一种荧光分析方法和装置

本发明属于体外检测技术领域，具体地涉及一种基于测量荧光强度的分析 方法和装置。

在免疫检测领域中，常常需要对各类抗原或抗体进行定性或定量检测。现 有技术中，以“竞争抑制和双抗夹心”为基础衍生出多种免疫反应分析方法， 如：放射免疫法、酶联免疫法、化学发光法、时间分辨荧光法和荧光免疫法等， 可用于确定病原微生物，对人体的特异性蛋白定量检测，从而对疾病进行辅助 诊断或监测等等，用途非常广泛。这类免疫反应分析方法，通常将捕获抗体固 定于固相载体，然后与抗原(目标蛋白)反应，洗涤后再与标记抗体反应，洗涤， 最后检测放射性强度、溶液吸光度或光信号等，从而报告检测样本中目标蛋白 的浓度。上述方法的自动化免去了人工洗涤的烦琐，但正因为自动化，使得仪 器体积庞大价格昂贵，一般只在大型实验室使用。

1990年，Beggs等综合胶体金和免疫分析技术，建立了胶体金免疫层析法 (GICA)，用于检测人尿和血清中的HCG(BEGGS M，NOVOTNY M，SAMPEDRO S.A selfperforming chromatographic immunoassay for the qualitative  determination of human chorionicgonadotrophin(HCG)in urine and serum[J].Clin  Chem，1990，36：1084‑1085)。此后20年，人们在GICA的基础上，开发出了用 于病原体(CN 03115143.4)、激素(CN 200610014168.3)、心脏标志物(CN 200410011165.5)、肿瘤标志物(CN 200510104796.6)、自身免疫病标志物(CN 200410027291.X)等的检测试剂；同时也应用到食品、环境(CN 03116692.X)和 兽医(CN 02139704.X)领域。由于该方法只需肉眼观察即可，非专业人士也可操 作，使急诊、基层医院、病人床边和现场等远离大型实验室的地方开展相关检 测成为可能，所以应用范围相当广泛。

虽然这种免疫分析技术已经超过20年的发展，但其基本的工作原理并未改 变，这决定了到目前为止，它只用于定性或半定量检测(根据检测线灰度深浅定 量)，且灵敏度也不如前述的定量免疫分析方法，其进一步的应用遇到了瓶颈。

因此，本领域急需对现有的胶体金层析方法进行变革，在赋予其高灵敏度 和定量准确的新优势的同时，保持其快捷、简便、成本低廉等特点，从而进一 步扩展其应用领域。

本发明提供了一种测试片，用于定量检测样品中的待测物。

本发明提供了一种定量检测待测物的检测方法，所述方法灵敏度高，定量 准确。

本发明还提供了一种定量检测待测物的检测装置。

本发明第一方面提供了一种测试片，该测试片包括：

(i)可加入样品的加样区；

(ii)位于加样区近端的结合区，所述结合区包含：

一种或多种可流动的结合剂，所述结合剂中至少一种被吸光物质标记，所 述结合剂能与待测物或其等同物结合形成含吸光物质的复合物；和

可流动的检测剂，所述检测剂被荧光物质标记；

(iii)位于结合区近端和加样区远端的测试区，所述测试区包含固定化的捕 获剂，所述捕获剂用于捕获从结合区移动至测试区的含吸光物质的复合物和检 测剂；和

(iv)位于测试区近端和结合区远端的样品吸收区，其中吸收区具有吸收能 力，从而使得加至加样区的样品从加样区扩散至末端样品吸收区；

其中，当所述捕获剂捕获所述含吸光物质的复合物和检测剂时，所述吸光 物质影响所述测试区的荧光强度。

在另一优选例中，所述测试区的荧光为所述检测剂的荧光。

在另一优选例中，所述的吸光物质影响所述测试区的荧光强度是导致测试 区的荧光强度下降。

在另一优选例中，所述待测物为抗原或抗体。

在另一优选例中，所述结合剂特异性结合待测物或其等同物；较佳地，所 述结合剂为抗原、抗体或寡核苷酸。

在另一优选例中，所述结合区可以包含两种结合剂，其中，一种被吸光物 质标记的结合剂，另一种被生物素标记的结合剂，所述两种结合剂同时与待测 物结合，从而形成一种被生物素标记的含吸光物质的复合物。

