一、动物的编号、捉拿和固定。
1、动物的编号 犬、兔等动物可用特制的号码牌固定于耳。白家兔和小动物可用3-5%
的黄溶液涂于毛上标号。如编号1-10号时，将小白鼠背部分前肢、腰部、后肢的左、中、右部共九个区域，从右到左1-9号，第10号不涂黄(图1-1)如加上其它颜的染料还可进行1-100号和1-1000号等更多编号。
图1-1 小白鼠背部编号 图1-2 小白鼠双手捉持法
（引自：医学技能学实验教程. 白波. 2004） （引自：医学技能学实验教程. 白波. 2004）
2、动物的捉拿和固定
①小鼠：右手抓住其尾，放在实验台上或鼠笼铁纱网上，在其向前爬时，左手拇指及食指沿其背抓住两耳及头颈部皮肤，并以左手的小指和掌部夹住鼠尾固定。另一抓法是只用手，用食指和拇指抓住鼠尾后再用小指和掌部夹住鼠尾，以拇指及食指捏住其颈部皮肤。前一种方法易学，后一种方法便于快速捉拿。（见图1-2，1-3） 图1-3 小白鼠双手捉持法
（引自：医学技能学实验教程. 白波. 2004）
②大鼠：以右手或持夹子夹住尾巴，左手戴上防护手套固定头部防止被咬，应避免用力过大造成大鼠窒息死亡。根据实验需要麻醉或固定大鼠于鼠笼内或用绳绑其四肢固定于大鼠
手术板上。
③豚鼠：以右手抓住豚鼠头颈部，将其两前肢在豚鼠头与右手拇指与食指之间，轻轻扣住颈胸部，右手抓住两后肢(对体重较大的豚鼠则可托起其臀部)，使腹部向上。
④兔：用手抓起兔脊背近后颈部皮肤，手抓面积应尽量大些。以另一手托起兔的臀部。将兔仰卧固定时，一手抓住颈部皮肤，另一只手顺着腹部抚摸至膝关节处压住关节。另一人将绳子用活结捆绑兔的四肢，使兔腹部向上固定在兔手术台上。头部则用兔头固定夹固定，也可用棉线将兔的门牙固定于兔手术台上的柱子上，后者更常用(图1-4)。
铝合金框架图1-4 家兔捉持法
（引自：医学技能学实验教程. 白波. 2004）
二、实验动物的去毛
动物去毛是手术野的皮肤准备之一。原则是去毛范围应大于手术野，不破坏皮肤的完整性。具体方法有：
1、剪毛法 常用于兔犬去毛。操作时用剪刀紧贴皮肤依次剪毛，切忌提起皮肤，否则将剪破皮肤。剪下的毛应放入盛有少量水的杯中，并可用湿纱布擦去已剪断的毛。
2、拨毛法：一般用于兔和犬的静脉输液部位。拨毛除使视野清晰外，还能刺激局部血管扩张。
3、剃毛法：进行动物的慢性实验时用。
4、脱毛法：用于动物的无菌手术，一般先将手术野的毛剪短，用脱毛液在局部涂一层(注意手不要直接接触脱毛液)，待2-3min后用清水洗去脱落的毛，再用纱布擦干后涂一层凡士林。在此介绍两种脱毛液配方。配方1：硫化钠3，肥皂粉1，淀粉7，加水调成糊状。配方2：8%的硫化钠水溶液。
三、实验动物的药方法
在动物实验中，为了观察药物对机能功能、代谢及形态引起的变化，常需将药物注入动物体内。给药的途径和方法是多种多样的，可根据实验目的、实验动物种类和药物剂型等情况确定。
注射时以左手拇指和食指提起皮肤，将连有5（1/2）号针头的注射器刺入皮下。皮下注射部位一般狗、猫多在大腿外侧，豚鼠在后大腿的内侧或小腹部；大白鼠可在侧下腹部。兔在背部或耳根部注射。蛙可在脊背部淋巴腔注射。 （二）皮内注射
皮内注射时需将注射的局部脱去被毛，消毒后，用左手拇指和食指按住皮肤并使之绷紧，在两指之间，用结核菌素注射器连4(1/2)细针头，紧贴皮肤表层刺入皮内，然后再向上挑起并再稍刺入，即可注射药液，此时可见皮肤表面鼓起一白小皮丘。
（三）肌肉注射
肌肉注射应选肌肉发达，无大血管通过的部位，一般多选臀部。注射时垂直迅速刺入肌肉，回抽针栓如无回血，即可进行注射。给小白鼠、大白鼠等小动物作肌肉注射时，用左手抓住鼠两耳和头部皮肤，右手取连有5（1/2）针头的注射器，将针头刺入大腿外侧肌肉，将药液注入。
（四）腹腔注射
用大、小白鼠做实验时，以左手抓住动物，使腹部向上，右手将注射针头于左（或右）下腹部刺入皮下，使针头向前推 0.5-1.0cm，再以45度角穿过腹肌，固定针头，缓缓注入药液（图1-5），为避免伤及内脏，可使动物处于头低位，使内脏移向上腹。若实验动物为家兔，进针部位为下腹部的腹白线离开1cm处。
图1-5 小白鼠腹腔注射方法 图1-6 家兔耳缘静脉注射方法
（五）静脉注射
1、兔：兔耳部血管分布清晰。兔耳中央为动物，耳外缘为静脉。内缘静脉深不易固定，故不用。外缘静脉表浅易固定，常用。先拔去注射部位的被毛，用手指弹动或轻揉兔耳，使静脉充盈，左手食指和中指夹住静脉的近端，拇指绷紧静脉的远端，无名指及小指垫在下面，右手持注射器连6号针头尽量从静脉的远端刺入，移动拇指于针头上以固定针头，放开食指和中指，将药液注入（图1-6），然后拔出针头，用手压迫针眼片刻。
