浸制标本的制作方法

浸制标本的制作方法
浸制的植物标本是把植物沉浸在浸制药液中而制成的。制作程序较为简单,把标本用清水洗净,缚在玻璃片上,然后沉入盛有浸制药液的标本瓶中,再用封合剂将瓶口封严,最后,在标本瓶的上端贴上标签。
浸制液常用的有以下几种:
7%酒精,其优点是可以使标本保存较长时间,缺点是容易使标本脱。
5%福尔马林,其优点是可以临时保持实物的颜,价钱也比较便宜,缺点是药液本身容易变成褐。
另外,0.2%亚硫酸液或5%(氯化高汞)溶液都可作浸制液。还有人在生物学通报上写过文章,介绍用大蒜100克磨碎,加入5克酚液、200克蒸馏水,在30℃气温下密闭12小时,然后过滤,再加2克甘油,用作浸制液效果较好。
一般的浸制标本,要想保存在酒精中,最好是从弱酒精(30%)开始,渐次转入强酒精(70%)中,以免标本皱缩变形。
福尔马林的浸透力较差。外皮较厚的标本,往往在未浸透前,内部已经腐烂。因此,用福尔马林液浸制标本时,标本内部也要注射这种浸制液,或把标本剥开,以免内部腐坏。橡胶闸阀>vb连接sql数据库
标本经过酒精或福尔马林浸泡以后,呈僵硬状态,不能用于解剖。要想作成供解剖实验用的材料,可以在浸制液内加少量的甘油。
上述浸制标本,在不很长的时间内就褪了,标本因而失去了天然泽。为了保存植物标本的天然颜,需要配制特殊的浸制液,它们的配方因保存的颜而不同。
绿标本浸制液
将醋酸铜结晶加到50%冰醋酸溶液中,加到饱和状态为止。然后将这个饱和溶液用4倍水稀释,加热至80~85℃。把要做成标本的植物投到烧热的溶液中,继续加热。等到看见植物由绿变褐、由褐变绿时,即可把植物取出,用清水洗净,保存在5%福尔马林中。对于不适于烧煮或药液不易透入的植物,改用硫酸铜饱和水溶液700毫升、40%福尔马林50毫升、水250毫升的混合液,直接浸泡植物标本,浸泡的时间,要看植物幼嫩的程序以及种类而不同,一般地说,幼苗浸3~5天,而成长的植株需要浸8~14天。
最妥善的办法是从浸后的第二天开始,每天注意检查一次,看到植物由绿变黄,然后又由黄变绿时,即可取出,用清水将药液洗净,将洗净的标本投入5%福尔马林溶液中保存。
红标本浸制液
用硼酸粉450克、75~90%酒精2000毫升、40%福尔马林300毫升、水2000~4000毫升混合起来,澄清,取澄清液保存红标本,(如果是粉红标本,可以不加福尔马林)。另一种方法是:用硼酸粉30克、40%福尔马林40毫升、水4000毫升的混合液浸渍标本1~3天,等到标本由红变褐时,取出投入加上少许硼酸粉的0.15 ~ 0.2%亚硫酸溶液中保存。标本在这种保存液中会重现红。
黑、红紫、紫标本浸制液
用40%福尔马林450毫升、95%酒精540毫升、水18100毫升制成混合液,澄清,取澄清液保存标本。另外一种方法是:用40%福尔马林500毫升、饱和氯化钠水溶液1000毫升、水8700毫升混合,澄清,取澄清液保存标本。
黄、黄绿标本浸制液
用亚硫酸饱和溶液568毫升、95%酒精568毫升、水4500毫升混合,澄清,取澄清液保存标本。上述方法是对一般黄、黄绿标本而言,由于这种颜多是果实标本的颜,根据果实种类不同,还可以对其浸制液有所区别。淡绿的桃和杏:用0.1~0.5%亚硫酸水溶液1000毫升,加入5%硫酸铜溶液50毫升的混合液保存;梨、苹果、青葡萄:用1%亚硫酸100毫升、95%酒精100毫升、水800毫升、5%硫酸铜水溶液50毫升的混合液保存;黄番茄、柿子:浸入0.2%亚硫酸水溶液,加甘油少许。
