1 范围
本标准规定了猪瘟（CSF）临床诊断、病理学诊断及实验室诊断方法的技术要求。实验室诊断方法主要包括：兔体交互免疫试验、免疫酶染试验、病毒分离与鉴定试验、直接免疫荧光抗体试验、荧光抗体病毒中和试验、猪瘟单抗酶联免疫吸附试验和反转录聚合酶链式反应等诊断技术。 本标准适用于猪瘟的诊断。兔体交互免疫试验，免疫酶染试验，直接免疫荧光抗体试验，反转录聚合酶链式反应和病毒分离与鉴定试验等五种方法主要用于猪瘟病毒和抗原的诊断，以发现带毒猪和自然感染猪；猪瘟单抗酶联免疫吸附试验和荧光抗体病毒中和试验主要用于猪瘟抗体的监测和免疫效果评估，其中，单抗酶联免疫吸附试验主要用于猪瘟抗体的鉴别诊断，可区别诊断猪瘟自然感染猪，免疫猪，强、弱毒抗体阳性猪及猪瘟抗体阴性猪。
2 临床及病理学诊断
2.1 临床及病理学诊断的作用
感染CSF的猪临床症状和解剖后肉眼所见的病理变化，因病毒株致病力、感染时间和宿主等因不同而有很大差异，同时田间还存在着无临床症状的猪瘟病毒持续性感染和多种病原混合感染的现象，因此，猪瘟的临床诊断和病理学诊断只能作为综合诊断定性的依据之一，不能作为确诊的根据，特别是那些隐性感染的带毒猪，一般不表现临床症状及肉眼可见的病理变化，所以，猪瘟的确诊应依赖于对CSF病毒及抗原的实验室诊断，才能形成最终的结论。
2.2 临床诊断
猪中被检猪出现下列临床症状时，可作为综合诊断定性的依椐之一：
a） 体温在40.5℃以上或间歇性的发热；
b） 精神萎靡、倦怠，畏寒，食欲不振、厌食、甚至废食，呕吐，步态不稳；
c） 交替便秘与腹泻，产生带粘液和血丝的粪球，结膜充血、出血或有不正常分泌物；
d） 鼻盘、嘴唇、耳尖、下颌、四肢、腹下及腹股沟等处出现紫红斑点或斑块；
金属槽筒
e） 公猪包皮积尿或其他疑似CSF的症状；
f） 怀孕母猪有流产、死胎、木乃伊等现象或所产仔猪有衰弱、震颤、痉挛、发育不良等现象。
出现上述症状时，猪作为可疑CSF对待，应全隔离饲养，并作进一步诊断。
2.3 病理学诊断
对临床检出的可疑患猪可抽样进行病理学诊断，下述肉眼可见的病变可作为综合诊断的依据之一：
a） 肾皮质泽变淡，有不同大小的点状出血；不锈钢钝化
b） 淋巴结外观充血、切面周边出血，呈红白相间的“大理石样”；
c） 脾脏不肿大，表面有点状出血或边缘出现突起的楔状梗死区；
d） 心脏、喉头、大肠、小肠、胆囊及膀胱有点状出血；
e） 全身出血性变化、多呈片状或点状；
f） 回盲瓣、回肠、结肠形成“钮扣状”溃疡（慢性猪瘟）。
3 病原学诊断
3.1 兔体交互免疫试验
3.1.1 样品处理
将病猪的淋巴结、牌脏和肾磨碎后用无热原性的生理盐水作1∶10稀释。
3.1.2 接种家兔
将上述处理的样品肌肉注射三只健康家兔，每只5mL，另设三只不注射病料而仅注射生理盐水的对照兔，24h后，每隔6h测体温一次，连续测温5d。
3.1.3 接种兔毒
接种样品5d后对所有家兔注射用无热原性的生理盐水稀释成1mL含有100个兔体最小感染
量的猪瘟兔化弱毒（淋巴／脾脏毒），每只1ml，同时增设两只仅注射猪瘟兔化弱毒的对照兔。24h后，每隔6h测体温一次，连续测96h，注射生理盐水和仅注射猪瘟兔化弱毒的两组对照兔分别2/3和2/2出现定型热或轻型热，试验成立。
3.1.4 判定标准
猪瘟强毒不引起家兔体温反应，但能使其产生免疫力，从而能抵抗猪瘟兔化弱毒的攻击。因此，可以利用猪瘟兔化弱毒攻击后是否出现体温反应作指标，以判定第一次接种的病料中是否含有猪瘟病毒。试验组的试验结果判定见表1。
表1 兔体交互免疫试验结果判定
轮椅电机接种病料后体温反应 | 接种猪瘟兔化弱毒后提问体温反应 | 判定结果 |
－ | 可移动存储设备－ | 含猪瘟强毒、野毒 |
氨分解制氢－ | ＋ | 不含猪瘟任何病毒 |
＋ | － | 含猪瘟兔化弱毒 |
＋ | ＋ | 含非猪瘟病毒热原性物质 |
对照兔 | ＋ | 含猪瘟兔化弱毒 |
注：“＋”表示多于或等于三分之二的动物有体温反应，“－”为无体温反应。 |
| | |
3.2 免疫酶染试验
3.2.1 样品的采集
解剖检查时采病猪扁桃体、脾、肾、淋巴结作压印片或冰冻切片，同时设正常组织对照标本，标本自然干燥后，在2%戊二醛和甲醛等量混合液中固定10min，干燥后，置冰箱内待检。
