摘要：细胞受损后，由于细胞区隔作用被破坏，毒性酚类或其氧化物醌类物质毒害细胞，导致组织褐变，植物组织培养过程中培养低效或失败。目前认为组织培养中褐变程度主要受外植体材料的基因型、生理状态、种类、大小、预处理、培养条件、培养基及培养方式的影响。在目前的研究中控制褐变的有效方法主要有低温培养、暗培养、勤转种、添加抗氧化剂、增效剂或吸附剂于培养基中等。 关键词:植物;组织培养;褐变;防治方法
褐变是植物组织培养中一种普遍存在的现象，是由于组织中多酚氧化酶被激活，使细胞酚类物质被氧化而产生棕褐醌类物质，这种褐变现象又被称为酚污染。多酚类物质及其氧化物醌类物质会抑制其它酶的活性，从而毒害整个外植体，严重影响外植体的脱分化、再分化和生长。褐变这种现象与菌类污染和过度含水化(即玻璃化)并称植物组织培养的3大难题。目前褐变已成为植物组织培养开展的一大障碍[1]。
1褐变现象的原因
1.1 非酶促褐变
非酶促褐变是由于细胞受胁迫或其他不利条件影响所造成的细胞程序化死亡或自然发生的细胞死亡，即坏死形成的褐变现象，并不涉及酚类物质的产生。诸多不利条件都可以造成细胞的程序化死亡，但这种褐变假设采取适当措施或者愈伤组织适应了胁迫环境就不再发生。
1.2 酶促褐变
多数认为，植物组织培养中的褐化现象主要是由酶促褐变引起的，即由多酚氧化酶( PPO，Polyphenol Oxidase)作用于天然底物酚类物质而引起的。在正常条件下,细胞中的酚和醌之间保持一种动态平衡,醌类物质水平较低;而酚氧化酶及其底物分布在正常组织的不同部位，酚类物质分布在细胞的液泡，酶那么分布在各种质体或细胞质，这种区域性分布致使底物与酶被质膜分隔开来；但当外植体或培养材料处于机械损伤等逆境，或细胞受伤或衰老时，细胞膜构造或细胞 中物质区域化分布的破坏会导致酚氧化酶释放或合成，如果
法律法规查询系统此时在适宜的pH和温度等条件下，酚氧化酶、酚类(底物)和氧发生酶促氧化反响，形成有毒的棕褐醌类物质,从而使组织发生褐变。此外，组织的老化或病变也可激活酚氧化酶而引起褐变。
一般认为,褐化是指外植体或培养材料接种后在组织培养过程中， 由于切割造成机械损伤,伤口处分泌出酚类化合物，在有氧的条件下，切面细胞中的酚类物质为多酚氧化酶催化,氧化为醌,醌再通过非酶促反响产生有物质而导致组织褐变,变成棕褐或暗褐,并逐渐扩散到培养基中,抑制细胞其它酶的活性,影响细胞的正常代,毒害整个组织,甚至导致组织死亡。尤其是木本植物组织的外植体褐变死亡是其培养难度较大的主要因素。因此,探讨褐化发生的机制及其影响因素,采取有效的防止褐化的措施,是保证植物组织培养成功 的关键所在。
2影响褐变的因素
2.1基因型
不同种植物、同种植物的不同类型或品种，在组织培养中发生褐变的频率和程度都存在差
异。这是由于各种植物表达的多酚类物质种类、含量以及酚氧化酶的种类、活性存在差异，有些植物种类组织培养较易成功，有些那么很困难。一般木本植物的酚类化合物含量比草本植物高，因而在组培过程中更容易发生褐变。例如在一样的培养基上诱导培养，孝顺竹比小佛肚竹和风尾竹更易褐变[2]拐角。
2.2外植体生理状态
迪克静脉材料本身的生理状态不同，接种后褐变的程度也不同。通常分生部位接种后形成醌类物质少而分化的局部形成醌类物质较多，褐变随着材料的组织木质化程度和年龄而增加。 植物体酚类化合物的含量受到取材时间的影响。例如，柿的嫩芽茎尖的多酚氧化酶活性显著高于休眠芽，以嫩枝茎尖为外植体进展培养时易褐变死亡[3]。同年6月份所取的核桃半木质化新植茎芽萌发率高于冬季休眠芽和4月份嫩枝茎芽腋芽，且褐变率及褐变死亡率都较后两者低[4]。
