免疫荧光技术的几种实验方法及其分类免疫荧光技术的几种实验方法及其分类1、免疫标记法及其分类 1）荧光免疫法：
原理是应用一对单克隆抗体的夹心法。底物用磷酸-4-甲基伞形酮，检测产物发出的荧光，荧光强度与Mb浓度呈正比，可在8min内得出结果。结果以Mb每小时释放的速率表示(△Mb)表示。该法重复性好，线性范围宽，具有快速、敏感、准确的特点。 以双抗夹心法为例，首先将特异性抗体与固相载体连接，形成固相抗体。除去未结合抗体，然后加受检标本，使其中的蛋白抗原与固相抗体形成抗原抗体复合物。洗涤除去未结合物，接着加入荧光标记的抗体，使之与抗原特异性结合，形成抗体—抗原—抗体复合物。最后根据荧光强度，即可对蛋白抗原进行定量。 传统的荧光免疫法受本底荧光的干扰较大，时间分辨荧光免疫测定法是以具有特长寿命的稀土金属如铕，作为标记物，加入正常液后激发测定，能有效去除短寿命本底荧光的干扰。
2）放射免疫法
放射免疫法是以过量的未标记抗原与放射性物质标记的抗原，竞争性地与抗体结合，形成有放射性的抗原—抗体复合物与无放射性的抗原—抗体复合物，并有过剩的标记抗原与未标记的抗原。然后通过离心沉淀等方法，将抗原—抗体复合物与游离抗原分离，分别测定其放射性强度与标准曲线比较，即可对未标记的待测抗原进行定量。
cc2000RIA法测定血清蛋白灵敏度高、特异性强，可准确定量到ng／ml水平。但早期的方法操作麻烦，耗时长，且有放射性污染。近年来，随着单克隆抗体的应用，RIA的灵敏度又有了较大提高，且操作大为简化，并已有商品试剂盒供应，使用方便。
3）酶联免疫法(ELISA)
ELISA法有竞争法和夹心法两种。竞争法是基于标准或血清Mb和微孑L 板上包被的Mb竞争性地与单克隆抗体相结合的原理而建立，该法的最低检测限为10μg／L，线性范围达1 000ug／L。夹心ELISA法与EIA具有良好的相关性(r＝0.92)。ELISA法具有灵敏度高，特异性强，精密度好，操作简单，适用于多份标本的检测，不需特殊仪器设备等优点，易于推广普及。但不适合急诊的快速检测。
以双抗法为例。首先包被抗原，然后加入一抗，使一抗与包被抗原形成抗原—抗体复合物。接着加入酶标二抗，形成抗原—抗体—抗体复合物。最后加入底物，由酶催化底物生成产物。通过产物的生成量即可对蛋白抗原进行定量。 4）偶联生物素—亲和素系统的酶免法
利用了一个亲和素分子可以与4个生物素分子结合的特性，使传统的灵敏度较高的酶免法的灵敏度又有明显的放大作用。
5）时间分辨荧光免疫分析
时间分辨荧光免疫分析（Time resolved Fluor immunoassay，TRFIA）是一种非同位素免疫分析技术，它用镧系元素标记抗原或抗体，根据镧系元素螯合物的发光特点，用时间分辨技术测量荧光，同时检测波长和时间两个参数进行
信号分辨，可有效地排除非特异荧光的干扰，极大地提高了分析灵敏度。
6）解离增强镧系元素荧光免疫分析
解离增强镧系元素荧光免疫分析（Dissociation Enhanced Lanthanide Fluor immunoassay DELFIA）是时间分辨荧光免疫分析中的一种。它用具有双功能基团结构的螯合剂，使其一端与铕（Eu）连接，另一端与抗体/抗原分子上的自由氨基连接，形成EU标记的抗体/抗原，经过免疫反应之后生成免疫复合物。由于这种复合物在水中的荧光强度非常弱，因此加入一种增强剂，使Eu3 从复合物上解离下来，自由Eu3 同增强剂中的另一种螯合剂螯合形成一种胶态分子团，这种分子团在紫外光的激发下能发出很强的荧光，信号增强了百万倍。因为这种分析方法使用了解离增强步骤，因此称为解离增强镧系元素荧光免疫分析。