2、小白鼠和大白鼠：一般采用尾静脉注射，鼠尾静脉有三根，左右两侧及背侧各一根，左右两侧尾静脉比较容易固定，多采用，背侧一根也可采用，但位置容易固定。操作时先将动物固定在鼠筒内或扣在烧杯中，使尾巴露出，尾部用45-50℃的温水浸润半分钟或用酒精擦拭使血管扩张，并可使表皮角质软化，以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧，使静脉充盈，用中指从下面托起尾巴，以无名指和小指夹住尾巴的末梢，右手持注射器连4(1/2)号细针头，使针头与静脉平行（小于30℃），从尾下四分之一处（约距尾尖2-3cm）处进针，此处皮薄易于刺入，先缓注少量药液，如无阻力，表示针头已进入静脉，可继续注入。注
射完毕后把尾部向注射侧弯曲以止血。如需反复注射，应尽可能从末端开始，以后向尾根部方向移动注射（图1-7）。
图1-7 小鼠尾静脉注射方法
3、狗：狗静脉注射多选前肢内侧皮下头静脉（图1-8）或后肢小隐静脉（图1-9）注射。注射前由助手将动物侧卧，剪去注射部位的被毛，用胶皮带扎紧（或用手抓紧）静脉近端，使血管充盈，从静脉的远端将注射针头平行刺入血管，待有回血后，松开绑带（或两手），缓缓注入药
图1-8 狗前肢头静脉注射 图1-9 狗后肢小隐静脉注射
4、蛙（或蟾蜍）：将蛙或蟾蜍脑脊髓破坏后，仰卧固定于蛙板上，沿腹中线稍左剪开腹肌，可见到腹静脉贴着腹壁肌肉下行，将注射针头沿血管平行方向刺入即可（图1-10）。
（六）淋巴囊注射
蛙类常采用此法，因其皮下有数个淋巴囊，注入药物甚易吸收。腹部淋巴囊和头背淋巴囊常作为蛙类给药途径。一般多选用腹部淋巴囊给药。注射时将针头从蛙大腿上端刺入，经大腿肌层入腹壁肌层，再进入腹壁皮下，即进入淋巴囊，然后注入药液。有时也可采用胸淋巴囊给药。方法是将针头刺入口腔，使穿过下颌肌层入胸淋巴囊内注入药液，一次最大注射量为1毫升。蛙全身分布为咽、胸、背、腹侧、腹、大腿和脚等七个淋巴囊（图1-11）。
图1-10 蛙腹壁静静注射
几种常用的动物不同给药途径的注射量可参考表1-1。
表1-1 几种动物不同给药途径的常用注射量（ml）
注射途径 | 小鼠 | 大鼠 | 豚鼠 | 兔 | 石灰投加狗 |
腹 腔 | 0.2-1.0 | 1-3 | 2-5 | 5-10 | 5-15 |
肌 肉 | 0.1-0.2 | 0.2-0.5 | 0.2-0.5 | 0.5-1.0 | 2-5 |
静 脉 | 0.2-0.5 | 1-2 | 1-5 | 3-10 | 5-15 |
皮 下 | 0.1-0.5 | 0.5-1.0 | 0.5-2 | 1.0-3.0 | 蜂盘3-10 |
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纱网
图1-11 蛙全身淋巴囊分布
（七）经口给药
在急性试验中，经口给药多用灌胃法，此法剂量准确，适用于小白鼠、大白鼠、家兔等动物。
1、小鼠、大鼠（或豚鼠）用输血针头或小号腰穿针头，将其尖端斜面磨剂，用焊锡在针尖周围焊一圆头，注意勿堵塞针孔，即成灌胃针；亦可用烧成圆头的硬质玻璃毛细管或特制的塑料毛细秋，作为导管。灌胃时将针按在注射器上，吸入药液。左手抓住鼠背部及颈
钙锌复合稳定剂部皮肤将动物固定，右手持注射器，将灌胃针插入动物口中，沿咽后壁徐徐插入食道。动物应固定成垂直体位，针插入时应无阻力。若感到阻力或动物挣扎时，应立即停止进针或将针拔出，以兔损伤或穿破食道以及误入气管。
一般当灌胃针插入小鼠3-4 cm，大鼠或豚鼠4-6 cm后可将药物注入。常用的灌胃量小鼠为0.2-1 mL，大鼠1-4 mL，豚鼠为1-5 mL。
2、狗、兔、猫、猴 灌胃时，先将动物固定，再将特制的扩口器放入动物口中，扩口器之宽度可视动物口腔大小而定，如狗的扩口器可用木料制成长方形，长约10-15 cm，粗细应适合狗嘴，约2-3 cm，中间粘一小孔，孔的直途为5-10 cm。灌胃时将扩口器放于上述动物上下门牙之后，并用绳将它固定于嘴部，将带有弹性的橡皮导管（如导尿管），经扩口器上的小圆孔插入，沿咽后壁而进入食道，此时应检查导管是否正确插入食道，可将导管外口置于一盛水的烧杯中，如不发生气泡，即认为此导管是在食道中，未误入气管，即可将药液灌入（图1-12）。
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