将整株按照花球、茎、叶、根4个器官分割，清洗，叶片取植株中部健壮的成熟叶片， 重复间取相同部位。
含水量测定
所需仪器：烘箱，天平，滤纸
取样，洗净，105℃杀青2小时，70℃烘干至恒重，测定其含水量
可溶性固形物测定
一、试剂：
二、仪器：手持式折光仪（手持式糖度计）、研钵、滴管、滤纸、擦镜纸、蒸馏水 三、实验步骤
1.样品制备：取5.0 g果实放入研钵磨碎，4000 r/m，离心10 min取汁液。 2.调零：打开手持式折光仪棱镜盖板，用擦镜纸轻擦折光镜面，滴几滴蒸馏水于折光镜面上，合上盖板，将仪器对向光线，由目镜观察，转动棱镜旋钮，使视野分成明暗两部分。若有偏离，用专用螺丝刀补偿器旋钮，使视野分为黑白两，同时使明暗分解线与标尺上的0位重合。打开盖板擦干水分
3.测定，滴入样品在折光镜上，并读取读数。重复三次，计算平均值和标准偏差。 叶绿素测定
一、仪器设备：1）分光光度计；2）电子顶载天平（感量0.01g）；3）研钵；4）棕容量瓶； 5）小漏斗；6）定量滤纸；7）吸水纸； 8）擦境纸；9）滴管。
二、试剂：1）80%丙酮；2）石英砂；3）碳酸钙粉。
三、实验步骤
1）取新鲜叶片（或其它绿组织）或干材料，擦净组织表面污物，剪碎（去中脉），混匀。
2）称取剪碎的新鲜样品 0.5g ，共3份，分别放入研钵中，加少量石英砂和碳酸钙粉及2～3ml 丙酮，研成均浆，再加丙酮10ml， 继续研磨至组织变白。静置3～5min。
3）取滤纸1张，置漏斗中，用乙醇湿润，沿玻棒把提取液倒入漏斗中，过滤到25ml棕容量瓶中，用少量丙酮冲洗研钵、研棒及 残渣 数次，最后连同残渣一起倒入漏斗中。
4）用滴管吸取丙酮，将滤纸上的叶绿体素全部洗入容量瓶中。直至滤纸和残渣中无绿为止。最后用丙酮定容至25ml，摇匀。
5）把叶绿体素提取液倒入光径1cm的比杯内，以80%丙酮为空白，在波长663nm和645nm下测定吸光度。
四、实验结果计算
叶绿素a的含量 = 12.7OD663 - 2.69OD645
叶绿素b的含量 = 22.9OD645 - 4.86OD663
叶绿素a、b的总含量 = 8.02OD663 + 20.20OD645
Brandford法检测蛋白质含量鬼屋道具
一、仪器和试剂
1.仪器：分光光度计、移液抢、具塞刻度试管、烧杯、量瓶、研钵
2.试剂：考马斯亮蓝G-250染料、牛血清蛋白、90%乙醇、85%磷酸
考马斯亮蓝G-250:称取100mg考马斯亮蓝，溶于50ml90%乙醇中，加入100ml85%的磷酸，再用蒸馏水定溶到1L，贮于棕瓶中。
标准牛血清蛋白溶液：100ug/ml牛血清蛋白：称取牛血清蛋白25mg加水溶解并定溶至100ml，吸取上述溶液40ml，用蒸馏水稀释至100ml即可。
二、 实验步骤
取6支试管，按下表加入试剂（0～100ug/ml的标准蛋白）。混合均匀后，向各管中加入5
ml考马斯亮蓝溶液，摇匀，并放置5min左右，用1cm光径的比皿在595nm下比测定吸光度。以蛋白质浓度为横坐标，以吸光度为纵坐标绘制标准曲线。
绘制标准曲线的各试剂加入量
管号 1 2 3 4 5 6
标准蛋白质/ml 0 0.20 0.40 0.60 0.80 1.00
水/ml 1.00 0.80 0.60 0.40 0.20 0
蛋白质质量/ml 0 20 40 60 80 100
2.样品的测定
（1）样品的提取：称取鲜样0.25-0.5g，用5ml水研磨成匀浆后，3000r/min离心10min，取
上清液1.0ml（视蛋白质含量适当稀释）于试管中（每个样品重复2次）。
（2）加入5ml考马斯亮蓝溶液，充分混合，放置2min后在595nm下比，测定吸光度，并通过标准曲线查得蛋白质含量。
四、结果计算
手压式旋转拖把 样品中蛋白质含量 ＝ (mg/g)
式中：C—查标曲值；VT—提取液总体积；WF—样品鲜重；VS—测定时加样量，ml。