在另一优选例中，所述含吸光物质的复合物可以含有待测物，也可以含有 其等同物。

在另一优选例中，所述可流动的检测剂为荧光标记的生物素或捕获剂抗 体。

在另一优选例中，所述捕获剂特异性结合含吸光物质的复合物和检测剂。

在另一优选例中，所述捕获剂为链亲和素或待测物的抗体。

在另一优选例中，所述结合剂的数量大于所述待测物的数量；所述检测剂 的数量大于含吸光物质的复合物的数量；所述捕获剂的数量大于含吸光物质的 复合物和检测剂的总数量。

在另一优选例中，所述结合区包括第一结合区和第二结合区，其中，所述 第一结合区位于加样区近端，包含被吸光物质标记的结合剂和被荧光物质标记 的检测剂；所述第二结合区位于加样区的远端，包含被生物素标记的待测物等 同物；

其中，所述被吸光物质标记的结合剂的数量大于待测物的数量，所述待测 物与所述被生物素标记的待测物等同物竞争性地与结合剂结合，形成被生物素 标记的含吸光物质的复合物。

在另一优选例中，所述结合剂与待测物结合后，剩余的结合剂移动至第二 结合区，与所述被生物素标记的待测物等同物结合形成被生物素标记的含吸光 物质的复合物。

在另一优选例中，所述检测剂为荧光标记的生物素或捕获剂抗体。

在另一优选例中，所述的待测物包括：蛋白、核酸或小分子化合物。

在另一优选例中，所述的待测物是液相(溶液)、悬浮液或固相。

在另一优选例中，所述的待测物包括肿瘤标志物、心肌标志物等特异性的 蛋白。

在另一优选例中，所述测试区的荧光激发或发射光谱与所述吸光物质的吸 收光谱全部或部分重叠。

在另一优选例中，所述荧光物质选自下组：荧光素、羧基荧光素、2‑甲氧 基荧光素、4，5‑二甲氧基荧光素、罗丹明、藻红蛋白、量子点、或稀土元素离 子或其螯合物。

在另一优选例中，所述的吸光物质选自下组：胶体金、纳米金棒、纳米银 棒或其组合。

在另一优选例中，所述的胶体金是平均粒径为10‑70nm的胶体金颗粒。

在另一优选例中，在测试区和样品吸收区之间还包含至少一个对照区，所 述对照区含有固定化的对照剂，其中，所述对照剂用于特异性结合被吸光物质 标记的结合剂。

在另一优选例中，所述对照区用于揭示待测物的检测结果的有效性。

本发明第二方面提供了一种定量检测待测物的荧光分析方法，包括步骤：

(1)将待测物样品加至本发明第一方面所述的测试片的加样区；

(2)测量所述测试片的测试区的荧光强度，从而换算为待测物的数量。

在另一优选例中，当待测物为固相时，步骤(1)还包括加入溶剂(如水或缓 冲液)。

在另一优选例中，在步骤(2)中，将测试区与对照区中间处的荧光强度F2 与测试区的荧光强度F1的比值，和标准曲线进行比较，从而确定待测物的数量； 或者

将测试区的荧光强度F1和标准曲线进行比较，从而确定待测物的数量。

在另一优选例中，所述的方法还包括用已知浓度的待测物标准品进行测 量，从而制作标准曲线的步骤。

本发明第三方面提供了一种检测试剂盒，所述试剂盒包括：一本发明第一 方面所述的测试片；和使用说明书。

本发明第四方面提供了一种定量检测待测物的荧光测量装置，所述的装置 包括：

(a)一本发明第一方面所述的测试片；

(b)一用于检测荧光强度的检测器；和

(c)描述使用方法的使用说明。

在另一优选例中，所述装置还包括光源和计算机。

所述光源通过光导纤维照射到检测线处，激发出的荧光通过光导纤维进入 检测器，由计算机进行数据处理和分析。

应理解，在本发明范围内中，本发明的上述各技术特征和在下文(如实施例) 中具体描述的各技术特征之间都可以互相组合，从而构成新的或优选的技术方 案。限于篇幅，在此不再一一累述。

图1是测试片示意图。

图2是检测装置示意图。

图3是实施例1的AFP标准系列浓度(C)与相应荧光强度比值(F2/F1)标准曲 线图。

图4是实施例2的CRP标准系列浓度的对数值(lgC)与相应荧光强度比值的 对数值lg(F2/F1)标准曲线图。

本发明人通过长期而深入的研究，发现了一种基于荧光淬灭原理的检测方 法，所述方法不仅可以通过目测测试区的颜来判断是否含有待测物；还可以 通过测量测试区荧光强度的方式来定量检测待测物，上述方法中加入可流动的 荧光物质，然后通过淬灭物质对荧光物质的荧光强度的影响，从而测定待测物 的数量。所述方法不仅具有灵敏度高，定量准确的优点，而且操作十分简便、 快捷、且成本低廉。所述方法是基于本发明提供的一种测试片，通过一种含有 光源和检测器的装置实现了对待测物的定量检测。在此基础上，发明人完成了 本发明。