封瓶口
标本瓶口的封合剂种类很多,仅介绍两种常用的材料。
石蜡
标本瓶的瓶盖盖好以后,把切碎的石蜡放在瓶口缝隙中,用烧热的镊子或小刀,把石蜡烫化、涂匀,等冷却以后,瓶口就封好了。溶化石蜡,切忌用火直接在瓶口上加热,特别是对用酒精作保存液的标本瓶,更要严格注意,以免发生意外。
转向节
鳔胶
将鳔胶切成小块,用水浸8~12小时,捞出后再切成更小的小块,除去未浸透的硬结,放入乳钵中捣成泥状,加少量水,使成均匀的乳剂,再放入重温锅内加热到粘稠为止。为了避免鳔胶在雨季发霉,可加入少量石碳酸。封瓶口时,瓶盖最好稍稍加温,然后用牙刷蘸鳔胶分别在瓶口和瓶盖上涂一薄层,立即将瓶盖盖好,5~6小时以后鳔胶就变干,将瓶口封死。
新鲜植物,建议用FAA固定液固定,本人曾经固定过数种标本,感觉不错,保存时间还可以,以备以后切片用等等。
再说题外话:
固定的目的和意义:固定就是用药品把细胞杀死,使细胞的原生质凝固,死后不发生变化,尽可能保持原来的结构以供我们观察。良好的固定剂,应是穿透力强,使细胞立刻致死,原生质全部凝固;不发生任何变形,增强折光率,并且不妨碍染。
F.A.A固定液(又称万能固定液),在植物研究上,应用最多,为植物组织最常用的固定液。固定时间,不受限制,短为24小时,长可延至数月或数年。野外工作,非常便利。并且固定的材料,不妨碍染,但对染体的固定不佳。材料固定后,用50%酒精洗涤数次。
[FAA固定液配法]
组成:50%或70%酒精 90毫升
比例:冰醋酸 5毫升
石墨密封圈福尔马林 5毫升
柔软材料用50%酒精,坚硬材料用70%酒精配制。
浸制标本的制作
许多无脊椎动物及鱼、两栖、爬行动物的整体标本和解剖标本,常用浸制的方法制成。浸制标本可保
持动物形态结构的完整性,并可长期保存。
(一)无脊椎动物整体浸制标本的制作
无脊椎动物种类繁多,有的躯体柔软,有的体被硬壳,有的躯体具较强的伸缩性。在制作标本时随上
述特征而有所不同。
1.躯体柔软的动物:如扁形动物门中的蜗虫,可用1%的铬酸处死及固定。为防止身体发生卷曲,可将固定后的标本用毛笔挑在培养皿中的一张湿滤纸上,放开展平。其上再加一张滤纸,把动物夹在中间,纸上放几片载玻片,再加入10%福尔马林液,经12h后,去掉滤纸并移入5%福尔马林溶液中保存。华枝
睾吸虫的浸制标本也可采用此法进行。
2.身体容易伸缩的动物:为防止动物因浸制而产生收缩,常采用下列方法进行制作:
(1)麻醉法:一般采用酒精、硫酸镁、薄荷脑、乙醚等麻醉剂先行麻醉,待动物深度麻醉后,再浸入
保存液中保存。
薄荷脑麻醉法——将具有触手的腔肠动物放入盛有水液的玻璃容器内,使动物距离水面1cm左右,待动物全部伸展后,将薄荷脑轻轻洒在水面上成一薄层(或以纱布将薄荷脑包起,用细线缠成直径约1cm的小球,将纱布球轻轻放在水面上),放置一段时间后(约1h),待动物已完全处于麻醉状态(用解剖针触动动物的触手,完全不动时),即可向容器中倒入纯福尔马林液,使其浓度达7%时为止。最后将已固定的标
本转入5%福尔马林液中保存。
酒精麻醉法——用95%酒精一滴滴加入培养有动物的水液中,使其达到10%左右的浓度,经1到几个小时后,用针刺动物,见无反应时,迅速将它浸入80%酒精内保存,或浸入到10%福尔马林液中固定保存。
线形动物及环节动物的标本制作可采用此种方法。
(2)窒息法:将螺类放入玻璃瓶中,加满清水不留空隙,再盖紧瓶盖,使瓶中没有空气存留。经数小时后,可见其腹足类头部与足部伸出亮口,如触之不动时,即用10%福尔马材液或80%的酒精固定保存。
