DPPH•和ABTS+•自由基清除实验(含PTIO•自由基清除实验):详细说明与疑难解答 李熙灿(广州中医药大学中药学院, 2019.7)
(以下内容系来源于实验经验及三个参考文献[1]Li, X., Comparative Study of 1,1-Diphenyl-2-picryl-hydrazyl Radical (DPPH•) Scavenging Capacity of the Antioxidant Xanthones Family. Chemistryselect, 2018. 3,13081-13086. [2]Li, X.; Ouyang, X.; Cai, R.; Chen, D. 3’,8”-Dimerization Enhances the Antioxidant Capacity of Flavonoids: Evidence from Acacetin and Isoginkgetin. 2019, Molecules. 24, 2039. [3]Li, X.C., 2-Phenyl-4,4,5,5-tetramethylimidazoline-1-oxyl 3-Oxide (PTIO•) Radical Scavenging: A New and Simple Antioxidant Assay In Vitro. J. Agric. Food Chem., 2017. 65,6288-6297
【概述】DPPH•、ABTS+•、PTIO•自由基三者,都是常用的自由基。概述如下表:
| DPPH•自由基 | ABTS+•自由基 | PTIO•自由基 |
结构式 | | | |
简单表达式 | DPPH· | ABTS·+ | PTIO· |
分子式与分子量 | C18H12N5O6; M.W. 394.3 | C18H24N6O6S; M.W. 548.68 | C13H17N2O2; M.W. 233.3 |
带电情况 | 中性自由基 | 阳离子自由基 | 中性自由基 |
种类 | 氮自由基 (成单电子在N原子上) | 氮自由基 (成单电子在N原子上) | 氧自由基 (成单电子在O原子上) |
外观 | 紫黑粉末 | 没有纯的ABTS·+ | 紫褐粉末 |
| 溶于有机溶剂(如甲醇、乙醇) 溶液呈紫,浓度越高,颜越深 | 溶于有机溶剂(如甲醇、乙醇)、水以及水性的缓冲液 溶液呈墨绿,浓度越高,颜越深 | 溶于水以及水性的缓冲液 溶液呈蓝紫,浓度越高,颜越深 |
CAS号 | 1898-66-4 | 无 | 18390-00-6 |
工作液配制方法 | 将已购的DPPH自由基粉末,溶解即得其工作液 | 将已购的ABTS二铵盐[(NH4)2ABTS]与过二硫酸钾(K2S2O8)黑暗中反应12小时后,再稀释得其工作液。 | 将已购的PTIO 自由基粉末,溶解即得其工作液 |
工作液外观 | 紫 | 墨绿 | 蓝紫 |
工作液紫外光谱与最大吸收 | (50 μg/mL) | (0.07mM (NH4)2ABTS+0.03mM K2S2O8) | (50 μg/mL) |
检测波长 | 519 nm | 734nm | 557nm(水溶液) |
检测原理 | 当A519 nm值减少,表明DPPH·被清除。其清除机制主要是氢转移HAT (hydrogen atom transfer) | 当A734nm值减少,表明ABTS·+被清除。其清除机制主要是电子转移ET (electron transfer) | 当A557减少,表明ABTS·+被清除。 其清除机制主要是电子移ET (electron transfer)加质子转移PT (proton transfer) |
用途 | 主要用于测试一个纯的化合物或者提取物,是否具有抗氧化活性或者活性的强弱。 | 主要用于测试一个纯的化合物或者提取物,是否具有抗氧化活性或者活性的强弱。 | 主要用于测试一个纯的化合物或者提取物,是否具有抗氧化活性或者活性的强弱。 通过调节缓冲液的pH值,可以检测其抗氧化机制。 | 水溶性抗氧化剂
优势 | 清除速度较快,约30分钟(室温下)。 | 清除速度较快,约6分钟(室温下)。 | (1)水溶性好,与生物相关性强; (2)是氧自由基,能更好地表往ROS清除水平; (3)抗氧化机制明确:pH值小于5.0时,为电子转移ET机制。当调节pH值(如pH=5.0,6.0,7.4)时,其清除能力也随之改变,表明与pH值有关,也就是说与氢离子(质子)浓度有关,据此,可证明其涉及PT机制。 |
局限性 | (1)只能在有机溶剂(如甲醇、乙醇)中进行,不能在水溶液中进行;也不能在缓冲液中进行。 (2)其抗氧化活性,实际上是清除氮自由基的活性(而不是氧自由基)。 (3)虽然DPPH的清除主要是HAT抽制,但是在不同溶剂中,其抗氧化机制是不同的,还可能有ET等。 | (1)不能在缓冲液中进行。当然,可以在有机溶剂(如甲醇、乙醇)和水溶液中进行。 (2)其抗氧化活性,实际上是清除氮自由基的活性(而不是氧自由基)。 (3)配制工作液需要的时间长(约12小时) (4)ABTS·+与(NH4)2ABTS、K2S2O8共存于溶液中,无法单独分离。所以,会导致无法预期的干扰。 | 清除反应速度较慢,约2小时完成。不过,如果出现这种情况,可以适当加热(如37℃、50℃),或延长反应时间。 |