测试片

现在更详细地描述用于制造本发明测试片的方法和材料。应注意，测试片 的具体构造可以变化，这取决于意图用测试片来进行的具体测试。在实施例之 外制造测试片的变动方法，也落于本发明范围之中。

如图1所示，测试片1可包括背衬片2，其长度与测试片相同。

加样区3位于测试片的一端，样品垫片31位于加样区，可通过粘合剂粘贴 于加样区。

吸收区7位于测试片的另一端，在加样区的远端，吸水垫片71位于吸收区。

结合区4位于加样区和吸收区之间，在加样区的近端和吸收区的远端，结 合垫片41位于结合区。

测试区5(也称检测线)位于结合区和吸收区之间，通常测试区设置在膜片56 上，通过所述膜片连接结合垫和吸水垫。优选地，所述膜片上还设置有对照区 6(也称质控线)，对照区位于测试区和吸收区之间，也可以位于测试区和结合区 之间，并与测试区之间有适当的空间。

测试片制造方法，优选地，如图1所示，分别将样品垫片、结合垫片、膜 片、吸水垫片通过粘合剂粘贴于背衬板上，即得所述测试片。

背衬片可以用任何稳定的、无孔的材料制成，其强度应足以支承材料和粘 于其的测试片。因为许多测定用水作为扩散介质，因此背衬片较佳地是基本上 不透水的。在一个优选例中，背衬片是用聚合物膜制成的，更佳地是用聚氯乙 烯膜制成的(如PVC胶板)。

样品垫片可用任何吸收性材料制成。可使用的材料例子包括：纤维素、硝 酸纤维素、乙酸纤维素、玻璃纤维、尼龙、聚电解质离子交换膜、丙烯共聚物 /尼龙、和聚醚砜。

结合垫片或膜片可以用任何材料制成，只要该材料有足够孔隙度从而允许 在表面和内部发生流体的毛细管作用。结合垫片或膜片应有足够的孔隙度，从 而允许涂有抗体或抗原的颗粒移动。结合垫片或膜片还可被含待检测分析物的 样品中所用的液体润湿(例如，对于水性液体具有亲水性，对于有机溶剂具有疏 水性)。通过例如在美国专利No.4,340,482或No.4,618,533中所述的方法(这些方 法描述了将疏水表面转变成亲水表面)，可以改变其疏水性从而使其具有亲水性 以便用于水性液体。可用于制造结合垫片或膜片的材料例子包括：聚脂膜、纤 维素、硝酸纤维素、乙酸纤维素、玻璃纤维、尼龙、聚电解质离子交换膜、丙 烯共聚物/尼龙、和聚醚砜(polyethersulfone)。在一个优选例中，结合垫片是用 聚脂膜制成的，膜片是用硝酸纤维素制成的。

吸收垫片可以用任何能吸收作为样品和缓冲液的液体的材料制成。吸收垫 片的吸收能力应足够大，以便吸收添加至测试片的液体。适用于吸收垫片的材 料的例子包括纤维素和玻璃纤维。

所述对照区用于揭示待测物的检测结果的有效性。所述对照区含有固定化 的对照剂，其中，所述对照剂用于特异性结合被吸光物质标记的、游离的或结 合有待测物的结合剂。

检测方法

本发明测试片可用于大量不同的侧流分析方法，而这些分析方法涉及使用 一种或多种可流动的结合剂和一种可流动的检测剂，以及一种固定化的捕获 剂。

优选地，所述方法包括步骤：

(1)将待测物样品加至本发明所述的测试片的加样区；

(2)测量所述测试片的测试区的荧光强度，从而换算为待测物的数量。

在加样后，样品中的待测物移动至结合区，所述结合区含有结合剂和检测 剂，所述待测物与其中的结合剂结合，从而形成含吸光物质的复合物；接着， 结合区中检测剂和得到的含吸光物质的复合物移动至测试区，与其中的捕获剂 结合，从而形成富集有吸光物质和荧光物质的测试区。

具体地，当所述吸光物质影响(部分淬灭或全部淬灭)所述测试区的荧光强 度时，本发明的检测方法即可通过检测测试区荧光强度来测定待测物的数量。

待测物或其等同物

如本文所用，术语“待测物”、“其等同物”或“分析物”指待用测试片 检测以及可任选地被定量测定的、样品中的任何组份，待测物或其等同物或分 析物的例子包括：蛋白质，如激素或其他分泌蛋白质、酶和细胞表面蛋白；糖 蛋白；肽；小分子；多糖；抗体(包括单克隆抗体或多克隆抗体及其片段)；核 酸；药物(包括等强心甙类药物)；毒素；；病毒或病毒颗粒；细胞 壁组份；或其他具有表位的化合物。

