黄芩苷对ESBLs大肠埃希菌感染RAW264.7细胞TLR4表达的影响

黄芩苷对ESBLs大肠埃希菌感染RAW264.7细胞TLR4表达的影响
目的:体外研究黄芩苷经由TLR4信号转导途径抗ESBLs大肠埃希菌感染的作用及其机制。
方法:用临床分离ESBLs大肠埃希菌接种于单层生长的RAW264.7细胞培养板中以及用黄芩苷(25,50 mg·L-1)预处理的单层生长的RAW264.7细胞培养板中,逆转录聚合酶链反应(RT,PCR)检测培养细胞TLR4 mRNA表达的变化,免疫荧光检测TLR4蛋白表达的变化,Western blot检测NF,κB表达的变化和酶联免疫吸附(ELISA)检测培养上清中TNF-α含量的变化。
结果:ESBLs大肠埃希菌上调RAW264.7细胞TLR4 mRNA和蛋白的表达,NF,κB表达量增加,培养上清中TNF-α含量升高。黄芩苷能抑制大肠埃希菌对RAW264.7细胞TLR4 mRNA和蛋白的上调作用,降低NF,κB的活化,减少TNF-α的分泌,抑制作用呈现黄芩苷剂量依赖性。
人造脂肪结论:黄芩苷对ESBLs大肠埃希菌体外直接抑菌作用虽然较弱,但可通过抑制TLR4及其介导的信号转导途径减少炎性因子的生成,从而发挥抗炎作用。
标签:黄芩苷;TLR4;ESBLs大肠埃希菌;信号转导途径
黄芩苷是从清热解毒类中药黄芩的根中提取的黄酮类物质,是黄芩发挥药效最重要的成分[1]。研究表明黄芩苷在体外有一定抗大肠埃希菌作用[2,3],但作用不是很强,而在体内的抗大肠埃希菌作用较强。大肠埃希菌是临床腹泻、泌尿系感染、败血症等疾病的重要病原体,更是院内感染重要病原体之一。近年来随着抗生素的滥用,世界各地不断报道出现产超广谱β-内酰胺酶(extended,spectrumβ-lactamases, ESBLs)血清型大肠埃希菌,该类细菌对常用抗生素高度耐药,因此从中药中寻和研发新型抗菌药物成为必然。Toll样受体(Toll,like receptors,TLRs)是抗病原微生物免疫防御反应中起重要作用的受体蛋白,细菌、病毒和环境中不同病原体的相关模式分子(pathogen,associated pattern molecules,PAMPs)是其配体,两者识别结合后激活细胞信号转导途径,启动天然免疫和调节性免疫反应[4,5],并在联系天然免疫和适应性免疫中起桥梁作用。TLR4是革兰阴性菌及其脂多糖(LPS)的主要受体,在细菌感染的极早期其介导的信号转导途径即被激活,在革兰阴性菌感染的炎症反应中起重要作用。本研究通过观察黄芩苷对ESBLs大肠埃希菌干预后小鼠巨噬细胞(RAW264.7)的TLR4 mRNA和蛋白的表达、核转录因子NF,κB蛋白活化及细胞分泌的炎性因子肿瘤坏死因子α(TNF-α)的影響,来探讨黄芩苷抗耐
药性大肠埃希菌的机制。
1 材料
1.1 药品与试剂 黄芩苷对照品(中国食品药品检定研究院),Trizol试剂(美国Invitrogen公司),RT,PCR试剂盒(美国Fermentas公司),抗小鼠NF,κBp65抗体(美国Santa Cruz公司),抗小鼠TLR4,FITC抗体(美国Santa Cruz公司),引物合成(上海生工生物工程技术服务有限公司),小鼠TNF-αELISA试剂盒(武汉博士德生物工程有限公司)。
1.2 菌株 临床分离ESBLs大肠埃希菌(安徽医科大学附属医院检验科),质控菌株:大肠埃希菌标准株ATCC25922,肺炎克雷伯菌ATCC700603。
1.3 细胞 小鼠巨噬细胞RAW264.7细胞由安徽医科大学临床药理研究所保存。
2 方法
2.1 细胞培养与分组 将RAW264.7细胞接种于12孔细胞培养板中,待细胞生长至80%满时,