2.3外植体的种类和大小
一般认为，木本植物较草本植物的外植体在培养过程中更容易发生褐变。外植体小的材料，
由于切口所占比例较大而较易发生褐变。切口越大，酚类物质被氧化的面积就越大， 褐变程度越严重[5]。
2.4材料的预处理
材料在接种前经过一定预处理可减轻外植体在培养中的褐变。预处理一般有低温或黑暗条件下预培养；外植体在水或抗氧化剂中切割或浸泡，以减少外植体与氧的接触和使水溶性多酚和醌类物质充分的渗出外植体。例如竹在培养时外植体在无菌水或半胱氨酸(100mg/L) 溶液中浸泡 2～4 h有利于控制褐变[6]；魔芋培养过程中，在1%的柠檬酸溶液中切割外植体，可有效抑制外植体褐变；黑暗预处理能减轻蝴蝶兰R4品种叶片外植体的褐变程度，其中以预处理10d的褐变最轻;未经暗处理的褐变最重且多酚氧化酶(PPO)活性最大[7]。
2.5培养条件
培养过程中,低温比高温有利于抑制褐变，高温会促进酚类氧化;而低温抑制酚类合成， 降低多酚氧化酶的活性,减少酚类氧化。暗培养或弱光培养对抑制褐变也有一定的作用。例如小佛肚竹在暗培养和弱光(800Lx)下培养的茎尖和茎段的褐变率比在强光(200Lx)下培养有
所下降。
2.6培养基及培养方式
培养基中过高的糖、丝氨酸浓度会加剧褐变[8]。在一样浓度下，蔗糖对褐变的抑制效果要优于葡萄糖。矿质元素也对褐变存在影响，在蝴蝶兰初代过程中，培养基中Fe3+、Cu2+消音材料,浓度越高，褐变越严重。这是由于Fe3+、Cu2+可作为催化剂加速多酚与活性氧(ROS)作用而被氧化为醌类物质。棉花胚性愈伤组织培养基中，氮源配比不适宜也会引起褐变。曼地亚红豆杉愈伤组织诱导及继代过程中，培养基pH值的变化可引起酚类与酚氧化酶结合部位的改变， 从而影响酚类的氧化程度。而细胞分裂素类激素能促进酚类化合物的合成或刺激多分氧化酶活性提高,加速褐变。例如，随着6-BA使用浓度增加，可增加牡丹培养中腋芽外植体的褐变和死亡数。在培养基中参加抗氧化物质可有效降低褐变，例如在对杉愈伤组织培养基中参加抗坏血酸250mg/L，亚硫酸钠250mg/L，柠檬酸5000mg/L组合能有效降低褐变;茶条槭带芽茎段进展芽增殖培养的培养基中参加1/2该组合也能有效降低污染和控制褐变。在蝴蝶兰无菌苗培养基中添加200mg/L谷胱甘肽对分化生长和减少褐变综合效果好;Vc和硫代硫酸钠对褐变抑制作用强,同时也抑制外植体生长分化;活性炭抑制褐变效果好,但抑
制分化。
不同的培养方式引起褐变的程度不同，提高愈伤组织和培养基接触面的氧气供应有利于抑制褐变，减少多酚分泌型外植体材料四周的多酚类物质也有利于减少褐变。有利抑制褐变的培养方式，对不同植物是不同的。例如曼地亚红豆杉以珍珠岩基质上覆盖滤纸条培养效果最好；而核桃采用液态培养基可减轻外植体的褐变。在蝴蝶兰培养中 10～15d转瓶,更换新鲜培养基,褐变的比率可明显降低。在桑树培养中,当转种周期为15d时褐变率为10%，转种周期为30d褐变率为66%[9]。
3防止褐变的措施
3.1选择适宜的外植体和培养条件
成功的经历说明，选择适当的外植体并建立最正确的培养条件是克制材料褐变的最主要手段[10]模拟断路器。选择适宜的外植体，材料的年龄、取材部位、材料的大小及外植体受伤害程度等均能对褐变产生影响。外植体材料应有较强的分生能力，在最适宜的细胞脱分化与再分化的条件下，使外植体处于旺盛的生长状态，便可大大减轻褐变。一般情况下，取幼龄树新