优选地，所述的待测物包括肿瘤标志物、心肌标志物等特异性的蛋白，所 述肿瘤标志物选自下组：甲胎蛋白(AFP)、C‑反应蛋白(CRP)、癌胚抗原(CEA)、 癌抗原125(CA125)、糖抗原19‑9(CA19‑9)、总前列腺特异性抗原(PSA)、游离前 列腺特异性抗原(f‑PSA)、神经原特异性烯醇化酶(NSE)、糖链抗原(CA242)、 癌抗原(CA15‑3)、或人绒毛膜促性腺激素(β‑HCG)。

结合剂

本发明所用的结合剂可以是任何能够结合于待测物或其等同物的物质。具 体地，为特异性结合待测物或其等同物的物质。所述结合剂中至少一种是被吸 光物质标记，所述结合剂能与待测物或其等同物结合形成含吸光物质的复合 物；

有各种不同类型的分子可用作分析物结合剂，其中包括例如：寡核苷酸、 抗体、工程化蛋白、肽、半抗原、或含有抗原(该抗原具有分析物结合位点)的 异源混合物的裂解物。P.Holliger等人，Trends in Biotechnology 13：7‑9(1995)； S.M.Chamow等人，Trends in Biotechnology 14：52‑60(1996)。如果待检测分析物 是配体，那么可使用结合于该配体的受体，反之亦然。

优选地，所述的待测物或其等同物是抗原，且所述的结合剂是可结合于所 述抗原的抗体；或者所述的待测物或其等同物是抗体，且所述的结合剂是可结 合于所述抗体的抗原或所述抗体的抗体(抗抗体)。

检测剂

本发明所用的检测剂可以是任何能结合测试区捕获剂的物质，包括例如： 抗体、工程化蛋白、肽、半抗原、或含有抗原(该抗原具有分析物结合位点)的 异源混合物的裂解物。

优选地，可以通过抗原和抗体(或抗体和抗体的抗体)的结合或寡核苷酸与 互补核酸单链特异性结合的方式，或通过生物素(biotin)和链亲和素 (Streptavidin，SA)的结合方式，将检测剂与捕获剂结合。

所述检测剂是被荧光物质标记的，且不与结合剂直接或间接地结合；所述 “间接地结合”是指将检测剂和结合剂连接于其他的同一个物质上。

捕获剂

本发明所用的捕获剂可以是任何能结合含吸光物质的复合物和/或检测剂 的物质，包括例如：抗体、工程化蛋白、肽、半抗原、或含有抗原(该抗原具有 分析物结合位点)的异源混合物的裂解物。

所述捕获剂用于捕获从结合区移动至测试区的含吸光物质的复合物和检 测剂。从而使得含吸光物质的复合物和检测剂富集在测试区。

优选地，可以通过抗原和抗体的结合或寡核苷酸与互补核酸单链特异性结 合的方式或通过生物素(biotin)和链亲和素(Streptavidin，SA)的结合方式，将捕 获剂与含吸光物质的复合物和/或检测剂结合，从而将含吸光物质的复合物和/ 或检测剂富集混合于测试区。

所述捕获剂和含吸光物质的复合物或检测剂的结合为特异性结合。优选 地，所述的捕获剂是抗体，且所述的检测剂是可结合于所述抗体的抗体(抗抗 体)；或者所述的捕获剂为链亲和素，且所述的检测剂为荧光标记的生物素。

标记物质

连于结合剂或检测剂的可检测标记物包括大量不同物质，只要标记物能够 被检测。可检测标记物的例子包括(但并不限于)：颗粒、发光标记物、比标 记物、荧光标记物、化学标记物、酶、放射性标记物、或射频标记物、金属胶 体、和化学发光标记物。常用检测方法的例子包括(但并不限于)：光学方法， 如测量光散射、单反射、光度计或光电倍增管；放射性(用盖革计数器等进行测 量)；导电性或电介质(电容)；电化学法检测所释放的电活性物质，如铟、铋、 镓、碲离子[如用Hayes等人(Analytical Chem.66：1860‑1865(1994)所述的方法]， 或亚铁[如用Roberts和Durst(Analytical Chem.67：482‑491(1995)所提出的 方法。其中通过在检测区滴加洗涤剂，使包裹在脂质体中的亚铁被释放 出，然后用电化学法检测释放的亚铁]。其他常规方法只要合适，也可使 用。