2、荧光抗体染方法及其分类
1）直接染法
将标记的特异荧光抗体直接加在抗原标本上，经一定温度和时间的染，洗去未参加反应的多余荧光抗体，在荧光显微镜下便可见到被检抗原与荧光抗体形成的特异性结合物而发出的荧光。直接染法的优点是：特异性高，操作简便，比较快速。缺点是：一种标记抗体只能检查一种抗原，敏感性较差。直接法应设阴、阳性标本对照，抑制试验对照。
萧子升2）间接染法
如果检查未知抗原，先用已知未标记的特异抗体（第一抗体）与抗原标本进行反应，作用一定时间后，洗去未反应的抗体，再用标记的抗抗体即抗球蛋白抗体（第二抗体）与抗原标本反应，如果第一步中的抗原抗体互相发生了反应，则抗体被固定或与荧光素标记的抗抗体结合，形成抗原-抗体-抗抗体复合物，再洗去未反应的标记抗抗体，在荧光显微镜下可见荧光。在间接染法中，第一步使用的未用荧光素标记的抗体起着双重作用，对抗原来说起抗体的作用，对第二步的抗抗体又起抗原作用。如果检查未知抗体则抗原标本为已知的待检血清为第一抗体，基他步骤和检查抗原相同。
由于免疫球蛋白有种属特异性，因此标记的抗球蛋白抗体必须用第一抗体同种的动物血清球蛋白免疫其他动物来制备。
ibm x22
间接染法的优点是既能检查未知抗原，也能检查求知抗体；用一种标记的抗球蛋白抗体，能与在种属上相同的所有动物的抗体结合，检查各种未知抗原或抗体，敏感性高。缺点是：由于参加反应的因素较多，受干扰的可能性也较大，判定结果有时较难，操作繁琐，对照较多，时间长。间接法应设阴、阳性标本对照，还应设有中间层对照（即中间层加阴性血清代替阳性血清）。
3）抗补体染法
文天祥传抗补体染法简称补体法，是间接染法的一种改良法，首先由Goldwasser等建立。本法利用补体结合反应的原理，用荧光素标记抗补体抗体，鉴定未知抗原或未知抗体（待检血清）。染程序也分二步：先将未标记的抗体和补体加在抗原标本上，使其发生反应，水洗，然后再加标记的抗补体抗体。如果第一步中抗原抗体发生反应，形成复合物，则补体便被抗原抗体复合物结合，第二步加入的荧光素标记的抗补体抗体便与补体发生特异性反应，使之形成抗原-抗体-补体-抗补体抗体复合物，发出荧光。
抗补体染法具有和间接法相同的优点，此外，还有其独特的优点：即只需要一种标记抗补体抗体，便能检测各种抗原-抗体系统。因为补体的作用没有特异性，它可以与任何哺乳动物的抗原-抗体系统发生反应。它的缺点是参与反
应的成分多，染程序较复杂，比较麻烦。
除上述三种方法外，还有在此基础上演变出的一些方法，如双层法、夹心法、混合法、三层法、抗体-抗补体法等等。
3、荧光抗体的制备
1）免疫血清的制备及免疫球蛋白的提纯
制备高效价的特异性抗血清是免疫荧光技术成功的前提。为此，用于免疫的抗原必须高度提纯，尽可能不含其他非特异性的抗抗原物质，血清的效价与特异性是矛盾的，通常以高效价的免疫血清为好，因为用这种血清制备荧光抗体，即使其中含有少量非特异抗体，也可以通过稀释法将其除去。为提高血清效价，在制备免疫原时，通常采用大剂量加佐剂，长程免疫，其中以弗氏不完全佐剂最常用。即按抗原1份，无水羊毛脂1份，液体石蜡2份混合，待充分乳化后，免疫动物，即可能获得高效价的免疫血清。用于荧光素标记的免疫血清，需提纯后使用，这样不但可以提高抗体的效价，而且还可以排除γ球蛋白以外的蛋白质，减少非特异性荧光的出现。从免疫血清中将特异性抗体提纯于荧光素标记是免疫荧光技术的关键一环。在免疫荧光技术中所应用的特异性抗体，主要是IgG类，其提纯方法很多，但以饱和硫酸铵盐析法比较简便，也可用分子筛层析法（即葡聚糖凝胶过滤），以及离子交换层析法等，或先用盐析法精提，然后再经过层析柱进一步纯化。
