Western Blot protocol
一、试剂准备
RPIA | 1 ml |
PMSF | 10μl |
Cocktail | 20μl |
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2. 1.5 mol/L Tris.HCL(PH 8.8)
Tris base (MW 121.1) 181.7g dd H2O 800 ml
溶解之后用浓盐酸调PH至8.8(一般加几滴即可,可以在调之前先测溶解液的PH,然后再估计浓盐酸的使用量),然后定容至1L。高压灭菌后保存。
3. 1 mol/L Tris.HCL(PH 6.8)
Tris base (MW 121.1) 30.9 g dd H2O 200 ml
溶解之后用浓盐酸调PH至6.8(,可以在调之前先测溶解液的PH,然后再估计浓盐酸的使用量。一般)
PH | HCl |
7.4 | 约17ml |
7.5 | 约16ml |
7.6 | 约15ml |
8.0 | 约10ml |
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然后定容至250 ml,经高压灭菌后使用。
4. 10% AP (过硫酸铵):
0.1 g过硫酸铵 + 1.0 ml Dd H2O 溶解后分装,-20℃保存。
5. 10% SDS:用900 ml的H2O加100 g SDS加热至68℃助溶,然后用浓盐酸调节PH至7.2,最后定容至1L。miae-043
6. 分离胶( 12% )[常用]:
分离胶 | 备注 |
体系 | 共10 ml | 单位:ml |
dd H2O | 3.3 | 室温保存 |
30% ACrglamide | 4.0 | 4 ℃保存 |
1.5 mol/L Tris.HCL(PH 8.8) | 2.5 | 4 ℃保存 |
10% SDS | 0.1 | 室温保存 |
10% AP | 0.1 | - 20℃保存 |
TEMED | 0.005 | 速凝,动作要快 |
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7. 浓缩胶( 5% ):
浓缩胶 | 备注 |
体系 | 共10 ml | 单位:ml |
dd H2O | 2.7 | 室温保存 |
30% ACrglamide | 0.67 | 4 ℃保存 |
1.0 mol/L Tris.HCL(PH 6.8) | 0.5 | 4 ℃保存 |
10% SDS | 0.04 | 室温保存 |
10% AP | 0.04 | - 20℃保存 |
TEMED | 0.005 | 速凝,动作要快 |
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8. 5 × Running Buffer(储存液):
Tris base | 15.1 g |
甘氨酸 | 94 g |
10% SDS | 50 ml |
dd H2O | 至1000 ml |
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9. 1 × Running Buffer (工作液):200 ml的5 × Running Buffer + 800 ml的dd H2O。
10. 转膜缓冲液:3.03 g Tris base + 14.4g甘氨酸 溶解在少量的蒸馏水中,完全溶解后加100ml的甲醇,再用蒸馏水定容至1L。
11. 10 × TBS ( 储存液) :24.2 g Tris base + 80 g NaCl 溶解,用Hcl调PH至7.6,最后定容至1L。
12. 1 × TBS (工作液):100 ml的10 × TBS + 900 ml的dd H2O。
13. TBST:含0.1% 吐温—20的1 × TBS。
14. 封闭液:含5% 的脱脂奶粉的TBST。即100 ml的TBST中含5 g 脱脂奶粉。
15. 一抗、二抗稀释液:含5% BSA的TBST(或者TBS)。
16. 4× Tris.Cl/SDS ( PH 6.8)[0.5 M Tris.Cl Contaning 0.4% SDS]
方法如下:
1 将0.65g Tris base 溶解于40 mlH2O中,并用1N HCL调节PH 至6.8。
2 补足 H2O 至 100 ml 。
3 将液体转移至一个新的瓶子中,加入0.4g SDS,待其溶解后将其4 ℃保存。
17. 6× buffer的配方:
1M×Tris.HCl/SDS ( PH 6.8,0.4%SDS) | 7 ml |
Glycerol(甘油) | 3ml |
SDS | 1g |
DTT | 0.93g |
Bromphenol blue (溴酚蓝) | 1.2mg |
+ dd H2O | 定溶至10 ml |
Store in -70℃ |
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18. 1mol DTT 的配方(二硫苏糖醇):用0.01mol/L乙酸钠溶液(PH 5.2)溶解于3.09g DTT,过滤除菌后分装成1ml,小分储存于-20℃。
19. 发光液的配方:
1) 储存液:
⏹ 10 ml Luminol 250 nM in DMSO stock (-20 ℃):442.9 mg luminol in 10ml DMSO.