在一个优选例中，可检测标记物是颗粒。可使用的颗粒例子包括(但并不限 于)：胶体金颗粒、胶体硫颗粒、胶体硒颗粒、胶体硫酸钡颗粒、胶体硫酸铁颗 粒、金属碘酸盐颗粒、卤化银颗粒、二氧化硅颗粒、胶体(水合)金属氧化物颗 粒、胶体金属硫化物颗粒、胶体硒化铅颗粒、胶体硒化镉颗粒、胶体金属磷酸 盐颗粒、胶体金属铁酸盐颗粒，涂有有机或无机层的上述任一种胶体颗粒，蛋 白质或肽分子、脂质体、或有机聚合物乳胶颗粒，例如聚苯乙烯乳胶珠。

用于检测剂的标记物，本发明优先选用荧光标记物(简称荧光物质)；用于 结合剂的标记物，本发明优先选用吸光物质标记物(简称吸光物质)。当荧光物 质和吸光物质通过特定的方式结合后，若荧光物质的激发或发射光谱与吸光物 质的吸收光谱部分或完全重叠时，吸光物质会影响(部分淬灭或全部淬灭)荧光 物质的荧光，从而通过检测荧光物质的荧光强度来测定待测物的数量。

荧光物质和吸光物质的选择

用于本发明标记的荧光物质和吸光物质应配合使用，基本原则是荧光物质 的激发或发射光谱与吸光物质的吸收光谱部分或完全重叠。

最优的是完全重叠，如此会有较高的检测灵敏度。

代表性的荧光物质包括(但并不限于)：荧光素、羧基荧光素、2‑甲氧基荧 光素、4，5‑二甲氧基荧光素、罗丹明、藻红蛋白(Phycoerythrin，PE)、量子点、 稀土元素离子(如Eu3+)及其螯合物等组合，只要所选荧光物质的激发或发射光 谱与所选吸光物质的吸收光谱有重叠即可。

代表性的吸光物质包括(但并不限于)：胶体金、纳米金棒、纳米银棒等组 合，只要所选吸光物质的吸收光谱与所选荧光物质的激发或发射光谱重叠即 可。

胶体金颗粒可用任何常规方法制造，例如总结于G.Frens，1973 Nature  Physical Science，241：20(1973)中的方法。其他方法描述于美国专利No. 5,578,577、5,141,850、4,775,636、4,853,335、4,859,612、5,079,172、5,202,267、 5,514,602、5,616,467、5,681,775。

如本文所用，术语“纳米金棒”指具有一定纵横比、且横轴和纵轴处于 5‑200纳米范围的金颗粒。

一种特别优选的吸光物质是胶体金，尤其是粒径为20‑40nm的胶体金。

优选地，本领域技术人员常用荧光标记物质包括PE，PE的吸收光谱在 450～600nm之间，最大发射波长为575nm，而30nm胶体金的吸收光谱在 300～800nm，较宽泛，最大吸收峰为525～530nm处，与PE的吸收和发射光谱均 有重叠，所以选择30nm胶体金作为相应的吸光物质。

荧光淬灭原理

含吸光物质标记的物质，被测试区的捕获试剂捕获后，含吸光物质标记的 物质会在测试区富集，并淬灭测试区的荧光强度。

当发明人在结合区加入含有荧光标记的物质和含吸光物质标记的物质(或 结合剂)时，与含吸光物质标记的物质一样，含有荧光标记的物质也会被测试区 的捕获剂捕获，在测试区富集，但是含吸光物质标记的物质和含有荧光标记的 物质是处于混合状态，而并不形成复合物。当荧光物质的激发或发射光谱与作 为荧光淬灭剂的吸光物质的吸收光谱全部或部分重叠时，因共振能量转移，吸 光物质会对该荧光物质的荧光产生淬灭作用。

工作原理

现结合图1和具体的实施方式说明本发明检测方法的工作原理：

检测线处固定能同时与结合剂、检测剂结合的物质(即捕获剂)，所述检测 剂与结合剂均位于结合垫片，可流动。所述结合剂与检测剂被样品溶解后，在 层析过程中所述结合剂与样品中的待测物或其等同物结合形成含吸光物质的 复合物，所述复合物在流经测试区(或检测线)时被捕获，待测物越多，被捕获 的所述复合物也就越多；同时，层析过程中所述检测剂流经检测线时也被捕获 (检测线处是所述复合物与检测剂的混合物)。

具体地，当所述复合物影响(部分淬灭或全部淬灭)所述检测剂的荧光强度 时，即可通过检测其荧光强度来测定待测物的数量。

本发明在此提供了基于上述原理的如下优选方法：

方法一：

将捕获剂(如链亲和素，即Streptavidin或SA)固定于检测线处。

(1.1)样品加在玻璃纤维样品垫片上，样品中的待测物(如抗原)在毛细作用 下向吸水垫片方向移动，途经载有结合剂(如能结合于抗原不同表位的金标抗 体、biotin标记的抗体)的聚酯膜结合垫片后，将所述结合剂完全复溶，层析过 程中抗原与结合剂形成“金标抗体‑抗原‑biotin抗体”的3元复合物，被检测线 处的Streptavidin捕获；

