菠萝蛋白酶的提取、分离纯化及活性测定

菠萝蛋白酶的提取、初步分离纯化及活性测定
15食安(1)班  张凯 
摘要研究运用硫酸铵沉淀法透析法结合考马斯亮蓝G520染法测定菠萝皮中蛋白酶活性蛋白质含量得到同一品种成熟度的菠萝皮经两种不同的纯化方法处理,菠萝皮中的蛋白酶都被有效纯化,蛋白酶活性会损失一部分
关键词:菠萝蛋白酶;透析法;分离纯化;酶活性;
前    言
菠萝蛋白酶(bromelain)是从菠萝植株中提取的一类蛋白水解酶的总称,主要存在于菠萝茎和果实中,根据提取部位的不同,分为茎菠萝蛋白酶和果菠萝蛋白酶。Marcano于1891年研究发现菠萝汁中含有蛋白酶。随后,人们对菠萝蛋白酶展开了一系列研究,发现其在医药和化工领域有很好的利用价值。1957年,Heineche等从菠萝茎中提取得到蛋白质水解酶,从而使菠萝蛋白酶实现商品化生产。目前,菠萝蛋白酶的一些功能成分已得到成功分离,并应用于医药领域。随着提取纯化技术的不断进步,高活性的菠萝蛋白酶将广泛应用于医药、化工和食品领域。[1]
利用菠萝皮分离纯化菠萝蛋白酶,不仅可充分利用资源,拓展菠萝蛋白酶的获取途径和应用空间,还可降低菠萝加工废料对环境的污染;随着市场对菠萝加工产品需求量的增大,对于菠萝皮的研究与利用就显得尤为重要,尤其对最主要的功能成分蛋白酶的分离、纯化与性质的研究更有意义[2]
本文通过对菠萝皮蛋白酶的提取,初步分离纯化及活性测定进行了初步研究,探讨影响菠萝蛋白酶活性的影响因素并解决实验存在的一些问题。
1 实验材料与仪器
11实验材料与试剂
新鲜菠萝,透析袋(截留相对分子质量8 000~14 000),0.1mo1/L pH 7.8磷酸缓冲液配制(PBS),0.01mo1/L pH 7.8磷酸缓冲液配制(PBS),1%酪蛋白,激活剂[含20mmo1/L半胱氨酸-盐酸盐、1mmo1/L EDTA-Na2 (乙二胺四乙酸二钠)],10%三(TCA)。
1.2 实验仪器
722型可见光分光光度计:上海舜宇恒平科学仪器有限公司;
752型光栅分光光度计:北京光学仪器厂;
TDL-60B台式离心机:上海安宁科学仪器厂;
D5M离心机:长沙湘智离心机仪器有限公司;
DK-8D电热恒温水浴锅:上海森信实验仪器有限公司;
可控硅恒温水浴锅:上海锦屏仪器仪表有限公司;
AMPUT电子天平:深圳安普特科技有限公司;
BS110S分析天平北京赛多利斯天平有限公司;
DS-1型高速组织捣碎机:上海标本模型厂;
HZS-H型水浴振荡器:哈尔滨市东联电子技术开发有限公司。
2 实验方法
2.1菠萝蛋白酶的粗酶提取
称取菠萝皮材料20g,将菠萝皮在清水中洗净,沥干,切成小段后置于超高速搅拌机中,加入约60mL预冷的0.1mo1/L pH 7.8 PBS,持续搅拌10~15min至粉碎,搅拌完成后用4层纱布过滤,得到滤液后,用冷冻离心机于4°C 3000rpm离心6min,弃沉淀,即得到菠萝蛋白酶粗提液,测定粗提液的体积、蛋白质含量和酶活性。
2.2盐析
-,研磨呈粉末,慢慢小量分次向酶提取液中添加固体硫酸铵,边加边搅拌,使溶液最终硫酸铵饱和度为30%,放置于冰水混合物(4℃)30min 后,酶蛋白沉淀析出,4°C 4000rpm离心10min,收集沉淀, 加入0.1mo1/L pH 7.8 PBS约15mL至完全溶解,测定其体积、蛋白质含量和酶活性。
2.3透析
将溶解液装入2.5 cm×8cm透析袋(预先将透析袋在蒸馏水中煮沸30min)中,于 500mL 烧杯中,在磁力搅拌器搅拌下用蒸馏水透析,15min换水一次,换水3~4次后,检查SO42-是否已被除净(检查的方法是:取2mLBaCl2溶液放入一支试管,滴加2~3滴透析外液
至试管中,若出现白沉淀,表示SO42- 未除净,若无沉淀出现,表示透析完全)。若透析液有沉淀,将透析液用滤纸过滤,测定过滤液的体积、蛋白质含量和酶活性。
2.4酶活力测定方法
