一、浮游生物的测定
浮游生物（plankton)是指悬浮在水体中的生物，它们多数个体小，游泳能力弱或完没有游泳能力，过着随波逐流的生活。浮游生物可划分为浮游植物和浮游动物两大类， 在淡水中，浮游植物主要是藻类，它们以单细胞、体或丝状体的形式出现。浮游动物1：要 由原生动物、轮虫、枝角类和桡足类组成浮游生物是水生食物链的基础，在水生生态系 统中占有重要地位。许多浮游生物对环境变化反应很敏感，可作为水质的指示生物，所以 在水污染调査屮，浮游生物也常被列为主要的研究对象之一。气囊修复
营业执照镜框1.点位设置
釆样点的设置要有代表性，采到的浮游生物要能真正代表一个水体或一个水体不同区域的实际状况。在江河中，应在污水汇入口附近及其上下游设点，以反映受污染和未受污染的状况。在排污口下游则往往要多设点，以反映不同距离受污染和恢复的程度。对整个调査流域，必要时按适当距设置。在较宽阔的河流中，河水横向混合较慢，往往需要在近岸的左右
两边设置。受潮汐影响的河流，涨潮时污水可能向上游回溯，设点时也应考虑。 在湖泊或水库中，若水体是圆形或接近圆形的，则应从此岸至彼岸至少设两个互相垂直的采样断面。若是狭长的水域，则至少应设三个互相平行，间隔均匀的断面。第一个断面设在排污口附近，另一个断面在屮间，再一个断面在靠近湖库的出口处。此外，采样点的设置尽可能与水质监测的采样点相一致，以便于所得结果相互比较。如若有浮游生物历史资料的，拟设的点位应包括过去的采样点，便于与过去的资料作比较。在一个水体里，要在非污染区设置对照采样点，如若整个水体均受污染，则往往须在邻近一非污染的类似水体设点作为对照点，在整理调査结果时可作比较。
2.采样深度
浮游生物在水体中不仅水平分布上存差异，而只垂直分布上也有不同。 若只采集表层水样就不能代表整个水层浮游生物的实际悄况。因此，要根据各种水体的具体情况采取不同的取样层次.如在湖泊和水库中.水深5m以内的，采样点可在水表面以下0.5、1、2. 3和4m等五个水层采样，混合均匀，从其屮取定量水样，水深2m以内的.仅在 0.5m 左右深处采集亚表层水样即可，若透明度很小.可在下层加取一水样，表层样混合制成混合样。深水水体可 按3-6米设置采样层次。变温层以下的水层由于缺少光线，浮游植物数量不多，浮游动物数量也很少，可适当少采样.对于透明度较大的深水水体.可按表层、透明度0.5倍处、1倍处、1.5倍处、2.5倍处、3倍处各取一水样，再将各层样品混合均匀后；再从混合样中取-样品,作为定量样品。在江河屮，由于水不断流动，上下层混合较快，采集水面以下0.5m 左右亚表层样即可。或在下加采一次.两次混合即可. 若需了解浮游生物垂直分布状况，不同层次分别采样不需混合。 3.采样量
采样量要根据浮游生物的密度和研究的需要量而定。一般原则是：浮游生物密度高，采水量可少：密度低采水量则要多。常用于浮游生物计数的采水量：对藻类、原生动物和轮虫，以1L为宜；对甲壳动物则要10—50L，并通过25号网过滤浓缩。若要测定藻类叶绿素和干重等，则需另外采样。 采集定性标本，小型浮游生物用25号浮游生物网，大型浮游生物用13号浮游生物网，在表层表层至0.5m深处以20〜30cm/s的速度作“8”形循回缓慢拖动约1-3min.或在水中沿表层拖虑1.5~5.0立方米水体积。
4.采样频率
出租车计价器传感器浮游生物由于漂浮水屮，落分布和结构随坏境的变更而变化较大，采样频率一般全年不少于四次（每季度一次)，条件允许时，最好是每月一次。根据排污状况.必要时可随时增加采样次数。
5.采集工具
在湖泊、水库和池塘水体屮，可用有机玻璃采水器采样.有机玻璃龙样器为圆柱形. 上下底面均有活门。采水器沉入水中，活门自动开启,沉入哪一深度就能采到哪一水层的 水样，采水器内部有温度计,可同时测量水温.有机玻璃采水器有1000ml、2500ml、5000ml 等各种容量和不同深度的型号(图5-1-1)。在河流中采样.要用颠倒式采水器或其他型号采水器。
定件标本用浮游生物网采集。浮游士物网呈圆锥形（图5-1-2〉，网口套在铜环上.网底管（有开关）接盛水器。网的本身用筛绢制成，根据筛绢孔径不同划分网的型号， 25号 网网孔0.064mm (200孔/in（ Lin=0.0254m).用于采集藻类、原生动物和轮虫。13号网孔0.112mm (130孔/in),用于采集枝角类和桡足类。
(二）固定和浓缩
水样采集之后，马上加固定液固定，以免时间延长标本变质。对藻类、原生动物和轮虫水样.每升加入15ml左右鲁哥氏液(Lugols solution) 固定保存。用将15ml鲁哥氏液事先加入1L的玻璃瓶屮.带到现场采样。固定后，送这实验室保存。
鲁哥氏液配置方法：40g碘溶于含碘化钾60g的1000ml水溶液屮，另一种福尔马林固定液的配制方法是：福尔马林（市售的40%甲醛)4ml.甘油10ml.水86ml.对枝角类和桡足类水样，100ml 加4〜5ml福尔马林固定液保存好。福尔马林固定液也是在現场加入.