同时，样品也将结合垫片上的检测剂(如biotin‑PE)完全复溶，层析过程中， 所述检测剂也被检测线处的Streptavidin捕获；

检测线处3元复合物中的金淬灭检测剂中PE的荧光。

(1.2)多余的游离金标抗体继续前移，被固定在质控线处的对照剂(如抗金 标抗体的抗体)捕获，呈现红，说明检测有效。

(1.3)分别测定膜条检测线处的荧光强度F1及检测线与质控线中间处的荧 光强度F2，计算F2/F1的值，值越大说明待测物浓度越高，反之则越低。

方法二：

将捕获剂(如针对待测物中抗原的捕获抗体)固定于检测线处；

所述捕获抗体的抗体标记PE作为检测剂。

(1.1)样品加在玻璃纤维样品垫片上，样品中的待测物(如抗原)在毛细作用 下向吸水垫片方向移动，途经载有结合剂(如抗原的金标抗体)的结合垫片后， 将所述结合剂完全复溶，层析过程中抗原与结合剂形成“金标抗体‑抗原”的2 元复合物，被检测线处的捕获抗体捕获；

同时，样品也将结合垫片上的检测剂完全复溶，层析过程中，所述检测剂 也被检测线处的捕获抗体捕获；

检测线处2元复合物中的金淬灭检测剂中PE的荧光。

(1.2)多余的游离金标抗体继续前移，被固定在质控线处的对照剂(如抗金 标抗体的抗体)捕获，呈现红，说明检测有效。

(1.3)分别测定膜条检测线处的荧光强度F1及检测线与质控线中间处的荧 光强度F2，计算F2/F1的值，值越大说明待测物浓度越高，反之则越低。

本发明还适用于竞争抑制法：

(1.1)将结合剂(如金标抗体)、检测剂(如biotin‑PE)的混合物与待测物等同 物(如biotin标记抗原)分别滴加于附图1的结合垫片处，结合剂、检测剂混合物 靠近样品垫，待测物等同物靠近检测线，2者隔开适宜的空间距离。

(1.2)样品加在玻璃纤维样品垫片上，其中的待测物(如抗原)向吸水垫片方 向移动，途经载有所述结合剂、检测剂的结合垫片，将二者完全复溶，样品中 的待测物和结合垫片上的待测物等同物竞争性地与结合剂形成金标抗体‑抗原 的“第1二元复合物”与金标抗体‑抗原‑biotin的“第2二元复合物”。

(1.3)上述2种复合物继续前行至膜片56的检测线处，“第2二元复合物” 被固定在此的捕获剂(如Streptavidin)捕获，待测物浓度越高，形成的“第2二元 复合物”越少，相应地，被捕获的“第2二元复合物”越少；

同时，检测剂在层析过程中也被膜片56检测线处的捕获剂(如Streptavidin) 捕获；

多余的游离金标抗体或含有金标抗体的物质(如金标抗体‑抗原)继续前移， 被固定在质控线处的对照剂(如抗金标抗体的抗体)捕获，呈现红，说明检测 有效。

(1.4)分别测定膜条检测线处的荧光强度F1及检测线与质控线中间处的荧 光强度F2，计算F2/F1的值，值越大说明待测物浓度越小，反之则越大。

检测装置

现结合图2说明本发明的检测装置：

如图2所示，所述装置可以包括：测试片、检测器、光源、光导纤维和计 算机。还可以包括一份检测方法的使用说明。其中测试片的工作原理如上所述， 荧光强度的检测方法可以如下所述(但不仅限于此)，任何可用于检测荧光强度 的方法均可用于本发明的检测装置。

荧光强度的检测

光源通过光导纤维照射到检测线处，激发出的荧光通过光导纤维进入检测 器，所得到的数据由计算机进行处理和分析。

所述光导纤维可以是Y型的，分别连接于光源、检测线和检测器。

本发明中，光源用于提供某一发射波长的光线，从而激发荧光物质发出荧 光。可选用任何可以提供合适波长的光源，包括(但不限于)：LED、氙灯、卤 钨灯、激光等。

一种优选的光源是激光光源，激光光源可用本领域常规的方法和设备(如激 光器)产生。代表性的激光器包括(但并不限于)：半导体激光器、氦氖激光器、 氩离子激光器、还包括波长可选的激光器、多波长激光器和双波长激光器等。

