植物快速繁殖就是应用组织培养技术，快速繁殖名优特新品种，使其在较短时间内繁衍较多的植株；快速繁衍珍稀濒危植物，使物种得以保存。快速繁殖是当前植物细胞工程中应用最广泛，又最有效的方法之一。 除了一部分豆类作物外，种子是不会传递病毒的。植物病毒是通过无性繁殖传递的，而快速繁殖是建立在无性繁殖的基础上，病毒在母体内逐代积累，危害越来越严重。目前在生产上尚无特效药物可彻底除去病毒，而快速繁殖却可以，因此，快速繁殖脱毒显得非常重要。 一、植物快速繁殖的途径和方法
以植物的根、茎、叶柄和花等片段以及孢子作为外植体，或者切取茎尖、腋芽进行离体培养，可以直接诱导器官分化，产生芽、根，也可以诱导改变原有的分化状态，脱分化形成愈伤组织，再经过不同的细胞分化途径重建形成不同的器官，直到完整植株。(P86 L.1~L.16)
植物快速繁殖的类型与方式可归纳如下表：
类型 | 方 式 | 特 点 | 事 例 |
器官型 | 腋芽萌发，以芽增殖芽，扩大繁殖系数 | 繁殖系数高，一转性较稳定，是快速繁殖的主要方式 | 甘蔗、香蕉、香石竹、丝石竹等 |
器官发生型 | 通过脱分化形成愈伤组织，再分化出苗 | 可获得与母株相同的小植株，繁殖系数较低，可用于细胞分化的研究 | 烟草、油菜等 |
胚状体发生型 | 从愈伤组织或直接从子叶、下胚轴和花药培养中产生 | 首先证明植物细胞的全能性，繁殖系数高 | 甘蔗、胡萝卜、石刁柏等 |
原球茎型 | 由茎尖或腋芽产生原球茎放入培养基中发育成小植株 | 遗传性较稳定，原球茎可作为繁殖系母体 | 超微电极兰花 |
球茎芽型 | 叶柄表面产生圆球形小突起——球茎芽，一端出芽一端出根 | 遗传性较稳定，球茎芽可直接放入土中种植 | 观叶海棠 |
块茎型 | 叶片或叶柄上形成粒状芋块，进一步分化出芽和根 | 块茎芽可为繁殖系母体，不断切割繁殖移栽，成活率高 | 花叶芋 |
鳞茎型 | 鳞片近轴面或边缘直接形成带根的小鳞茎 | 在试管内形成小鳞茎需较长时间 | 百合、郁金香、贝母等 |
孢子型 | 用成熟或未成熟的孢子进行培养 | 孢子繁殖最困难的是表面消毒，萌发时间较长 | 地钱、狼尾蕨等 |
根茎型 | 蕨类具有横向的茎及直立的短根茎，为组织培养的最佳外植体 | 根状茎上产生蕨叶及根，繁殖速度较孢子型快 | 肾蕨、裂叶肾蕨、波士顿蕨等 |
微枝扦插型 | 带芽的小插条在试管内进行无菌扦插电网监测 | 为木本植物进行快速繁殖的主要方式 | 葡萄、杨树 |
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快速繁殖中茎尖培养脱毒
无病毒苗的获得：
（一）材料的培养和灭菌
为了获得无菌的茎尖，应把供试植株种在无菌的盆土中，放在温室栽培。浇水要浇在土中，不要浇在叶片上。如材料取自田间，可切取插条，在实验室内进行溶液培养。由这些插条的腋芽长成的枝条，其污染程度比直接从田间植株取来的枝条少得多。自外，定期喷施内吸杀菌剂（如0.1%多菌灵和0.1%链霉素）也十分有效。
（二）茎类剥离
取幼苗茎尖2~3cm小段，剥去可见的大叶，放在烧杯内用自来水冲洗1h左右，移入无菌室进行严格消毒。先用95%酒精快速浸泡一下，再放入5%的漂白粉溶液内消毒7~10min（也可用市场上出售的次氯酸钠溶液稀释为5%），然后用无菌水冲洗3~4次，在双筒解剖镜下一手用细镊子将茎芽按住，另一手用解剖针仔细地将幼叶剥去，最后露出圆滑的生长点，用注的针头侧刃或自制的解剖针，仔细地切取带有1~2个叶原基的生长点，随即接种
到试管培养基上进行培养。这样外植体（生长锥带1~2个原叶基）的培养，严格来说，应称为分生组织培养。
以上操作必须严格在无菌条件下的超净工作台中进行，所用器具都应浸泡于70%的酒精中，使用前要在究竟灯上烧灼灭菌，注意不使解剖针、刀太烫，以免损伤组织。解剖镜台应垫载玻片，每剥离一个茎尖应以酒精棉团擦拭，手也应经常用70%酒精擦试。茎尖很幼嫩，暴露时间越短约好。因为超净台的气流和酒精灯发出的热都会使茎尖迅速变干。
