【 目的 】
1 ． 掌握盐析 - 层析法提纯血清 γ- 球蛋白的原理和技术。
2 ． 熟悉电泳比较法定性 γ- 球蛋白的方法。
3 ．了解扫描定量 γ- 球蛋白的方法。
【 原理 】
蛋白质的分离、纯化是研究蛋白质化学性质及生物学功能的重要手段。根据不同蛋白质的分子量、溶解度以及在一定条件下带电荷性状的差异来分离、纯化各种蛋白质。 1 ． γ- 球蛋白的分离、纯化
（ 1 ）盐析：清蛋白与球蛋白的稳定性不同，故可用盐析法对血清蛋白质初步分离。在半饱和硫酸铵溶液中，清蛋白不沉淀，球蛋白沉淀，离心所得的沉淀即是球蛋白混合物。
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（ 2 ）脱盐：球蛋白混合物中的硫酸铵会妨碍进一步分离纯化，应除去。脱盐的方法有多种，本试验采用凝胶过滤。 江苏健康网
在凝胶过滤中，柱中的填充料是高度水化的惰性多聚物，最常用的有葡聚糖凝胶（ Sephadex Gel ）和琼脂糖凝胶 (Agarose Gel) 等颗粒。葡聚糖凝胶是具有不同交联度的网状结构物，它的 “ 网眼 ” 大小可以通过交联剂与葡聚糖的配比来达到。不同型号的葡聚糖凝胶可用来分离和纯化不同分子大小的物质。把葡聚糖凝胶装在层析柱中，不同分子大小的蛋白质混合液借助重力通过层析柱时，比 “ 网眼 ” 大的蛋白质分子不能进入网格中，而被排阻在凝胶颗粒之外，随着洗脱剂在凝胶颗粒的外围而流出。比 ‘ 网眼 ' 小的分子则进入凝胶颗粒内部。这样，由于不同大小的分子所经路程距离不同而得到分离。大分子物质先被洗脱出来，小分子物质后被洗脱出来。所以含硫酸铵的蛋白值溶液通过层析柱时，先被洗脱出层析柱的是球蛋白，小分子硫酸铵由此法分离除去（参见第 2 篇第 2 章 图 2-3 ） 。
（ 3 ）纯化： γ- 球蛋白与 α 、 β- 球蛋白（以及微量的清蛋白），等电点不同，所以采用离子交换层析，从球蛋白混合物中分离、提纯出 γ- 球蛋白。
用于蛋白质分离的层析材料多是离子交换纤维素，它们的优点是对蛋白质的交换容量较一般的离子交换树脂大，而且品种较多，可以适用于各种分离目的。常用的阳离子交换剂有弱酸性的羧甲基纤维素（ CM-C ），常用的阴离子交换剂有弱碱性二乙基氨基乙基纤维素（ DEAE-C ）（图 3 -6 ）。 图 3-6 两种离子交换纤维素
蛋白质混合物与离子交换纤维素的酸性或碱性基团相结合。蛋白质对固相离子交换剂的结合力取决于彼此间相反电荷基团的静电吸引，而后者又与溶液 pH 有关。因为 pH 决定离子交换剂与蛋白质的电离程度。盐类的存在可以降低离子交换剂的离子基团和蛋白质的相反电荷基团之间的静电相互吸引。因此蛋白质混合物的分离可由改变溶液中盐类离子强度和 pH 来完成，对离子交换剂结合力量小的蛋白质首先由层析柱中洗脱出来。
DEAE- 纤维素，在偏酸环境中带正电荷，而血清蛋白质的 pI 分别为：清蛋白 pI4.9 、 α
、 β- 球蛋白 pI ＜ 6 、 γ- 球蛋白 pI7.3 。
选用 0.02mol/L pH6.5 醋酸铵 (NH 4 AC ) 缓冲液，即可使 DEAE- 纤维素带正电荷，又可使 α 、 β- 球蛋白 ( 及清蛋白 ) 带负电荷而与 DEAE- 纤维素结合，唯有 γ- 球蛋白带正电荷，不与 DEAE- 纤维素结合首先从层析柱中洗脱出来，收集得到的即是纯化的 γ- 球蛋白。