PBS洗涤2次,更换细胞维持液,按以下分组进行干预实验:细菌感染组,每孔加入ESBLs Escherichia coli终浓度1×104CFU/mL,设置正常对照;黄芩苷干预组分为25,50 mg·L-12个组,先用黄芩苷孵育1 h后,再加入细菌感染,设置黄芩苷对照;每孔设复孔4个,每组均设黄芩苷药物对照。于感染4,8,12,16,24 h后收集细胞,于感染12,24,36,48 h后收集培养上清。
2.2 RT,PCR检测细胞TLR4 mRNA表达的变化 用Trizol提取细胞总RNA,以β-actin为内参,按试剂盒说明书完成RT,PCR。TLR4引物序列上游5′,GCCGGAAAGTTATTGTGGTGGT,3′;下游5′,ATGGGTTTAGGCGCAGAGTT,3′,扩增片段356 bp。β-actin引物序列上游:5′,GTGGGCCGCTCTAGGC ACCAA,3′ ; 下游:5′,CTCTTTGATGTCACGCA CGATTTC,3′ ,扩增片段540 bp。凝胶成像分析仪扫描,TLR4条带与β-actin条带灰度值比值表示TLR4 mRNA的相对表达量。
2.3 直接免疫荧光法检测TLR4蛋白表达的变化 在细胞培养时,于孔板中加入细胞爬片,于感染时间点后取出爬片;用0.01 mol·L-1,pH 7.4的PBS滴于爬片上,10 min后弃去;滴加18稀释的抗TLR4,FITC抗体,37 孵育30 min,0.01 mol·L-1,pH 7.4 PBS洗涤3次;
压力检测装置滴加DAPI应用液,湿盒中避光室温下作用15 min,0.01 mol·L-1,pH 7.4 PBS洗涤3次;取出爬片反盖于清洁载玻片上,加缓冲甘油,荧光显微镜下观察。
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2.4 Western blot检测NF,κB表达的变化 提取细胞总蛋白,β-actin 作为内参。Western blot按照《分子克隆实验指南》进行。2.5 ELISA检测细胞培养上清中TNF-α含量的变化 操作按ELISA试剂盒说明书完成。
2.6 统计学方法 所有数据均以±s表示,采用SPSS 15.0统计软件对实验结果进行重复测量设计的方差分析。P<0.05为差异有统计学意义,P<0.01为差异有显著性。羊毛纸
3 结果
3.1 黄芩苷对TLR4 mRNA表达的影响 RT,PCR显示RAW264.7细胞有一定TLR4基础表达。ESBLs大肠埃希菌可诱导RAW264.7细胞TLR4 mRNA表达上调,且上调具有时间依赖性。接种ESBLs大肠埃希菌4 h后RAW264.7细胞的TLR4 mRNA表达量开始上升,16 h升高明显, 24 h达到高峰,与基础表达量相比较上升6倍多(P<0.01),差异具有显著性。黄芩苷可抑制TLR4 mRNA的表达, 25 mg·L-1黄芩苷TLR4 mRNA表达降低,与未加药感
染组比较P<0.05, 50 mg·L-1黄芩苷组TLR4 mRNA表达量和基础表达量相当,与未加药感染组比较P<0.01,与25 mg·L-1黄芩苷组比较P<0.05。黄芩苷对TLR4基因表达的抑制作用显示出剂量依赖性(图1)。
3.2 黄芩苷对TLR4蛋白表达的影响 免疫荧光显微镜下TLR4蛋白呈现绿荧光,细胞核呈现蓝光。免疫荧光检测显示, ESBLs大肠埃希菌能上调RAW264.7细胞TLR4蛋白,其表达量随着感染时间延长逐渐增加(图2)。黄芩苷可以抑制这种上调作用,并表现出剂量依赖性,25 mg·L-1黄芩苷组TLR4表达量较感染组下降(图3),而50 mg·L-1黄芩苷组TLR4表达量降至与正常细胞TLR4蛋白水平相当(图4)。