激光器产生的激光波长与激光介质有关，常见的激光波长见下表1：

表1

  激光种类   波长(纳米)

  氩氟激光(紫外光)   193

  氪氟激光(紫外光)   248

  氙氯激光(紫外光)   308

  氮激光(紫外光)   337

  氩激光(蓝光)   488

  氩激光(绿光)   514

  氦氖激光(绿光)   543

  氦氖激光(红光)   633

  罗丹明6G染料(可调光)   570‑650

  红宝石(CrAlO 3)(红光)   694

  钕‑钇铝石榴石(近红外光)   1064

本发明中的检测器可以是(但不限于)光电倍增管、CCD或光电池等。

标准曲线

在本发明中，可以直接通过测定检测线处的荧光强度，从而确定所述待测 物的数量；也可以通过测定检测线处的荧光强度F1和检测线与质控线中间处的 荧光强度F2，计算F2/F1的值，从而确定所述待测物的数量。

在优选例中，可通过与标准曲线进行比较，从而获得定量结果。

标准曲线可用以下方法获得：

将已知的不同浓度(C)的待测物样品通过上述检测方法后，分别测量其在检 测线处的荧光强度(F)，将各浓度(C)或其对数值(log C或lg C)和相应的荧光强度 (F)或其对数值(log F或lg F)作图，得到标准曲线；或者

将已知的不同浓度(C)的待测物样品通过上述检测方法后，分别测量其在检 测线处的荧光强度(F1)，检测线与质控线中间处的荧光强度F2，计算F2/F1的值， 将各浓度(C)或其对数值(log C或lg C)和相应的荧光强度比值(F2/F1)或其对数 值(log F2/F 1或lg F2/F1)作图，得到标准曲线。

本发明的主要优点有：

(1)本发明提供了一种测试片。

(2)本发明提供了一种上述测试片的检测方法，所述方法基于荧光淬灭原 理，通过测量荧光物质的荧光强度从而测定待测物的数量，所述方法快捷、简 便、成本低廉，而且灵敏度高，定量准确。

(3)本发明还提供了一种检测试剂盒和检测装置，所述检测试剂盒和检测 装置基于上述检测方法，可广泛用于定量检测领域。

下面结合具体实施，进一步阐述本发明。应理解，这些实施例仅用于说明 本发明而不用于限制本发明的范围。下列实施例中未注明具体条件的实验方 法，通常按照常规条件，例如Sambrook等人，分子克隆：实验室手册(New York： Cold Spring Harbor Laboratory Press，1989)中所述的条件，或按照制造厂商所建 议的条件。除非另外说明，否则百分比和份数按重量计算。

实施例

试剂和设备：

针对AFP的1对单克隆抗体(Ab1和Ab2)，市售品；

针对C‑反应蛋白(CRP)的单克隆抗体，市售品；

CRP抗原，市售品；

AFP抗原购自Biodesign；

30nm的胶体金，市售品；

PE购自Invitrogen公司；

Streptavidin(SA)，市售品；

小牛血清白蛋白(BSA)，市售品；

Biotin，市售品；

检测器：USB4000‑FL(美国海洋光学公司)；

光源：532nm激光光源。

实施例1：血清中甲胎蛋白(AFP)的检测(反应体系中的检测剂含有荧光物 质)

1、金标抗体的制备

1.1胶体金‑抗体保存液

 四硼酸钠   0.1g

 小牛血清白蛋白(BSA)   0.25g

 NaN 3   0.025g

加水溶解后用6N HCl调pH至7.4，补水至250ml，用0.45μm滤膜过滤后， 4～8℃保存。

1.2工作液

  Na 2HPO 4·12H 2O   6.1g

  NaCl   8.5g

  PVP40   5.0g

  硼酸   2.1g

  PEG   1.0g

  10％BSA   50ml

  NaN 3   0.2g

加水溶解后用6N HCL调pH至7.0～7.5补水至1000ml，用0.45μm滤膜过滤 后，4～8℃保存。

1.3金标抗体(Gold‑Ab1)的制备

1.3.1取20～30nm颗粒胶体金液20ml，在磁力搅拌下缓慢加入已纯化的 Ab1抗体1.0ml(0.6mg/ml)，在室温下搅拌30min；

1.3.2加10％的BSA 0.8ml(终浓度0.4％)，室温搅拌5min；

1.3.3加10％的PEG 0.4ml(终浓度0.2％)，室温搅拌5min；

1.3.4 12000～1500r/min离心60～40min，小心吸离心上清，沉淀溶于0.5ml 保存液中，金标抗体的光密度(O.D)约为100O.D，其中Ab1抗体的浓度为 1mg/ml，置4℃保存备用；