4、镜检标本片的制备
荧光抗体染是显微镜标本上的抗原—抗体反应。采集病料以后，必须制成镜检标本。作为检测抗原目的标本片，细菌检样如血液、脓汁、粪便、分泌物等可进行涂片；病毒检样可将组织进行冰冻切片或石蜡封片，或将病毒材料接种细胞进行培养，作成单层盖片。如为检测抗体的标本片，可直接作标准菌株涂片或用标准毒株接种细胞培养，作成单层盖片。
1）制片
涂片和压印片是诊断工作中最常用的方法。涂片方法按常规进行。压印片是将被检组织块切开，用滤纸吸干切面的血液之后，以载玻片在切面上轻压，使之粘上1—2层细胞。
(1)冰冻切片：
将感染的动物组织切成约3mm2 的小块，置冷台上，以6％明胶液作支持物，迅速冷冻至-15℃——-20℃后压片。切片厚4--8μm，用载玻片贴片，丙酮固定，准备染。
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(2)石蜡切片：
将病理组织切成3mm2 的小块，浸入95％酒精1h，再分别通过无水酒精4缸各10min，通过二甲苯3缸各10min，通过56—58度融蜡包埋各16min随后制片，漂浮于40度水中，立即用载玻片捞出（不超过1min）。室温或37度干燥后，通过二甲苯3缸各3min，顺序通过95％、80％、60％、40％酒精各1mi
n去二甲苯，再以PH值7.4PBS蘸浸3次各3min，干燥后染。
(3)组织培养单层细胞：
将盖玻片切成宽4—5mm的小玻片，装入小培养瓶内，按常规方法培养接种病毒的敏感细胞。待细胞在玻片上长成单层后，即可接种病料，经不同时间后（随病毒种类而异），取出被感染的细胞玻片，在PBS液中涮洗，干燥，置丙酮中固定后，准备染。
2）荧光素的标记
能够产生明显荧光并能作为染料使用的有机化合物称为荧光素或荧光染料。用于标记抗体的荧光素，必须具有化学上的活性基因，能与蛋白质稳定结合，且不影响标记抗体的生物活性及抗原抗体的特异性结合。适于标记蛋白的荧光素主要有异硫氰酸荧光黄（fluorescein isothiocyanate，FITC），四乙基罗达明（rho-damine B200，RB200）和四甲基异硫氰基罗达明(tetramethyl rhodamine isotheynate，TMRITC)。实际上目前应用最多的只有异硫氰酸荧光黄一种。
(1)FITC标记
FITC为黄结晶形粉末，分子量为389，易溶于水和酒精等溶剂中，溶解后呈黄绿荧光，最大吸收光谱为490-495nm，FITC的溶液不稳定，易因水解或迭聚而变质，故需在配好后2h内应用。
FITC含有异硫氰基，在碱性条件下能与IgG的自由氨基（主要是赖氨酸的ε-氨基）结合，形成荧光抗体结合物。一个分子的IgG有86个赖氨酸残基，但一般最多只能标记15-20个。
① 直接标记法
护理学基础精品课程取抗体球蛋白溶液10ml，碳酸盐缓冲液3ml，生理盐水17ml，混合，在4℃电磁搅拌下加FITC3mg （先溶解在3ml缓冲液中），在4℃继续搅拌4-6h，将结合物通过已平衡好的Sephadex G25柱，以除去未结合的游离荧光素。
② 透析标记法