从野外采集并经固定的水样，带回实验室后必须进一步沉淀浓缩。为避免损失，样品不多次转移。1000ml 的水样直接静置沉淀24h后,用虹吸管小心抽掉上淸液，余下20〜25ml沉淀物转入30ml定量瓶中.为减少标本损失.再用上淸液少许冲洗容器几次，冲洗液加到30ml 定量瓶中.用鲁哥氏液固定的水样，作为长期保存的浮游植物样品.在实验室内浓缩至30ml后补加1ml 40%的甲醛溶液，然后密封保存。浮游动物也可用如图5-1-3 所示装置进行浓缩。中间带有橡皮吸球的玻请管用于吸掉滤液.圆柱筒底部的筛网必须足以阻止浮游动物进入.另外可采用医用输液泵、管浓缩浮游动物，该方法比较 简便、适用.浮游动物中的甲壳类动物样品用5%甲醛溶液固定。
<三）显微镜的校准
将目（测微）尺放入10倍目镜内.应使刻度清晰成像（一般刻度面应朝下）。将台（测微）尺当作显微玻片标本，用20倍物镜进行观察.使台尺刻度清晰成像，台尺的刻度代表标本上的实际长度，一般每小格0.01mm.转动目镜并移动载物台，使S尺与台尺平行， 并且目尺的边沿到度与台尺的0点刻度重合，然后数出目尺10格相当于台尺多少格.用这 个格数去乘0.01mm，其积表示目尺10格代表标本上的长度多少毫米.作好记录，即某台显微镜20倍物镜配10倍目镜，某目尺10格代表标本上的长度多少。用台尺测出视野的直径，按
计算视野面积。
用作测量和计数的其他镜头的每一种搭配，也都应作同样的校准和记录。透视望远镜
(四）计数
个体计数仍是常用的浮游生物定量方法。浮游生物计数时，要将样品充分搖匀，将样品置入计数框内.在显微镜或解剖镜下进行计数，常用的数框容量有0.lml, 1ml, 5ml和10ml四种。用定量加样器在水样中部吸液移入计数框内。加入之前要将盖玻片斜盖在计数框上（
如图5-1-4)，样品按准确定量注入，在计数框中一边进样.另一边出气.这样可避免气泡产生，注满后把盖玻片移正。计数片子制成后，稍候几分钟.让浮游生物沉至框底.然后计数。不易沉到框底的生物.则要另行计数，并加到总数之内。
藻类和原生动物的计数：吸取0.lml样品注入0.1ml计数框，在10X40倍或8X40倍 显微镜下计数.藻类计数100个视野，原生动物全片计数。轮虫则取Iml注入1ml 计数框 内，在10X8显微镜下全片计数。以上各类均计数两片取其平均值。如两片计数结果个数相差15%以上.則进行笫三片计数，取其中个数相近两片的平均值。
藻类计数亦可采用长条计数法，选取两相邻刻度从计数框的左边一直计数到计数框的右边称为一个长条。与下沿刻度相交的个体，应计数在内，与上沿刻度相交的个体，不计数在内，与上、下沿刻度都相交的个体。以生物体的屮心位置作为判断的标准，也可在低倍镜下，按上述原则单独计数，最后加入总数之中。 一般计数三条.即第2、5、8条，若藻体数量太少，则应全片计数，硅藻细胞破壳不计数。
若计数种属的组成，分类计数200个藻体以上。用划“正”的方法，则毎划代表一个个体.记录每个种属的个体数。
甲壳动物的计数：将浓缩样吸取8ml（或5ml),注入计数框.在10X 10或10X20倍 倒置显微镜或显微镜下,计数整个计数框内的个体。 亦可将30ml浓缩样分批按此法计数. 再将各次计数相加得到30ml样的总个体数。
(五）计算
1）把计数所得结果按下式换算成每升水中浮游植物的数量:
式屮：N_每升水屮浮游植物的数量（个/L):
A---计数框面积(mm2)；
A---计数面积（mm2),即视野面积X视野数或长条计数时长条长度X参与计数的长条宽度X镜检的长条数：
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Vw---1L水样经沉淀浓缩后的样品体积（ml):
V----计数框体枳
n----计数所得的浮游植物的个体数或细胞数。
按上述方法进行采样、浓缩、计数。A为400mm2.Vw为30ml, V为0.1mll,故Vw /V=300。每升内某计数类浮游动物个体数N可按下式计算：
式中：n---计数所得个体数：
V1——浓缩样体枳（ml):
V2——计数体积（ml):
Vi——采样量
原水样中每升内浮游动物总数等于各类个体数之和。
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