大鼠唾液收集法

方法一:外科手术收集唾液
1 材料与方法1. 1 微型Lashley吸盘法收集大鼠腮腺唾液见图1 Wistar大鼠,体重200 300 g,腹腔注射盐酸麻醉(100 mg /kg),仰卧位固定在自制手术台上,上开口器,将灯光(60W)照向大鼠颌下腺区域的表面皮肤,半导体除湿用弯纹式钳撑开舌根部咽腔,用干棉球擦干咽部,光线透过咽腔表面皮肤,直视即可清楚看到声门,声带随呼吸开合运动。直视下,在大鼠吸气时迅速将塑料导管插入气管。(塑料导管外径1. 78mm、内径1. 18 mm、长55 mm,前端呈斜坡形,内置一铜芯,其前端较塑料导管短约2. 0 mm,以避免铜芯损伤大鼠气管)塑料导管前端可以用手术缝合线结扎固定在上颌切牙上,可以避免导管脱出。用一小棉球擦干一侧的颊黏膜,用手轻轻按摩大鼠唾液腺区,在颊黏膜腮腺导管开口处可见有一滴唾液,打开真空泵,将微型Lashley吸盘置于其上,即可将吸盘固定在颊黏膜上。颈部皮下注射0. 2%毛果芸香碱(2 mg /kg),大约3 min左右,唾液开始分泌,弃掉开始几滴唾液,将唾液收集在已称重的eppendorf管内,收集15min。在收集唾液的过程中,应保持大鼠的头部应略低一些,避免发生窒息。
1. 2 插管法收集大鼠颌下腺唾液见图2 
1)皮下注射毛果芸香碱,收集1 h。大鼠麻醉固定后,用止血钳夹持舌尖,将舌牵出,略偏向一侧。
在口底中线两侧,下中切牙舌侧约4 5 mm可见红的颌下腺导管乳头,其腹侧为导管口,实际上肉眼看不到。将PE10塑料管(长约4 cm)一端剪成斜坡形,用镊子夹持在距插入端约2. 0 mm,拨动颌下腺导管乳头附近数次,led斗胆灯使导管口打开,在颌下腺导管乳头的腹侧轻轻插入导管约2. 0 mm。切开气管,同上颈部皮下注射0. 2%毛果芸香碱刺激唾液分泌,弃掉开始几滴唾液,将唾液收集在已称重的eppendorf管内,收集时间1 h
2)颌下腺导管逆行注射毛果芸香碱,收集15 min(1)导管的拉制:取约8 cmPE10塑料管,双手的拇指和食指持导管的两端,PE10拉直,但不要太紧,PE10塑料管的中间部分在酒精灯火焰上快速通过或距火焰15 cm处将其中间短时间加热变软,在其即将融化时移开,两手慢慢向两端拉,几秒钟冷却后,从中间切开即制成两个一端更细的导管。(2)插管收集唾液:4Wistar大鼠,麻醉、固定同上,导管的细端颌下腺导管口内插管成功后,在导管口处滴一滴组织胶密封(502高压脉冲电容器)。导管的粗端连接微量注射器,通过每侧导管逆行注射0. 5%毛果芸香碱25μ L,保持15 s后再移走注射器,收集蒸压加气块15 min[5]
方法二:棉球擦拭收集唾液法
2.1 分组与给药  将兔随机分为5组,分别为:空白对照组(0. 5 % CMC-Na ),六味地黄丸组(
0. 21g/kg),生津润燥颗粒高剂量组(11. 62 g生药//kg),生津润燥颗粒中剂量组(3. 87 g生药/kg),生津润燥颗粒低剂量组(1. 29 g生药/kg),每组8只,雌雄各4只。灌胃给药,每日一次,连续给药6d,试验前12 h禁食,不禁水,于末次给药后30 min,静脉注射乌拉坦生理盐水液(6. 5% ,10 mL/kg) ,10 min后测量兔的唾液及泪液分泌量,每10 min测量一次,连续测量3次。
2.2 唾液量及泪液量的测定方法 将兔放人兔箱内固定,用止血钳将重量相近的干棉球验光组合(100 11.5)mg放人兔口腔,上、下、左、右各擦拭一遍,间隔5  min,再以同样的方式将口腔擦拭一遍,然后称质量,减去棉球干质量(200 mg),合并2次质量为10min内家兔的唾液量。同时将100 x 5 m耐的滤纸条贴在兔的右眼下眼睑,10 min,测量湿滤纸条长度,每10 min更换一片滤纸条,连续测量3次。随后皮下注射硫酸阿托品(0. 5 mg/kg ) , 15 min后测量注射阿托品的兔的唾液量及泪液量(测量泪液量时滤纸条贴于兔的左眼下眼睑)
结果:
电梯箱
3. 1生津润燥颗粒对家兔唾液分泌量的影响研究结果发现,在给药后40 min时的高、中剂量组,50min时的高、中、低剂量组,60 min时的高、低剂量组家兔唾液分泌量均显著增
;同时高、中剂量还可拮抗注射阿托品所导致的唾液分泌减少,与对照组比较差异均有显著统计学意义(见表1 ,2 )
方法三:饮水量法(非唾液收集法)
    将大鼠随机分为六组,空白对照组(等容积0.5% CMC-Na),模型对照组(等容积0. 5% CMC-Na ),强的松组(0. 005 4 g/kg ),生津润燥颗粒高剂量组( 22. 41 g生药/kg),生津润燥颗粒中剂量组(7. 47 g生药/kg),生津润燥颗粒低剂量组(2, 49 g生药/kg)
将液体石蜡和羊毛脂按3:2的比例混合,高压灭菌,每1 mL加人卡介苗7. 5 mg,研磨均匀,即得弗氏佐剂。另取SD大鼠领下腺组织,加适量生理盐水匀浆,离心机离心15 min (
3 000 r/min ),收集上清液,即蛋白抗原液。将制备好的蛋白抗原液用生理盐水稀释成1 600ug/mL,与等体积的弗氏佐剂混合,即为注射用抗原液(800ug/mL )。并多点注射于大鼠的背部皮下,每只0. 5 mL。同时,背部皮下注射白喉一百日咳一破伤风三联疫苗0. 2 mL/只。空白对照组只注射生理盐水。首次注射抗原后的5,10,1520 d分别加强注射一次。各组于末次注射抗原后次日开始给药。造模及给药时间共计9周。测定各组大鼠的每日饮水量,于实验结束后,眼眶取血,制备血清,按照试剂盒说明书检测血清IgG , Fas , Fas-L , TNF-a , IL-2 R水平,并取领下腺进行组织学病理检查。
结果:
与空白对照组比较,于造模后第3周开始,模型组大鼠饮水量呈现增加的趋势,其中在第3、第8周存在显著的统计学差异。生津润燥颗粒的结果表明,高剂量组大鼠在第3、第4周,中剂量组大鼠在第1周,低剂量组大鼠在第8、第9周饮水量均显著低于模型对照组。(结果见表1)

本文发布于:2024-09-20 20:25:44,感谢您对本站的认可!

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