实验动物在病原微生物中的研究上占有重要地位。利用实验动物可以进行病原菌的分离鉴定、毒力的检测、制备免疫血清等生物制品；进行各种皮肤试验；建立人工感染的动物模型；进行发病机制、疾病防治以及免疫机制的研究等。 一、实验动物的管理
1．实验室常用的动物：家兔、豚鼠、小白鼠、大白鼠、地鼠、绵羊、鸡等，根据实验的目的选择最适宜的动物。
2．实验动物必须与正常动物分开饲养，动物室内要经常保持清洁和空气畅通，并应有防蚊、防蝇、防逃跑及保暖设备。
3．实验动物要精心饲养，喂以适当的饲料并给以充足的水，任何动物也不要断水。
4．实验动物要有详细的记录，包括性别、体重、体表特征(如毛等)、接种材料、接种日期、接种途径、剂量、次数以及接种变化等。
5．实验动物应做好标记，对较大动物如家兔、豚鼠等可用金属号码牌固定于耳朵上，对较小动物如大白鼠、小白鼠等可用复红(或等染料)涂于身体的不同部位，以资识别。盛装动物的笼具等，也应付以标签。
6．接种后的动物应每天观察1～2次，注意动物的精神状态，活动能力、饮食和大小便情况，体温、注射部位的反应以及全身反应，如不安、耸毛、震颤、弓背、麻痹及死亡等，并应详细记录之。
7．感染动物死亡后，应立即剖检或暂时冻存。动物的排泄物及使用的笼具等必须严格消毒。任何用过的动物，不宜再做其他试验。
二、实验动物的选择
pvc面膜 选择实验动物应注意以下几点：
1．易感性：是选择实验动物的首要条件。
2．动物健康：体质健康、发育正常、体重适宜；最好使用自己繁殖的动物，由市场购买的
动物至少经过一周的隔离观察，证明无隐性感染方可使用；某些特殊实验应需选用专门喂养繁殖的无菌动物；实验动物应容易获得，便于喂养和管理。
3．动物大小：同一实验应选用大小一致的动物，通常以年龄或体重为标准。
4．性别：某些实验最好选用同一性别，特别是免疫的动物和需要观察较长时间的实验动物。
5．动物品系：某些实验要求使用纯系动物，纯系小鼠用于免疫学、杂交瘤及病毒感染等研究。
三、小白鼠腹腔接种
[目的要求]
l．掌握小白鼠腹腔接种的实验方法。
2．了解动物接种在微生物分离和鉴定中的作用。
3．了解其他的动物接种方法，如动物皮下、皮内、肌肉、家兔耳静脉注射等接种方法。
4．了解实验动物的处死和尸检的方法。
[原理]
在临床微生物实验室中，动物接种主要用于分离和鉴定病原微生物。通过在易感和不易感动物体内传代，微生物的各种性质都可能发生变化。常用的实验动物包括大鼠、小鼠、豚鼠、家兔及绵羊等。常见的接种部位包括皮内、皮下、肌肉、静脉、腹腔及脑内等部位。本实验主要进行小鼠的腹腔内接种。
[器材和动物]
1．菌液肺炎链球菌培养液。
2．器具鼠笼、无菌注射器、棉球煮针锅、剪刀、解剖台、大头针、纸张。
3．试剂碘酒、酒精、3％来苏儿、凡士林。
4．动物小白鼠。
[步骤和方法]
１.接种方法：
（１）用无菌注射器以无菌操作方式吸取肺炎链球菌培养液，吸取量稍多于使用量，排除气泡(将注射器针头朝上，使气泡上升，在针头上裹以消毒棉球，然后轻轻推出，须避免菌液四溅，特别注意防止眼结膜感染)。
（２）用右手轻拖小白鼠尾，使其爬行于粗糙物面上，再用左手拇指和示指抓紧小白鼠两耳及颈项皮肤，鼠体被固定在左手手指与掌间，用左手无名指和小指夹住鼠尾，用碘酒消毒腹壁皮肤。
（３）左手倾斜，使小鼠头部稍向下，将预先准备好的菌液注入腹腔内，注射时右手持已吸有菌液的注射器，针尖自小白鼠左侧腹股沟处刺穿皮肤，使针尖(针头宜小，常用5号针头)在皮下组织内向前移动1cm左右，然后再轻轻向下刺进腹腔。抽吸注射器，如无回血或尿液，表示针头未刺人肝、膀胱等脏器，即可进行注射，注入菌液0.2ml后将针头退出，用酒精棉球轻擦针刺处消毒。
（４）将接种小鼠用的肺炎链球菌菌液作一张细菌涂片，以备与以后的实验结果比较。
（５）将注射后的小白鼠做好标记(以染液涂于鼠的头部或背部)，置于鼠笼中，填写实验动物记录卡或标签，包括实验动物的名称、编号、注射材料及部位、剂量和注射日期等，然后将卡片挂在动物容器上。
２.结果观察方法：
（１）感染动物须隔离喂养，并逐日观察，注意有无发病症状，如食欲不振、竖毛、不活泼等现象，加以记录，必要时定期测量体重及体温。若有致死可能，务必在动物濒死前及时杀死并作解剖，进行病原学和病理学检查。
远程教学系统>草莓托（２）小白鼠在濒死前或死亡后立即进行解剖，若尚未死亡可用人工处死，如拉其头及尾部，使其颈椎脱臼，即刻死亡。二氧化碳减压器
（３）将小白鼠胸腹部朝上，四肢用大头针固定于铺有纸张的解剖板上，用碘酒消毒整个胸腹部及四肢，左手用镊子提起耻骨部皮肤，右手持剪刀在其上剪开，然后由小口中将剪刀头部伸入，将皮肤分离，并沿正中线自耻骨到下腭处将皮肤剪开，四肢处皮肤亦用剪刀分离后剪开(注意不能将肌肉层剪破)，将皮肤向两侧剥离，露出整个胸腹部，观察皮下组织及淋巴结有无水肿、出血和肿大等病变。
(4)另换无菌镊剪，左手持镊子先将腹壁提起，依照剪开皮肤的方法，右手持剪将腹壁自耻骨到横膈，横膈向两侧，耻骨至两腿处剪开(注意勿剪破肠)。然后将腹壁翻向两侧观察腹腔。如有渗出液则用接种环取渗出液接种于适当的培养基，并作涂片和染镜检。同时亦可剪取脾或肝脏，取切面作压迹涂片，如欲做组织切片检查时，可将脏器剪下浸入10％甲醛液内固定。
(5)再换一套无菌镊剪，将两侧肋骨沿锁骨中线切开，用镊子夹住胸骨下缘，将横膈肋骨缘剪断，将剪断的胸骨向上翻起暴露出胸腔，观察心肺有无病变及胸腔有无渗出液。用无菌镊子将心脏固定，剪开心包膜，烧灼心室表面，以无菌注射器插入心脏内取心血数滴，置血平板上进行划线分离培养(或把心脏剪成两半，将切面在平板面压印后，再行划线分离)。将血平板放入37 ℃培养箱培养24h，亦可将心脏剪开做压迹涂片。
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(6)将腹腔渗出液或脏器压迹涂片用革兰染和荚膜染法染镜检。女性站立式小便器
(7)7)动物尸体解剖完毕后，用垫在尸体下面的纸张将尸体包裹，集中后放焚烧炉中焚化。所用的剪刀、镊子、注射器等均应煮沸消毒，实验台用3％来苏儿消毒擦洗干净。
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