萌发嫩枝条的带芽茎段、嫩叶或茎尖作为外植体，也可采用幼胚来培养。另外对于某个种的植物进展培养前，在不影响培样目的的情况下，应筛选褐变低的基因型个体。
在培养条件的许多因子中，较为重要的是适宜的元机盐成分、适宜的蔗糖浓度及激素水平。培养早期的培养基中应含较低浓度的元机盐，降低Fe和Cu浓度或不用这两种离子； 在保证正常培养的需求下使用低浓度细胞分裂素；愈伤组织或细胞培养物为异养型，应使培养物获得充足的氧气，以利于分化和生长。
适宜的温度及在黑暗条件下进展培养也可减轻材料的褐变。易发生褐变的外植体，可先于低温(4～20℃)预培养数小时，也可于黑暗或弱光照下预培养数日后再转入正常培养条件下培养。外植体受伤害程度直接影响褐变，切割时应尽可能减小伤口面积，并缩短切口在空气中的暴露时间。随着pH增高，多酚被氧化的作用增强，因此培养基pH值应控制在6.0以下。
组织培养的一些材料产生水解型多酚，这类外植体在培养过程中会由于多酚类物质分泌到培养基中使培养基的颜加深，并进一步氧化为醌类物质，而多酚类物质及相应的醌类物质会抑制多种酶的活性，从而阻碍外植体对营养物质的主动吸收和转化。对于培养初期多
酚类物质合成分泌的材料可以在液体培养基中预培养一段时间，使酚类物质充分分泌到培养基中，减少外植体和外植体周围的多酚物质。对于培养过程中多酚类物质不断合成的材料在培养中要进展转移外植体到新鲜培养基中，一般转移周期在2周左右。
3.2使用抗氧化剂或增效剂
组织培养时，在培养基中参加抗氧化剂、增效剂培养或预培养，使用抗氧化剂和增效剂对材料进展预处理，可抑制外植体的酶促褐变。目前在培养基中一般单独或组合添加VC、VE、β-胡萝卜素、硫代硫酸钠、巯基乙醇、酒石酸、柠檬酸、亚硫酸盐、植酸、二硫糖醇等。VC和柠檬酸主要在早期起作用，随培养时间延长作用消退，亚硫酸钠在中后期作用较好，但亚硫酸盐对植物具有一定毒害作用，不宜单独添加。也可在有抗氧化剂或增效剂的无菌溶液中切割材料后再接种，这类处理适用于外植体切割后快速氧化的材料。抗氧化物质对外植体的培养会起到一定的副作用，培养基添加浓度不宜过高，一般在200mg/L以下,且多用于初期培养而不宜长期培养。复原性抗氧化剂在使用时应注意保持其复原性，因此一般最好过滤除菌使用，而不与培养基一起高温灭菌。
3.3使用吸附剂
在培养基中参加吸附剂可以抑制褐变。吸附剂有聚乙烯吡略烷酮(PVP)和活性炭(AC) 等，活性炭是吸附性较强的元机吸附剂，但在使用过程中，应尽量使用最小浓度来防止褐变，因为活性炭的吸附作用是无选择性的，活性炭浓度一般在0.1～0.5%之间。PVP是酚类物质的专一吸附剂，其对酚的结合强于酶蛋白的结合，因而可使酶从多酚 一酶复合物中结合出来，从而使酶的抑制消除。但随着 PVP用量的增加，大局部组织培养物之增殖率也随之下降，这可能是由于PVP在吸附培养基中引起褐变的物质之外，还吸附了局部植物激素。PVP浓度一般在0.3%左右流量生成[11]。
3.4其它
3.4.1改变培养基的状态 如采用滤纸桥培养可使外植体溢出的有毒物质很快扩散到液体培养基中，对外植体危害较轻；或采用液体培养、半固体培养、液体培养与固体培养交替进展培养等也能减轻褐变的危害。
3.4.2选择适宜的接种方式 把培养体切面浸入培养基中，减少了褐化发生的外表积，且较大组织切块的创伤面积相对较小，有利于保持转培初期切块浅表层细胞或组织处于原来的生长发育状态，从而减轻了因切面褐变带来的毒害作用。
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