Dual-Luciferase® Reporter Assay
试剂准备
Luciferase Assay Buffer II 10ml
Luciferase Assay Substrate 1vial
Stop & Glo® Buffer 10ml
Stop & Glo® Substrate, 50X 200ul
Passive Lysis Buffer (PLB), 5X 30ml
1. 1X PLB: 加1体积的5X Passive Lysis Buffer (PLB)到4体积的dH20中,40C保存(一个月)。
2. LAR II:将Luciferase Assay Substrate重悬于10ml Luciferase Assay Buffer II 中(-200C保存1个月,-700C保存1年)。
3. 1X Stop & Glo 试剂:1体积50X Stop & Glo® Substrate加入49体积的Stop & Glo® Buffer中(-200C保存15天)。(每次试验需要100ul)
2. 1X PBS轻柔的冲洗细胞
3. 加入1X PLB(推荐用量)
4. pgl3细胞溶解
室温条件下,轻摇细胞15min,
采用脂质体介导技术转染。重组质粒分别为p-629/+100,p-401/+100,p-238/+100,p-80/+100,p-25/+100。pGL3- basic为阴性对照;同时以转染phRL-tk(海肾荧光素酶)作内对照。具体转染方法参照转染(Polifectamine Reaent)说明书进行。 1. 将质粒DNA(3.2µg)与phRL-tk (0.8µg)按1:4混合后为A液,混匀30s,PolyFect(QIAGEN)与无血清无抗生素的DMEM按1:50混匀后为B液,混匀30s;
2. A+B混匀(B加入A)15s,室温下孵育5-10 min;
3. 吸出六孔板中的培养液,用无血清无抗生素的DMEM洗3遍,然后加入AB混合液,每孔0.8mL;
4. 6h后,加入2mL完全DMEM;
5. 24h后,倒出旧培养液,换为完全DMEM;
6. 100µg H2O2或B(a)P处理lh或24h;(200 µM MMS,24h-溶解于Me2SO, Sigma);
(H2O2不引起OGG1升高)
7. 采用Promega公司的双报告基因检测试剂盒检测荧光素酶活性,检测仪器为化学发光仪(30IOC化学发光测定仪),所有实验严格平行操作。 8. 以相对荧光素酶单位(相当于对照组的百分比)表示。结果采用Student-t检验分析各组之间荧光素酶活性的差异。