总糖和还原糖的测定──3,5－二硝基水杨酸法
一、试剂
3,5－二硝基水杨酸（DNS）试剂：称取6.5g DNS溶于少量热蒸馏水中，溶解后移入1000ml容量瓶中，加入2mol/L氢氧化钠溶液325ml，再加入45g丙三醇，摇匀，冷却后定容至1000ml。
葡萄糖标准溶液：滑石粉母粒准确称取干燥恒重的葡萄糖200mg，加少量蒸馏水溶解后，以蒸馏水定容至100ml，即含葡萄糖为2.0mg/ml。
6mol/L HCl：取250ml浓HCl（35%～38%）用蒸馏水稀释到500ml。
碘－碘化钾溶液：称取5g碘，10g碘化钾溶于100ml蒸馏水中。
6N NaOH：称取120g NaOH溶于500ml蒸馏水中。
0.1% 酚酞指示剂。
二、器材
WFJ UV－2000型分光光度计，水浴锅，电炉，15mm×180mm试管。
三、操作方法
1、葡萄糖标准曲线制作
取5支15mm×180mm试管，按下表加入2.0mg/ml葡萄糖标准液和蒸馏水。
管号 | 葡萄糖标准液（/ml） | 蒸馏水（/ml） | 葡萄糖含量（/mg） | OD540 |
0 | 0 | 1 | 0 | |
1 | 0.2 | 0.8 | 0.4 | |
2 | 0.4 | 0.6 | 0.8 | |
3 | 0.6 | 0.4 | 1.2 | |
4 | 0.8 | 0.2 | 1.6obd数据 | |
5 | 1 | 0 | 2红豆杉提取物 | |
| | | | |
在上述试管中分别加入DNS试剂2.0ml，于沸水浴中加热2min进行显，取出后用流动水迅速冷却，各加入蒸馏水9.0ml，摇匀，在540nm波长处测定光吸收值。以1.0ml蒸馏水代替葡萄糖标准液按同样显操作为空白调零点。以葡萄糖含量（mg）为横坐标，光吸收值为纵坐标，绘制标准曲线。
2、样品中还原糖的提取
准确称取 0.5g藕粉，放在100ml烧杯中，先以少量蒸馏水(约2 ml)调成糊状，然后加入40ml蒸馏水，混匀，于50℃ 恒温水浴中保温20min，不时搅拌，使还原糖浸出混。过滤，将滤液全部收集在50ml的容量瓶中，用蒸馏水定容至刻度，即为还原糖提取液。
3、样品总糖的水解及提取
准确称取0.5g玉米淀粉，放在锥形瓶中，加入6mol/L HCl 10ml，蒸馏水15ml，在沸水浴中加热0.5h，取出1～2滴置于白瓷板上，加1滴I-KI溶液检查水解是否完全。如已水解完全，则不呈现蓝。水解毕，冷却至室温后加入1滴酚酞指示剂，以6N NaOH溶液中和至溶液呈微红，并定容到100ml，过滤取滤液10ml于100ml容量瓶中，定容至刻度，混匀，即为稀释1000倍的总糖水解液，用于总糖测定。
4、样品中含糖量的测定
取7支15mm×180mm试管，分别按下表加入试剂：
项目 | 空白 | | 还原糖 | | | 总糖 | |
0 | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 |
样品溶液/ml | 0 | 1 | 1 | 1 | 1 | 1 | 1 |
3,5-二硝基水杨酸试剂/ml | 2 | 2 | 2 | 2 | 2 | 2 | 2 |
| | | | | | 模具导柱 | |
加完试剂后，于沸水浴中加热2min进行显，取出后用流动水迅速冷却，各加入蒸馏水9.0ml，摇匀，在540nm波长处测定光吸收值。测定后，取样品的光吸收平均值在标准曲线上查出相应的糖量。
五、结果处理
按下式计算出样品中还原糖和总糖的百分含量：
式中：C──还原糖或总糖提取液的浓度，mg/ml；V──还原糖或总糖提取液的总体积，ml；m──样品重量，g；1000──mg换算成g的系数。
注意事项：标准曲线制作与样品含糖量测定应同时进行，一起显和比
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