（三）茎尖培养
目前常使用的的基本培养基是MS培养基或White培养基，它有较高浓度的无机盐，对促进组织分化和愈伤组织生长是有利的。在培养基中可酌情添加5%~10%椰乳，0.1~1.0mg/L的吲哚乙酸、萘乙酸、苄基腺嘌呤等，有的还需添加活性炭。根据培养种类不同，添加的生长调节剂可适当调整。（P92~P93 L.11）
茎尖培养的生长可能有4种类型： ① 组织不增大，不久变褐死亡，这可能是生长点受伤所致。 ② 组织渐变绿，但体积增大缓慢，可把组织转到NAA浓度高于0.05mg/L的培养基
上，并提高温度以加速其生长。 ③ 组织基部不产生或少量产生愈伤组织，而生长点发育正常，一个月内可形成无根的小植株，这是最理想的情况。当长有2~3片西欧啊叶时，应把小植株转到无生长素的培养基上，促进生根。 ④ 茎尖基部产生大量愈伤组织而生长点很少伸长，不理想。这时应把这些愈伤组织转移到无生长素的培养基上，并降低培养温度，以抑制愈伤组织生长促进其分化。（P94~P95 L.2）
（四）提高脱毒效果
感染了病毒的蜘蛛在切取茎尖进行培养之前，进行高温处理、低温处理或化学处理，可以提高脱毒效果。
1. 高温处理又称温热疗法。某些病毒受热以后不稳定，失去活性。根据这个原理，把植物放在高于正常温度的环境中，组织内部的病毒受热后部分或全部钝化，但寄主植物的组织很少或不会受到伤害。
高温处理有两种方法：
（1）汤浸渍处理，适用于切下的材料，在50°C左右的温水中浸渍数分钟至数小时，方法
简便易行但易致材料受伤。
无尘涂装 （2）热风处理，将生长的盆栽植物移入室内或生长箱内，处理温度和时间因植物种类和器官生理状况而异。一般为35~40°C，短则几十分钟，长可达数月。（P95 L.3~L.15）
每一种植物高温处理有他的临界温度，超出这个温度或温度虽在此范围内但处理时间过长，组织就受伤。可以采用变温方法，即每天40°C处理4 h，16~20°C处理20 h，这样，既可保持芽眼的活力，亦可清除芽眼中幼叶的病毒。
2. 低温处理，亦称冷疗法。菊花植株在5°C条件下分别处理4个月或7.5个月，没有菊花矮化病毒（CSV）的无病毒苗分别是67%和73%，而没有菊花褪绿斑驳病毒（CCMV）的无病毒苗分别是22%和49%，未经处理的茎尖则无脱毒效果。
3. 化学处理，又称化学疗法。一些化学药品如嘌呤和嘧啶；类似物、氨基酸、抗生素处理，可在某种程度上抑制植物体内或离体叶片内病毒的合成，但仍不能是病毒失活。近年发现三氮唑核苷（1—β—D—呋喃核糖—1，2，4—三氮唑）用于防治一系列动物DNA和RNA病毒，对植物也有效。将感染了马铃薯Y型病毒（PVY）、黄瓜花叶病（CMV)或烟草
花叶病毒（TMV）的叶柄，培养在三氮唑核苷的MS培养基上，子代植株则除去病毒，而对照则无效，说明三氮唑核苷抑制病毒的增殖。
其他途径脱毒
（一）愈伤组织脱毒
拉画笔 感染病毒的愈伤组织细胞并非全部都含有病毒。例如已经感染TMV的烟草愈伤组织，经机械分离后，发现仅有40%细胞含有病毒。用感染TMV的烟草髓部愈伤组织诱导出的愈伤组织，继代四次后用荧光抗体法检验，几乎不存在病毒。从马铃薯茎尖培养产生植株概率。许多试验也报道，从有病毒的草莓、唐菖蒲、老鹳草、大蒜、火葱、款冬等的愈伤组织中，都分化出无病毒的植株。以上事实，可能因为细胞增殖速度快过病毒复制速度，或者细胞产生变异，获得对病毒感染的抗性，最终表现出脱毒现象。
（二）珠心胚培养脱毒
柑橘类多胚品种中除了一个受精胚以外，尚有多个由珠心细胞形成的无性胚，称为珠心胚。珠心胚与维管束系统无联系，因此由珠心胚产生的植株全部均无病毒。但珠心胚 大多
是不育的，必须分离培养才能发育成正常的幼苗。珠心胚培养技术对除去柑橘主要病毒，如引起银屑病、叶脉突出病、柑橘裂皮病、柑橘速衰病等的病毒，都十分有效。
（三）茎尖微体嫁接脱毒