3.2.2 操作程序
3.2.2.1 抽风式笔记本散热器将标本浸入0.01%过氧化氢或0.01%叠氮钠的Tris-HCl缓冲液中，室温下作用30min。
3.2.2.2 用pH7.4的0.02mol/L磷酸缓冲盐水漂洗5次，每次3min，风干。
3.2.2.3 将标本置于湿盒内，滴加1∶10酶标记抗体，覆盖标本面上，置37℃作用45min。
2.2.2.4 用pH7.4的0.02mol/L磷酸缓冲盐水-1%吐温缓冲液漂洗5次，每次2min～3mim。
2.2.2.5 将标本放入DAB（4-二甲氨基偶氣苯）Tis-HCl液内，置37℃作用3min。
3.2.2.6 用pH7.4的0.02mol/L磷酸缓冲盐水冲洗5次，每次2min～3min，再用无水酒精、二甲苯脱水，封片检查。
3.2.2.7 用普通生物显微镜检查判定结果，如细胞浆染成深褐为阳性；黄或无为阴性，正常对照标本应为阴性。猪瘟兔化弱毒接种的猪组织细胞浆呈微褐，与强毒株感染有明显区别。
3.3 病毒分离与鉴定试验
3.3.1 将2g扁桃体或脾脏或肾脏剪成小块，加上灭菌砂在乳钵中研成匀浆，用Hank’s液或MEM配成20%悬液，加青霉素（使最终浓度为500U/mL）和链霉素（使最终浓度为500μg/mL），室温下放置1h，以3000r/min离心15min取用上清液。
3.3.2 将PK15单层细胞用胰酶消化分散后，以800r/min离心10min，用不含牛病毒性腹泻病毒（BVDV）的5%胎牛血清的MEM配成每毫升含2X106个细胞的悬液。
3.3.3 九份细胞悬液（3.3.2）加一份病料悬液（3.3.1）接种于带有细胞飞片的转瓶或微量细胞培养板。另设不加病料的对照若干瓶（孔），于接种后1d、2d、3d，分别从两个接种
瓶（孔）和一个对照瓶（孔）中取出细胞片用Hank’s液或MEM洗涤两次，每次5min，用冷无水丙酮固定10min。
3.3.4 按3.2或3.4.5～3.4.7进行免疫酶染或荧光抗体染、镜检并判定结果。
3.4 直接免疫荧光抗体试验
3.4.1 采样
体检疫中，待检可疑猪不少于三例，其中至少两例为早期患猪，活体取扁桃体或剖杀后摘取扁桃体。后期病猪剖杀后采扁桃体、淋巴结、脾脏和肾胜。个体检疫时，可活体取扁桃体或剖杀可疑猪采扁桃体、淋巴结、脾脏。所采组织样品应新鲜且为猪瘟疫苗免疫21d之后。
3.4.2 送检
采样后应尽快冷藏送检，如当日不能送出，应冻结保存，避免组织腐败、自溶，影响结果。
3.4.3制片
将样品组织块修切出1cm×1cm的小块。不经任何同定处理，直接冻贴于冰冻切片机的冰冻切片托上（组织块太小时，如活体采取的扁桃体，可用冰冻切片机专用的包埋剂或化学浆糊包埋），进行切片，切片厚度要求5μm～7μm。将切片展贴于0.8mm～1.0mm厚的洁净载玻片上，也可将样片组织直接作压片或涂片，同时设正常对照片。
3.4.4 固定
将切片、压印片或涂片置无水丙酮中固定15min。取出立即放入0.01mol/L，pH7.2的磷酸缓冲盐水中，轻轻漂洗3次。取出，自然干燥后，尽快进行荧光抗体染。
3.4.5 荧光抗体染
将猪瘟荧光抗体滴加于样品表面，放置湿盒内于37℃作用30min。取出后浸入磷酸缓冲盐水中充分漂洗，再用带有0.5mol/L，pH9.0～pH9.3碳酸盐缓冲甘油的盖玻片（0.17mm厚）封固样品片表面。染后应尽快镜检，4℃保存不应超过72h。必要时可低温保存待检，但也不应超过一周。
3.4.6 镜检
将染、封固后的样品片置于激发光为蓝紫光或紫外光的荧光显微镜下观察。
3.4.7 判定标准
于荧光显微镜视野中，见扁桃体隐窝上皮细胞或肾曲小管上皮细胞浆内呈现明亮的黄绿荧光，或脾、淋巴结胞浆内有黄绿荧光判为猪瘟病毒感染阳性。正常对照片细胞内应无黄绿荧光。
3.5 猪瘟病毒反转录聚合酶链式反应（RT-PCR）
3.5.1 材料与样品准备
3.5.1.1 材料准备
本试验所用试剂需用无RNA酶污染的容器分装；各种离心管和带滤芯吸头需无RNA酶污染；剪刀、镊子和研钵器应经干烤灭菌。
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