Western Blot protocol
1). 30%丙烯酰胺:
将29g丙烯酰胺和1g N,N’-亚甲双丙烯酰胺溶于总体积为100ml的水中。搅拌器帮助溶解,滤纸过数控剪床滤除杂质,避光保存于4度冰箱。
2). 10% SDS:
称量10g十二烷基硫酸钠,加入80ml超纯水中,加热搅拌溶解,加水至100ml室温保存备用。
、188g甘氨酸、10gSDS、加水至1000ml
4).20×转膜缓冲液:
Tris 29g,Glycine 144g,SDS 2g 加水定容至1000ml
配制1×转膜缓冲液200ml (甲醇 40ml,20×transfer buffer 10ml,H2O 150ml)
5). Tris : (注意温度对tris PH值的影响)
g Tris 溶于80ml超纯水中,加浓盐酸调PH值,定容至100ml。
·
高温灭菌后室温保存。
6).1M Tris :
Tris 溶于80ml 超纯水,加浓盐酸调PH值,定容至100ml。
高温灭菌后室温保存。
7). 10×PBS:
NaCl 80g,KCl BIFEI2g, ,KH2PO4 ,用盐酸调PH至,加水定容至1000ml
8). 1xPBST% Tween 20):
10×PBS 100ml,H2O 900ml, Tween 20 50ul
9).10%(W/V)过硫酸铵:
临时配,过硫酸铵溶于1ml 超纯水,4度冰箱保存3天
10). 丽春红染液储存液%(W/V)丽春红,5%(V/V)乙酸):
,丽春红,冰醋酸2ml,超纯水 38ml
》
11). 封闭液:
5%(W/V)脱脂奶粉溶于1X PBST 中,使用时现配。
12) Stripping buffer (BME 800ul,SDS 2g,脱模剂原料TRIS ,HCl调pH至,加水定容至100ml)
操作mcu解密步骤
1.蛋白制备:10CM细胞平板,90%满度。弃培基,用5ml PBS清洗一遍,加入1 ml PBS用细胞刮将细胞挂下,移入2 ml EP管中,(将平板对光观察, 可以判断细胞刮下的完全度),可以用1ml PBS清洗一遍,将清洗液一并转入2ml EP管中。4000rmp离心1分钟。弃上清,以100ul PBS重悬沉淀,加入100ul 2×loading buffer。将EP管置于金属浴中99℃处理10min(热处理管盖会崩开,在管盖上压一个重物)。置于冰上准备上样,或是-20度保存。按照之前的蛋白定量结果,10cm平板大约能提取450-600ug蛋白。
2.配胶和上样电泳
1).配胶前先将玻璃板、梳子和电泳仪等洗干净,并将玻璃板晾干。
2). 根据所检测蛋白的大小并参照表1选择丙烯酰胺的浓度,再根据表2配方配制分离胶。配制分离胶时要混合均匀并缓慢加入玻璃板里,注意分离胶与加样孔底间要留出1cm左右积层胶,用异丙醇封胶面。 提拉下水
表1
】 丙烯酰胺浓度(%) | 线性分离范围(kD) |
15 | 12-43 |
10 | 16-68 |
| 36-94 |
5 | 57-212 |
| |
^
表2 (一块胶的用量)
| 分离胶 | 积层胶 |
| 8% | ] 10% | 12% | 15% | 5% |
ddH2O | | | | | |
30% PAGE | | | | | | |
| ( tris ) | (1 M tris ) |
10%SDS | " | |
10% AP | | |
TEMED | | |
总体积 | 5ml | 2ml |
| | | | | |
!
待分离胶凝后(约需15-30min,根据室内温度),倒掉ddH2O后,用滤纸条吸干水分。参照表2配制积层胶,到积层胶时尽量倒满(如果有些漏要及时补胶),插梳子前保证梳子的清洁。拔梳前,需要用刀片沿梳和玻板间隙划一次以除去玻璃板外的胶。待积层胶凝固后拔掉梳子,这时,若发现有上样孔歪斜,可以用注射器针头将上样孔调整好,之后将胶版装上电泳槽后,加上电泳缓冲液后待用,清洗时避免槽间隔异位。
3). 样品上样:蛋白样品临上样前,13000rpm、1分钟高速离心,上样时取上清。80V电压跑浓缩胶,120V跑分离胶。参考marker条带,到相应位置时停止电泳。 上样品左右两边如果有空余泳道,可加等体积的1×上样缓冲液,这样跑出来的胶好看。
2.转膜(半干转,整个连供系统操作中戴手套,不要用手触膜)
①在电泳过程中,剪好与分离胶等大的滤纸10张和PVDF膜1张(国产电泳仪分离胶大小约为×);配transfer buffer (20 ml 5×transfer buffer,20ml甲醇,加水至100ml);先在容器中加入适量甲醇,放入PVDF膜(可切角帮助标记正反面),浸泡30s-1min后转移到转膜液中待用。然后将PVDF膜和滤纸每五张一起叠放整齐并在transfer buffer中浸透(保证中间无气泡)。