（ 4 ）浓缩：浓缩的方法很多，本实验借助葡聚糖凝胶富含羟基，善吸水不允许大分子蛋白质进入微孔的特性，在样品溶液中酌情加少量凝胶，浓缩蛋白。
2 ． 鉴定
（ 1 ）定性分析：在同样条件下，同种蛋白质的电泳位置相同。用醋酸纤维薄膜电泳，以全血清的电泳图谱为对照，即可通过比较法鉴定出所分离蛋白质的种类和纯度 ( 电泳原理请参见第 3 篇第 1 章实验 4 ) 。
（ 2 ）定量分析：将电泳后的透明薄膜放入自动扫描吸光度仪内扫描定量 γ- 球蛋白。正常血清蛋白各组分的含量见表 3-6 。
表 3-6 正常血清蛋白各组分的含量
蛋白质种类 | 正常值 |
清蛋白 | 60 ～ 70% |
α 1 - 球蛋白 | 2 ～ 3.5% |
| 中国国家安全委员会 α 2 - 球蛋白 | 4 ～ 7% |
Β- 球蛋白 | 9 ～ 11% |
γ- 球蛋白 | 12 ～ 18% |
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【 中国加入世贸组织器材 】
1 ． 离心机
2 ． 层析柱及填料
3 ． 电泳仪及电泳槽
4 ． 吸光度值
5 ． 兔血清
【 试剂 】
1 ． 饱和硫酸铵溶液
称固体硫酸铵 850g 加到 1000ml 蒸馏水中。在 70 ～ 80 ℃ 下搅拌促溶。室温下放置过夜，瓶底析出白晶体，上清即为饱和硫酸铵溶液。
2 ． 0.3mol/L ， pH6.5 醋酸铵溶液
称醋酸铵 (CH 3 COONH 4 ) 23.11g ，加蒸馏水约 800ml 溶解之。用 pH 计检测，在电磁搅拌下用稀氨水或醋酸溶液准确调至 PH6.5 ，再加蒸馏水至 1000ml 。
3 ． 0.02mol/L ， pH6.5 醋酸铵溶液
取配置好的 0.3mol/L pH6.5 醋酸铵液用蒸馏水做 15 倍稀释。
4 ． 1.5mol/L NaCl-0.3mol/L NH 4 Ac ( 醋酸铵 ) 溶液
称取 NaCl 87.7g 加 0.3mol/L pH6.5NH 4 Ac 溶解至 1000ml 。
5 ． 0.5mol/L HCl 溶液
6 ． 0.5mol/L NaOH 溶液
诗20007 ． 20% 磺基水杨酸溶液
8 ． 5% 醋酸钡溶液
9 ． 钠缓冲液 (PH8.6 ， 离子强度 0.06)
1.66g ，纳 12.76g ，加蒸馏水溶解至 1000ml 。
10 ． 染液 ( 任选其一 ) ：
（ 1 ）氨基黑 10 B 1g ，三氯醋酸 13.4g ，磺柳酸 13.4g ，加蒸馏水溶解至 1000ml 。
（ 2 ）丽春红 2 R 0.8g ，溶于 6% 三氯醋酸 100ml 中。
11 ． 2.5% 醋酸溶液
12 ． 透明液
冰醋酸 25ml 加 95% 乙醇 75ml 。 注意：冰醋酸量若过多，会使醋酸纤维薄膜成软胶冻状或皱缩变形。
【 操作 】
1 ． 层析柱的准备
（ 1 ） Sephadex G25 层析柱
① 凝胶的处理：称取 Sephadex G25 6g 于烧杯中，加水 100ml, 置沸水浴中加热 1h, 或在室温浸泡 24h ，使其充分吸水膨胀 , 再用蒸馏水洗二次。
② 装柱：将层析柱 (2 × 40cm ) 垂直固定在架上，关紧下端出口。加 0.02mol/L pH6.5NH 4 AC 约 10ml 左右，再缓慢 , 均匀加入已膨胀好的凝胶混悬液，同时打开下端出口，使液体缓慢流出，凝胶加至床容积 25ml 左右。凝胶床内不得有气泡、断层，胶床表面应平整，在整个层析过程中应始终位于液面之下。柱装好后，用 3 倍柱床体积的 0.02mol/L pH6.5NH 4 AC 洗涤平衡 . 。
