
[15]ZHANG W,CHU W,LIU Q,et al.Deer thymosin beta10func‐tions as a novel factor for angiogenesis and chondrogenesis during
antler growth and regeneration[J].Stem Cell Res Ther,2018,9
(1):166.
[16]LI Z,QU L,ZHONG H,et al.Thymosin beta10prompted the VEGF-C expression in lung cancer cell[J].Zhongguo Fei Ai Za
Zhi,2014,17(5):378-383.
[17]FANNI D,GEROSA C,NEMOLATO S,et al.Thymosin beta10 expression in developing human salivary glands[J].Early Hum
Dev,2011,87(12):779-783.
[18]IAVARONE F,OLIANAS A,PATINI R,et al.Top down pro‐teomic analysis of gingival Crevicular fluid in deciduous,exfoliat‐
ing and permanent teeth in children[J].J Proteomics,2020,226:103890.
[19]SHIOTSUKA M,WADA H,KIYOSHIMA T,et al.The expres‐sion and function of thymosin beta10in tooth germ development
[J].Int J Dev Biol,2013,57(11-12):873-883.
[20]李建峰.TMSB10在结直肠癌中的表达及临床相关性分析[D].太原:山西医科大学,2019.
[21]LI Z,QU L,ZHONG H,et al.Mechanism of thymosin beta10in‐hibiting the apoptosis and prompting proliferation in A549cells
[J].Zhongguo Fei Ai Za Zhi,2014,17(11):783-788.
[22]ZHANG X,REN D,GUO L,et al.Thymosin beta10is a key reg‐ulator of tumorigenesis and metastasis and a novel serum marker
in breast cancer[J].Breast Cancer Res,2017,19(1):15.[23]张莹,孙思,王宽宇,等.胸腺素β10在脑胶质瘤中表达及其临床意义[J].肿瘤,2018,38(5):460-468.
[24]XIAO R,SHEN S,YU Y,et al.TMSB10promotes migration and invasion of cancer cells and is a novel prognostic marker for renal
cell carcinoma[J].Int J Clin Exp Pathol,2019,12(1):305-312.[25]PAN Q,CHENG G,LIU Y,et al.TMSB10acts as a biomarker and promotes progression of clear cell renal cell carcinoma[J].
Int J Oncol,2020,56(5):1101-1114.
[26]WANG B,WANG Z,ZHANG T,et al.Overexpression of thymo‐sin beta10correlates with disease progression and poor prognosis
in bladder cancer[J].Exp Ther Med,2019,18(5):3759-3766.[27]SRIBENJA S,SAWANYAWISUTH K,KRAIKLANG R,et al.
Suppression of thymosin beta10increases cell migration and me‐
tastasis of cholangiocarcinoma[J].BMC Cancer,2013,13:430.[28]Kim Y C,Kim B G,Lee J H.Thymosin beta10expression driven by the human TERT promoter induces ovarian cancer-specific
apoptosis through ROS production[J].PLoS One,2012,7(5):35399.
[29]曹骥,杨春,李丽萍,等.胸腺素β10在肝细胞癌中的表达及其临床意义[J].中国癌症防治杂志,2009,1(2):121-123.[30]SONG C,SU Z,GUO J.Thymosin beta10is overexpressed and associated with unfavorable prognosis in hepatocellular carcinoma
[J].Biosci Rep,2019,39(3):BSR20182355.
[31]SRIBENJA S,NATTHASIRIKUL N,VAETEEWOOTTACHARN K,et al.Thymosin beta10as a predictive biomarker of response
to5-fluorouracil chemotherapy in cholangiocarcinoma[J].Ann
Hepatol,2016,15(4):577-585.
[32]RENAULT L.Intrinsic,Functional,and Structural Properties of beta-Thymosins and beta-Thymosin/WH2Domains in the Regula‐
tion and Coordination of Actin Self-Assembly Dynamics and Cyto‐
skeleton Remodeling[J].Vitam Horm,2016,102:25-54.[33]JIA K,LIN M,KONG D,et al.Recombinant Expression and Bio‐activity Characterization of TAT-Fused Thymosin beta10[J].Pro‐
tein J,2019,38(6):675-682.
(收稿日期:2020-09-27)
115

本文发布于:2024-09-21 19:00:44,感谢您对本站的认可!

本文链接:https://www.17tex.com/xueshu/251675.html

版权声明:本站内容均来自互联网,仅供演示用,请勿用于商业和其他非法用途。如果侵犯了您的权益请与我们联系,我们将在24小时内删除。

标签:细胞   表达   肿瘤   促进   蛋白   血管   肌动蛋白
留言与评论(共有 0 条评论)
   
验证码:
Copyright ©2019-2024 Comsenz Inc.Powered by © 易纺专利技术学习网 豫ICP备2022007602号 豫公网安备41160202000603 站长QQ:729038198 关于我们 投诉建议