木本植物茎尖培养难以生根形成植株。为了克服这个困难、可将实生苗砧木培育在培养基上，再从成年无病毒树枝上切取茎尖（0.14~1.0mm），在砧木切断面上进行试管微体嫁接，就可获得无病毒的幼苗。利用这个方法，柑橘类嫁接成活率为30%~50%，移栽成活率约95%，嫁接两年后即可结实。应用这个技术，可获得柑橘类没有银屑病植株、桃树没有洋李环斑病毒、洋李矮缩病毒、褪绿叶斑病毒的无病毒苗。
（四）培育抗病毒栽培种
上述各法可以脱毒，但最有效的方法还是培育抗病毒的栽培种，可以一劳永逸。可采用导入抗病毒的原生质体融合技术，得到抗病毒的杂交种。例如烟草和黄花烟草（N.rustica）原生质体融合，得到的细胞杂交种，对TMV有抗性；马铃薯栽培种与野生种（S.chanocoense）有性杂交产生的后代，可抗PVY的感染。
脱毒苗的鉴定
利用生长点培养无毒苗的成苗率和脱毒率都非常低，有时无毒株只占千分之几。因此，每一茎尖分化产生的植株，在作为母本生产无病毒原种以前，必须进行特定病毒鉴定。由于在培养的植株中许多病毒具有延迟的恢复期，所以在最初18个月中每隔一定时间仍需进行鉴定。只有对待病毒显示持续阴性反应的无病毒植株，才能进一步扩大繁殖。无病毒植株容易再被感染，因此在繁殖的不同时期仍需重复进行鉴定。常用的鉴定法有直接测定法、指示植物法、抗血清鉴定法和电子显微镜检查法等。
（一）直接测定法
无动力除尘 直接观测植株茎叶有无某种病毒引起的可见症状。下表是马铃薯几种主要病毒的病状，供参考。然而寄主植株感染病毒后需要较长的时间才出现症状，有的并不能使寄主植物出现可见的症状，因此需要更敏感的测定方法。
几种马铃薯病毒种类的症状
种 类 | 症 状 | 鉴定寄主 |
马铃薯X病毒，PVX | 脉间花叶 | 千红日、曼陀罗、辣椒、番茄、心叶烟 |
马铃薯S病毒，PVS | 叶脉深陷粗缩 | 苋藜、千日红、光曼陀罗、昆诺阿藜（Chenopodium quinoa） |
马铃薯Y病毒，PVY | 随品种而异，有些轻微花叶或粗缩，敏感品种反应为坏死 | 野生马铃薯、洋酸菜、曼陀罗 |
马铃薯卷叶病毒，PLRV | 初浸染幼叶尖呈浅黄白，有些品种呈紫或红 | 洋酸菜 |
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（二）指示植物法
利用病毒在其植株上出现症状的特征，作为鉴别种类的标准。这种专用以产生症状的寄主即为指示植物，又称鉴别寄主。指示植物分为两种类型：一种早接种后产生的症状可扩张到非接种部位；另一种只在接种部位产生病斑。接种时取待测植物的幼叶，加少量水及等量0.1mol/L磷酸缓冲液（pH值7.0），磨成匀浆，吸取少量浆液揩抹在事先涂有500~600目金刚砂（有利于破损叶片表面细胞）部分，轻轻摩擦务使浆液能侵入叶片表皮细胞但又不损伤叶片。5分钟后用水冲洗叶面。将被接种的指示植物置于有防蚜虫网罩的温室内，15~25℃，如接种植物的浆液含有病毒，数天至几周后，指示植物即出现可见的症状。较常用的指示植物有苋藜（Chenopodium amaranticolor）、昆诺阿藜(C.quinoa)、千日红(Gomphrena globosa)和各种烟草等。
（三）抗血清鉴定法
植物病毒是由核酸和蛋白质组成的核蛋白复合体，因而也是一种抗原，注射到动物体内即产生抗体，抗体存在于血清之中，称为抗血清。由于不同病毒产生的抗血清都有特异性，用特定病毒的抗血清来鉴定该种病毒，具有高度专一性和特异性，几分钟至几小时即
可完成，方法简便，所以成为植物病毒鉴定中最有用的方法之一。抗血清鉴定首先要进行抗原的制备，只有获得高纯度的抗原，才有可能获得高度纯净的抗血清。抗血清的鉴定法主要根据沉淀反映原理，具体测定有试管沉淀、凝聚试验、免疫扩散、免疫电泳、荧光抗体技术和酶联免疫吸附试验等多种方法。
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