所需仪器 | 可见分光光度计 (常量,检测液约3mL) 酶标仪(微量,检测液约200μL) | 可见分光光度计 (常量,检测液约3mL) 酶标仪(微量,检测液约200μL) | 可见分光光度计 (常量,检测液约3mL) 酶标仪(微量,检测液约200μL) |
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【实验讲解】
1.DPPH•自由基清除实验[1]
1.1 DPPH测试液的配置
取DPPH固体1mg溶于24mL 95乙醇(或无水乙醇、甲醇)中,超声5min,充分振摇,务使上下各部分均匀。最好避光保存,5小时内用完。取1mL上述步骤配置好的DPPH溶液,加0.5mL 95乙醇(或无水乙醇、甲醇)稀释后,使其吸光度为0.6-1.0之间。若吸光度过大,则继续加溶剂;若吸光度过小,则补加DPPH固体或者原始溶液。
样品用合适的溶剂溶解,为便于计算,可配成1mg/mL浓度。溶剂根据样品的极性进行选择,首选甲醇、95乙醇或无水乙醇(尽量与DPPH溶液所用溶剂相同),如不溶可用DMSO。
1.3 预试
取DPPH溶液1.0 mL,加0.5mL相应有机溶剂后,往其中加少量样品液。加样时,先少后多渐加,边加边混合,并观察溶液的褪情况,当溶液颜基本褪去时,记下样品的加样量。如果反应缓慢可在37℃烘箱中放置半个小时。
此加样量即为样品的最大用量,在此最大用量的基础上,往前设置5个用量,使之成等差数列。
【如】在预试过程中,发现加样到500 μL时,DPPH溶液颜基本褪去,则500 μL为该样品液的最大用量。则对于该样品而言,其用量梯度宜设为100 μL、200 μL、300 μL、400 μL、500 μL。
A0值:取DPPH溶液1.0 mL到比皿中,加对应有机溶剂0.5 mL,稀释混合,测A值,此A值为A0(A0须在0.8-1.0之间)。
A值:取(500-x)μL 有机溶剂到比皿中,加样品液 x μL (x是根据1.3预试结果确定样品液的用量),再加DPPH溶液1.0 mL,混合使反应液总体积为1.5 mL。测A值。
【如】某样品的用量梯度为100 μL、200 μL、 300 μL 、400 μL、500 μL,则加样如下:
样品液 | 95乙醇(或无水乙醇) | DPPH测试液 | 总体积 |
0μL 100μL | 500 μL 400 μL | 1.0 mL 1.0 mL | 1.5 mL 1.5 mL |
200μL | 300 μL | 1.0 mL | 1.5 mL |
300μL | 200 μL | 1.0 mL | 1.5 mL |
400μL | 100 μL | 1.0 mL | 1.5 mL |
500μL | 0 μL | 1.0 mL | 1.5 mL |
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1.4 最终测量
每测一个用量需要测三个平行数据。
1.5 DPPH•清除率(抑制率)的计算
(A0为不加样品时的值;A为加入样品后的值。)
1.6 使用注意事项
1.6.1测量前,要先用空白溶剂调零。
1.6.2将溶液注入比皿后应当充分摇匀,使颜均匀分布。
1.6.3每次使用前后要注意比皿的清洁。
1.6.4如果在实验过程中出现A值大于A0的情况,则可能是由于样品本身产生的本底吸收所
致,此时,应该减去本底吸收的A值(A本)。这个A本值可以通过,加样品但不加DPPH的方法测得。此时的计算公式为:
1.7疑难解答
问:DPPH实验测量抗氧化性的原理是什么?
答:DPPH法于1958年被提出,广泛用于定量测定生物试样、分类药物和食品的抗氧化能力。此法是根据DPPH自由基有单电子,在519nm处有一强吸收,其醇溶液呈紫的特性。当有抗氧化剂存在时,DPPH自由基被清除,溶液颜减淡,其褪程度与其被清除程度(即吸光度的改变)成定量关系,因而可用分光光度计或酶标仪进行快速的定量分析。
问:DPPH自由基被清除的机制是什么?
答:DPPH自由基的清除过程主要涉及到氢转移(HAT),简要过程如下(以1,3,5,8-四羟
基氧杂蒽酮为例):
问:实验中的溶剂应该怎么确定?
答:优先选用甲醇、95乙醇或无水乙醇溶解DPPH固体和样品,若样品难溶于水和醇,再考虑DMSO等溶剂。值得注意的是,实验中应该尽量保证样品溶液和DPPH溶液使用相同的溶剂。另两个实验(ABTS+•清除和PTIO•清除)同理。
问:样品的浓度一定要设置成1mg/mL吗?
答:不同样品清除DPPH自由基的活性可能相差很大,为了保证结果的准确,应该尽量使样品的五个浓度点对DPPH•清除率均匀分布在0-100%之间,因此1mg/mL只是一个大概数
值,实验中要根据预试结果进行调整。由于1 mg/mL这个数字方便稀释和计算,因此在这里统一写作1mg/mL。另两个实验(ABTS+•清除和PTIO•清除)同理。
问:测量完成后怎么计算IC50?