质粒浓缩：Vml
①Vml 1×TAE防水伸缩缝或水②2V ml③混匀④离心，最大转速10min⑤取上清 ⑥1/10V ml NaAc（pH 5.2） ⑦4Vml 冰醋酸⑧置于-20℃，10min
批量控制器⑨离心，最大转速10~15min
10.弃上清
11.70%酒精洗两次（最大转速），酒精要吸干（离心两次，第一次倒干净，第二次空转吸净）
12.室温晾干
1. 加入 1/10 体积的乙酸钠（3 mol/L ，PH=5.2）于 DNA 溶液中充分混匀，使其 最终浓度为 0.3 mol/L；
2. 加入 2 倍体积用冰预冷的乙醇混合后再次充分混匀置于- 20℃中 15~30 分钟； 3. 12,000 g 离心 10 分钟，小心移出上清液，吸去管壁上所有的液滴；
4. 加入 1/2 离心管容量的 70％乙醇，12000g 离心 2 分钟，小心移出上清液，吸去管壁上所有的液滴； 档案管理方法5. 于室温下将开盖的 EP 管的置于实验桌上以使残留的液体挥发至干；
6. 加适量的 ddH2O 泵头溶解 DNA 沉淀。
浓缩原理：
首先，向酶切体系添加1/10体积浓度为3M的NaAc，混匀后，整个体系的Na+浓度就是0.3M（生理盐水的Na+浓度大约为0.15M）。这么多的Na+均匀地分散到DNA表面，屏蔽掉模具特氟龙DNA链上PO4-的负电荷，有利于DNA链的压缩。否则的话，PO4-彼此排斥，DNA长效连续捕鼠器就不容易聚集。
接着，向整个体系添加2倍体积的无水乙醇。乙醇和水的互溶性很好，加进去后，乙醇
就把DNA表面的水膜夺走。换句话说，水和乙醇混去了，原本溶解在水中的DNA只好被挤了出来。第一步加入的Na+平衡了PO4-的电荷，被挤出来的DNA就轻易堆积在一起了。
经过离心（12,000 rpm × 5 min），被挤出来的DNA就全部被甩到了离心管底部。把上清倒掉，剩下DNA。然而，这时的DNA不纯，还混有酶切体系留下来的盐分，以及变性了的酶。酶变性了，量也不多，不用清除。
向离心管中加入足够量的70%乙醇。这时候，既有足够的乙醇保证DNA不溶于水，又有足够的水把盐份从DNA沉淀里溶解出来。你可以选择短暂离心，或者静置1分钟，来溶解盐分。然后，去干净上清，这样剩下的DNA就不含多余的盐分等杂质，从而不会影响后续实验。
把沉淀烘干，最后用适量的水（或者TE溶液，tris保持弱碱性；EDTA螯合金属离子，抑制依赖于金属离子的DNAse；这样的DNA溶液质量更高）溶就可以了。
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