③ 再生与保存：此凝胶柱可反复使用 . 。每次用后以所需的缓冲液洗涤平衡后即可再用。久用后，若凝胶床表面有沉淀物等杂质滞留，可将表层凝胶粒吸弃 , 再添补新的凝胶，若凝胶床出现气泡或流速明显减慢，应将凝胶粒倒出，重新装柱。为防止凝胶霉变，暂不用时应用含 0.02%NaN 3 的缓冲液洗涤后放置。久不用时宜将凝胶由柱内倒出 , 加 NaN 3 至 0.02% ，湿态保存于 4 ℃ ，严防低于 0 ℃ 冻结损坏凝胶粒。
（ 2 ） DEAE 纤维素离子交换层析柱
① 酸碱处理：称取 DEAE- 纤维素（ DE-52 3.0g 或 DE-22 1.5g ) 加 0.5mol/L HCl45ml 搅拌，浸泡 30 分钟后倾去 HCl ，用水洗至中性，用 0.5mol/L NaOH45ml 浸 30 ～ 60min ，倾弃上层液体，再用蒸馏水洗至中性 (PH=7.0) 。
② 平衡、装柱 (1× 20cm ) ： 上柱前经酸碱处理过的 DEAE- 纤维素加 0.02mol/L pH6.5 醋酸铵约 200ml ，再用 1mol/L 醋酸调至 PH6.5 ，搅匀后平衡过夜。装柱时，倾弃上清夜，将浓浆状的纤维素一次倾入柱中，使其自然沉降 ( 注意不要有气泡产生 ) ，装成 1× 10 厘米 的柱床。进一步用 0.02mol/LpH6.5 醋酸铵流洗平衡，至流出液 pH 为 6.5 。
③ 再生与保存：纤维素柱作过一次样品分离后，可用 1.5mol/LNaCl-0.3mol/LNH 4 Ac 流洗。溶液中的盐类降低离子交换剂的离子基团和蛋白质的相反电荷基团间的静电吸引，使蛋白质从纤维素上脱离被洗脱，直到流出液中不含蛋白质为止 (0.06mol/LNH 4 AC 可洗脱下 β 球蛋白和部分 α 球蛋白， 0.3mol/LNH 4 AC 可洗脱下清蛋白 ) 。再用 0.02mol/LpH6.5NH 4 AC 平衡即可重复使用。若柱床顶部有洗脱不下来的杂质，应将顶层的纤维素吸弃。若多次使用后杂质较多或流速过慢，应将纤维倒出，先用 1.5 ～ 2mol/L NaCl 浸泡，水洗，再如上述用酸处理后重新装柱。如暂不使用， DEAE- 纤维素应以湿态 ( 在柱中或倒出 ) 保存在含 1% 正丁醇的缓冲液中，以防霉变。
2 ． 血清 γ- 球蛋白的分离、纯化
（ 1 ）硫酸铵盐析：血清 1.0ml, 边摇边缓慢滴入饱和硫酸铵 1.0ml ，混匀后室温静置 10min ， 3500r/min 离心 10min 。轻轻取出，倾倒去上清液（用滴管仔细地吸弃上清）。沉淀加 0.02mol/LpH6.5NH 4 AC 0.4ml 溶解，留作进一步纯化 ( 称粗蛋白溶液 ) 。
（ 2 ）凝胶过滤除盐： Sephadex G25 层析柱经 0.02mol/LpH6.5NH 4 AC 洗流平衡后，放弃多余的缓冲液，当液面下降到略高于凝胶床表面时，关闭下端出口。用滴管吸取粗蛋
白溶液加到凝胶床表面，加样时应注意勿将凝胶冲起或破坏凝胶床表面的平整。打开下端出口，使样品进入凝胶床，用相同缓冲液 2 ～ 3ml 冲洗沾在柱壁上的样品 , 如此重复三次。然后可上大量的平衡缓冲液洗脱，流速控制在 15 ～ 25d/min 。
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