3.3 黄芩苷对NF,κB的影响 ESBLs大肠埃希菌促进RAW264.7细胞NF,κB的活化,使得NF,κB的表达增加。黄芩苷可降低大肠埃希菌对NF,κB的活化,且这种效应表现出黄芩苷剂量依赖性。25 mg·L-1黄芩苷组NF,κB活化量较感染组下降, 50 mg·L-1黄芩苷组NF,κB表达量和正常细胞的NF,κB表达量基本一致(图5)。
3.4 黄芩苷对RAW264.7细胞培养上清中TNF-α含量的影响 ESBLs大肠埃希菌可使细胞培养上清中TNF-α含量升高,其含量随细菌感染时间延长逐渐增加。与正常对照相比,24 h离心喷雾干燥塔
后TNF-α含量显著上升(P<0.01)。48 h 后TNF-α含量可达高峰,黄芩苷可降低TNF-α的分泌,低剂量黄芩苷组较感染组细胞培养上清中TNF-α含量有下降趋势,高剂量黄芩苷组较感染组细胞培养上清中TNF-α含量下降显著(P<0.01), TNF-α的下降呈現出黄芩苷剂量依赖性(表1)。
4 讨论
大肠埃希菌是院内感染的重要病原菌,其临床标本分离率占首位。由于抗生素的不规范使用和滥用,使耐药现象日趋严重,多重耐药大肠埃希菌分离率越来越高[6,8 ]。黄芩具有消炎抗菌、抗病毒、抑制变态反应、抗氧化等作用。其主要药效成分为黄芩苷,本实验主要研究黄芩苷抗ESBLs大肠埃希菌的机制。有研究表明黄芩苷在体外的直接抑菌作用较弱,但在体内则有很好的抗大肠埃希菌作用。某些中药或有效成分虽然体外直接抗菌作用不及抗生素,但可以在体内通过调整免疫炎症反应而发挥间接抗菌消炎作用。因此,推测黄芩苷也可能存在此类作用。
巨噬细胞几乎表达所有已发现的TLRs。当TLRs识别相应的PAMPs后,两者相结合激活信号转导途径,导致促炎性细胞因子、抗炎性细胞因子、趋化因子、抗原提呈分子和共刺激
分子等免疫防御基因的活化表达,引起免疫炎症反应,清除病原微生物[9,11]。TLR4是Medzhitov[12]等发现的第1个Toll样受体家族成员。细菌感染的极早期TLR4即可识别相应配体而被激活后经由髓样分化因子(myeloid differentiation factor 88,MyD88) 依赖性和非依赖性2种途径引发NF,κB的早期相和晚期相活化,导致多种炎性因子如TNF-α,IL,1,IL,6,IL,8等的转录、翻译和释放。其中TNF-α又可诱导IL,1,IL,6和IL,8的生成,还可刺激巨噬细胞、白细胞,促进血小板激活因子、前列腺素、白三烯等产生,它们相互作用产生级联反应,导致炎性介质过度释放,造成组织器官病理性免疫损伤,产生全身炎症反应综合征[13,15]。本实验发现ESBLs大肠埃希菌能上调RAW 264.7巨噬细胞TLR4的表达,激活TLR4信号转导途径,促进核转录因子NF,κB活化,引起下游炎性因子TNF-α的分泌量显著增加。而黄芩苷则可以下调TLR4基因和蛋白的表达,抑制大肠埃希菌感染后TLR4介导的信号转导通路,使得核转录因子NF,κB的活化减少,下游炎性因子TNF-α的分泌降低,而且黄芩苷对TLR4信号转导途径的这种抑制作用呈现剂量依赖性。说明黄芩苷可能是通过抑制TLR4介导的信号转导通路来降低炎症反应。黄芩苷对大肠埃希菌的直接抑菌作用虽然不强,但能通过调节免疫系统来抑制TLR4介导的信号转导通路来减轻大肠埃希菌引起的炎症反应。当药物可以通过调节免疫系统来改变机体对病原菌的反应时,
即可避免由病原菌适应性进化导致的耐药性,这将为研发新型抗感染药物提供新的思路和方向。中药的药效成分复杂,作用靶点多,其抗感染作用机制往往不是单一的,深入研究中药抗感染机制对研发新型抗感染药物具有重要意义。

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