2、biotin标记Ab2抗体(biotin‑Ab2)

2.1Ab2预处理

2.2取上述预处理的Ab2 10μL，加入25μL的1mg/ml NHSS‑Biotin DMSO 溶液，混匀，4℃冰箱避光反应2小时，透析过夜备用。

3.biotin标记PE(biotin‑PE)

biotin‑PE的制备方法同步骤2.2，不同点在于，用已经纯化的PE替代经预处 理的Ab2，PE的终浓度为0.65mg/ml。

4、SA点膜与上载Gold‑Ab1、biotin‑Ab2

取SA 1mg/ml的磷酸盐缓冲液(pH7.2)0.5μl点在附图1检测线位置，避光室 温干燥；

取Gold‑Ab1、biotin‑Ab2、biotin‑PE各0.5μl滴加在附图1的结合垫片上。

5、标准曲线制备

5.1用工作液配制AFP系列标准溶液(浓度见表2)；

5.2取6只测试片，水平放置，分别在各样品垫上加6种浓度的50μl标准溶 液；

5.310min后，分别测定各测试片上检测线处575nm的荧光强度F1及检测线 与质控线中间处575nm的荧光强度F2，计算F2/F1的值，数据见表2，标准曲线(以 浓度C为横坐标、F2/F1为纵坐标)见图3。

表2AFP标准系列浓度与相应荧光强度

6、样本检测

用血清样本替代标准系列溶液，重复5.2、5.3步骤，将F2/F1代入标准曲线， 测得6个样本的AFP浓度见表3。

表3本发明方法检测结果与罗氏电化学发光法检测结果

本发明方法检测结果与罗氏电化学发光法检测结果相关性良好， R2＝0.9856。

实施例2：基于竞争抑制法检测C‑反应蛋白(CRP)

1、CRP单抗标金(Gold‑CRP)

过程同实施例1，不同点在于，用已纯化的CRP单抗替代Ab1抗体，标记后 胶体金O.D值为75，CRP单抗浓度为1mg/ml。

2、CRP抗原标记biotin(biotin‑CRP)

过程同实施例1中的步骤2.2，不同点在于，用已纯化的CRP替代经预处理 的Ab2，标记后CRP抗原浓度0.4mg/ml。

3、biotin标记PE

用实施例1的biotin‑PE。

4、SA点膜与上载Gold‑CRP、biotin‑CRP和biotin‑PE

取SA 1mg/ml的磷酸盐缓冲液(pH7.2)0.5μl点在附图1检测线位置，避光室 温干燥；

取Gold‑CRP和biotin‑PE各0.5μl滴加在图1的聚脂膜结合垫片靠近样品垫 的位置；取biotin‑CRP0.5μl滴加于图1聚脂膜靠近检测线的位置，避光室温干 燥。

5、标准曲线制备

5.1用工作液配制0、1、10、50、200μg/ml的CRP系列标准溶液(浓度见表 4)；

5.2取5只测试片，水平放置，分别在各样品垫上加5种浓度的50μl标准溶 液；

5.3 10min后，测定各测试片上检测线处575nm的荧光强度F1及检测线与质 控线中间处575nm的荧光强度F2，计算F2/F1的值数据见表4，标准曲线(以lg(C) 为横坐标，lg(F2/F1)为纵坐标)见图4。

表4标准系列浓度及相应荧光强度

6、样品检测

用血清样本替代标准系列溶液，重复5.2、5.3步骤，将F2/F1代入标准曲线 测得6个样本的CRP值见表5。

表5本发明方法检测结果与酶联免疫法法检测结果

本发明方法检测结果与酶联免疫法法检测结果的相关性良好，R2＝0.9615。

结论：

本发明所述方法加入可流动的荧光物质标记的检测剂，通过测量淬灭物质 (即吸光物质或被吸光物质标记的物质)对荧光物质的荧光强度的影响来测定待 测物的数量；其中，所述淬灭物质和荧光物质不需要形成复合物，只是将两种 物质富集、混合在测试区，即可发生荧光淬灭作用，从而省去了淬灭物质和荧 光物质形成复合物时所必须的处理步骤，操作十分简便。

可见，本发明所述方法不仅具有灵敏度高，定量准确的优点，而且快捷、 操作简便、成本低廉。

在本发明提及的所有文献都在本申请中引用作为参考，就如同每一篇文献 被单独引用作为参考那样。此外应理解，在阅读了本发明的上述讲授内容之后， 本领域技术人员可以对本发明作各种改动或修改，这些等价形式同样落于本申 请所附权利要求书所限定的范围。