将抗体球蛋白溶液用碳酸盐缓冲液（0.25mol/L，pH9.0调动1% (W/V )，并装入透析袋中，按蛋白质量的1/20称取FITC溶于10倍抗体溶液量的碳酸盐缓冲液中，将透析袋浸没于FITC液中，于4℃搅拌16-18h取出透析袋于0.01mol/L，pH7.2PBS中透析4h，将结合物通过已平衡好的Sephadex G25柱，去除游离荧光素。
(2)RB200标记
本品为无定形褐红粉末，不溶于水，易溶于酒精和丙酮，性质稳定，可长期保存，分子量为580，最大吸收光谱为570nm，呈明亮的橙荧光，因与FITC的黄绿有明显区别，故被广泛用于对比染
或用于两种不同颜的荧光抗体的双重染。方法为：取1g RB200及五氯化磷（PCL5）2g放乳钵中研磨5min （在毒气操作橱中），加 10ml无水丙酮，放置5min，随时搅拌，过滤，用所得溶液进行结合。将每亳升血清用1ml生理盐水及1ml碳酸盐缓冲液（0.5mol/L，pH9.5）稀释，逐滴加入0.1ml RB200溶液，随加随搅拌，在0-4℃继续搅拌 12-18h。
(3)TMRITC标记
TMRITC为紫红粉末，性能比较稳定，分子量为443，最大吸收光谱为550nm，呈橙红荧光。其
结合方法与FITC的直接标记法相同，只是所加素量为蛋白质量的1/30-1/40，结合时间持续16-18h。 (4)影响标记的主要因素
温度、时间、酸碱度和标记量4个因素。温度低，标记时间长，温度高，标记时间应短。FITC0-4℃以6-12h为宜，20-25℃以1-2h为宜，37℃30-45min为宜。pH低时，标记较慢，pH值偏高（大于10），抗体易变性，pH值9.0-9.5最为适宜。抗体蛋白含量低，标记慢，以每毫升含20-25mg蛋白为宜。至于标记方法，各有特点，但均不能去除非特异荧光染因素。透析法适用于小体积的标记。
3）标记抗体的纯化
抗体标记以后，应立即进行纯化处理，以消除或降低非特异性染和特异交叉染。其步骤如下：标
记抗体溶液
↓透析或凝胶过滤
去除游离荧光素
（粗制荧光抗体）
↓DEAE-纤维素层析
去除过度标记的蛋白分子
（精制荧光抗体）
↓抗原交叉吸收或组织制剂吸收
去除特异交叉反应的标记杭体
（免疫纯荧光抗体）
根据免疫荧光试剂的具体用途，纯化的方法可以不同，并不是每一种荧光试剂都须经过以上全部过程。
对于某些细菌诊断试剂，只要除去游离荧光素就可以，检测病毒抗原的荧光抗体一般要求下述处理： (1)游离荧光素的去除
去除标记过程中未与蛋白质结合的游离荧光素，是纯化标记试剂的最基本要求，不经过这一步处理，任何免疫荧光试剂都不能应用。
① 半透膜透析法
利用荧光素分子可以通过半透膜，而蛋白分子则因分子量大不能通过的原理，逐步将游离素除去。先将标记好的抗体溶液装于透析袋或玻璃纸袋内，注意使液面上留有一定空间，扎紧袋口，先用流动自来水透析5 min，再转入PBS ( 0.01mol/L，pH7.2)或生理盐水中继续透析，外液量至少大于内液量100倍，透析应在低温（0-4℃）下进行，每天换液3-4次，整个透析时间约需1周左右，时间过长容易造成蛋白质变性，影响荧光抗体的质量。取透析液（外液）以紫外线灯检查，若无荧光出现，即可停止透析。
② 凝胶过滤法
利用荧光素分子和蛋白质分子量的悬殊差别，通过分子筛除去游离荧光素，一般1h以内即能完成操作，但最好与透析法结合进行。先将标记抗体溶液透析 4 h，除去大部分游离荧光素和其他小分子物
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