3.体被坚硬外壳的动物:如软体动物中的瓣鳃类,为促使其外壳张开,使固定液迅速浸入动物体内,
可先将动物浸泡在开水内,待动物死亡贝壳自开后,取出并用清水冲洗干净。注意在开水中将其烫死时,不能放置太久(数分钟即可),否则内部柔软组织易被损坏。如需长久保存的标本,壳较厚且没有光泽,可用10%福尔马林液保存,而有光泽的种类最好用80%的酒精固定保存,以免贝壳失去光泽。
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(二)脊椎动物浸制标本的制作
1.鱼类的浸制标本制作
无糖糖浆
(1)整理姿态:将新鲜的鱼用纱布包好,干燥致死。然后用清水将鱼体表的粘液冲洗干净(勿损伤鳞片)。用注射器从腹部向鱼体内注射10%的福尔马林溶液,以固定内脏,防止腐烂。然后,将鱼的背鳍、臀鳍和尾鳍展开,用纸板及曲别针加以固定。把整理好的标本侧卧于解剖盘内。鱼体向解剖盘一侧可适量放些棉花衬垫,特别是尾柄部要垫好,以防标本在固定时变形。
(2)防腐固定:加入10%的福尔马林溶液至浸没标本,作为临时固定,待鱼硬化后取出。
(3)装瓶保存:用适当大小的标本瓶(标本瓶要长于鱼体6cm左右,以便贴上标签后仍能从瓶外看
到标本全貌),将固定好的鱼类标本,头朝下放入。或根据标本瓶的内径和高度截一玻璃片,将标本用两条丝线分别从鳃盖骨后缘体侧和尾柄部穿入,缚扎在玻璃片上。用橡胶瓶塞或软木塞剔好小槽做
成4个玻片固定脚,分别嵌在玻片两侧,将玻片和标本缓缓装入标本瓶内。最后,将10%福尔马林倒入瓶内至满,盖
严瓶盖。
(4)贴标签:将注有科名、学名、中名、采集地、采集时间的标签贴于瓶口下方。标签贴好后,可在
标签上用毛笔刷一层石蜡液,以防字迹褪。
2.两栖、爬行类浸制标本制作:
(1)整理姿态:把活的蛙、蜥蜴、蛇、龟等动物放入大小适宜的标本缸或厚塑料袋内,用脱脂棉浸透乙醚或氯仿放入其中,盖严缸盖或封紧袋口,使动物麻醉。待致死后,立即进行整形,按它们生活的姿态,用大头针固定在蜡盘上。体形大的标本应事先在体内注射10%的福尔马林溶液。
(2)固定保存:与鱼类标本的固定保存方法相同。个体中等或较小的标本应头朝上绑于玻璃板上,再
放入瓶中保存,使外形结构更易观察且展示性更强。
3.解剖标本的浸制制作:解剖标本的制作目的是观察内脏,应按解剖的一般方法除去体壁,以露出内脏。如要展示某一器官系统时,还须小心地除去不需要的部分,展示部分的各器官仍保持其自然位置,然后浸泡于10%福尔马林液中。如为标明各器官名称,可用打印好的名词签(或用铅笔书写),用水胶贴在
各器官上,待粘牢晾干后,浸入保存液中即可。
(三)浸制标本长期保存时应注意的问题
1.某些新制作的浸制标本,经过一段时间,溶液会变黄或混浊,是动物体内的浸出物所造成。标本在浸泡1~3个月后,根据情况更换固定液2~3次,直到浸液不再发黄为止。
2.瓶口应密封,以防药液挥发。当标本不能全部淹没在保存液中时,应及时添加药液,否则露出部分
会变干、变形,甚至发霉变质。
3.要注意浸制液的浓度。当打开标本瓶,可嗅到较强烈的气味时,表明浓度恰当,若无任何气味时,
则表示浸制液的浓度不够,须立即更换。

本文发布于:2024-09-21 03:25:07,感谢您对本站的认可!

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