取2支试管,设置一支为实验对照,三支为平行样品。取0.1mL酶液,加入0.9mL激活剂,加入37℃预热的1%酪蛋白溶液1mL,准确反应10min,加入10%三3mL反应终止酶反应。对照管先加入10%三溶液,后加酪蛋白溶液,其它与测定管相同。离心(3000r/min,5min)或过滤,清液于280nm波长下测定光吸收值。酶活单位定义:在上述条件下 ,每10min增加0.001个光吸收值为1个酶单位(U)。
实验步骤按照表格中完成。
表1 酶活测定步骤
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试剂(ml)
对照组
平行样品1
平行样品2
平行样品3
TCA
3
酶液
0.1
0.1
0.1
0.1
激活剂
0.9
0.9
0.9
0.9
酪蛋白
1
1
1
1
37°C准确反应10min
TCA
3
3
3
A280nm OD值
粗提
0.791
0.818
0.868
盐析
0.823
0.907
0.986
透析
0.894
0.875
0.848
2.5蛋白质含量测定方法
将酶液稀释至一定程度,采用考马斯亮兰G-250法测定溶液中可溶性蛋白的含量(参照附录1)。
3实验结果与分析
3.1 蛋白质含量计算
3.1.1标准曲线的绘制
表X 0-1000ug/ml标准曲线的绘制
协查通报格式
管号
1
2
3
4
5
6
1000μg/mL牛血清白蛋白
0
0.2
0.4
0.6
0.8
1.0
蒸馏水(mL)
1.0
线上线下作文
0.8
0.6
0.4
0.2
0
蛋白质浓度(μg/mL)
0
200
40
600
800
1000
吸光值(A595)
0
0.157
0.245
0.391
0.535
天堂419草坪0.656
得到从1到6号管的牛血清白蛋白溶液浓度分别为0、200、400、600、800、1000μg/mL,准确吸取各管溶液0.lmL,加入5ml考马斯亮蓝溶液,摇匀,静置2min,测定595nm吸光值,绘制0-1000μg/mL标准曲线。
图1 蛋白吸光值标准曲线
3.1.2样品的测定
准确吸取样品溶液0.1mL放入具塞刻度试管中,与步骤(1)操作相同,测得样品的光吸收值A595nm
3.1.3结果计算
由标准曲线可查出相应的蛋白浓度(μg/mL),可按如下公式计算出样品中蛋白含量。
                      查出的蛋白提取液浓度(μg/mL)×定容体积(mL)
样品蛋白含量(μg/g鲜重)=──────────────────────────────────────
                      样品重量(g)
样品蛋白质含量(粗提纯)=(517.7×62)/20.00=1604.9(µg/g)
样品蛋白质含量(盐析)=(706×16)/20.00=564.8(µg/g)
样品蛋白质含量(透析)=(1017.7×13)/20.00=661.5(µg/g)
3.2酶活力计算
最后酶活结果取3次重复实验的平均值。           
酶液活力(U/mL)=                      ×稀释倍数
步骤
空白
平行1
平行2
平行3
平均值
A280nm OD值
粗提
0.791
0.818
0.868
0.826
盐析
0.823
0.907
0.986
0.905
透析
0.894
0.875
0.848
0.872
粗酶液活力(U/mL)= =8257 U/mL
盐析液活力(U/mL)= =9053 U/mL
透析酶液活力(U/mL)= =8723 U/mL
3.3酶比活的计算
酶比活(U/mg· 蛋白)=酶活力/酶蛋白质含量
粗酶比活(U/mg• 蛋白)爱情不买单 丁酉酉= =5141.8(U/mg• 蛋白)
盐析酶比活(U/mg• 蛋白)= = 16029.3(U/mg• 蛋白)

本文发布于:2024-09-22 18:28:45,感谢您对本站的认可!

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