⏹ 5 ml P-coumaric acid 90 mM in DMSO stock(4 ℃):73.872mg P-coumaric acid in 5ml DMSO.
⏹ 1 M Tris-HCl PH 8.5、
⏹ 30% H2O2
2) 使用液:
A (Dark 4 ℃) | 100 ml | B(Dark 4 ℃) | 100 ml |
闸道机10 ml Luminol 250 nM in DMSO stock (-20 ℃) | 1 ml | | |
5 ml P-coumaric acid 90 mM in DMSO stock(4 ℃) | 440μl | | |
1 M Tris-HCl PH 8.5 | 10 ml | 1 M Tris-HCl PH 8.5 | 10 ml |
30% H2O2 | 60μl | 30% H2O2 | 60μl |
dd H2O | 88.5 ml | dd H2O | 89.9 ml |
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WB 步 骤
(1)单层贴壁细胞总蛋白的提取:
1. 收集蛋白:
1 弃去原培养基,用PBS洗3次,后加胰酶消化细胞。
2 待细胞消化好后用PBS终止消化,将消化好的细胞悬液移到离心管中,用13000 rpm,离心5min。
3 弃去上层清夜,用PBS重悬细胞,再用13000 rpm,离心5min。
4 重复以上操作步骤。后弃去弃去上层清夜,用滤纸(或小头)将水分吸干,-80℃保存以备使用。
2. 提蛋白:(全部操作都在冰上进行)
1 按以下配方配制蛋白裂解液:
RPIA | 1 ml |
PMSF | 10μl |
Cocktail | 20μl 自动排污阀 |
Cocktail | 一粒+1.5 ml dd H2O 溶解 | 即为 7 X |
一粒+1 ml dd H2O 溶解 | 即为 10 X |
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2 加入适当的蛋白裂解液,裂解30 min,间隔振荡。
3 用13000 rpm,离心30 min。
旋转式清堵机
4 吸上清液到一个新的EP管中,做好标记并检测蛋白浓度。 5 按以下体系配制蛋白检测浓度体系:
孔号 | 0 | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 |
蛋白标准浓度(μl) | 0 | 1 | 2 | 4 | 8 | 12 | 16 | 20 |
dd H2O(μl) | 20 | 19 | 18 | 16 | 12 | 6 | 4 | 0 |
对应蛋白量(μg) | 0 | 0.5 | 1.0 | 2.0 | 4.0 | 6.0 | 8.0 | 10.0 |
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6 工作液的配制:BCA试剂A:BCA试剂B=50:1。
7 每孔酶标板加20μl的待测蛋白(如稀释20倍或50倍)和200μl的工作液。
8 将酶标板振荡30 sec,37℃ 静置30 min。
9 用562 mm的波长测定蛋白浓度。
10 整理数据,根据所得的数据绘制蛋白的标准曲线,计算待测蛋白的浓度。
(2) 组织中总蛋白的提取:
1. 将组织在研钵中研磨成粉末,再根据组织的量加蛋白裂解液。
2. 其它操作与提取细胞蛋白一致。
二、 SDS –聚丙烯酰胺凝胶电泳( SDS- PVDF): 1. 清洗玻璃板:一只手扣紧玻璃板,另一只手蘸点洗衣粉轻轻擦洗。两面都擦洗过后用自来水冲,再用蒸馏水冲洗干净后立在筐里晾干(或者烤干)。 使用前用酒精棉球拭擦玻璃。
1 玻璃板对齐后放入夹中卡紧。然后垂直卡在架子上准备灌胶。可以用加样注入少许双蒸水检查是否漏液。(可以用1%琼脂糖在垂直电泳槽的左、右和下部封边,五分钟后重复一次,这样可以保证基本不漏胶。)
2 胶配制选择:(附表中附带有各种浓度的分离胶的配方)
按前面方法配10%分离胶,加入TEMED后立即摇匀即可灌胶。灌胶时,可用应力传感器10ml吸取5ml胶沿玻璃放出,待胶面升到绿带中间线高度时即可。然后胶上加一层水,液封后的胶凝的更快。(灌胶时开始可快一些,胶面快到所需高度时要放慢速度。操作时胶一定要沿玻璃板流下,这样胶中才不会有气泡。加水液封时要慢,否则胶会被冲变型。)
3 当水和胶之间有一条折射线时,说明胶已凝了。再等3min使胶充分凝固就可倒去胶上层水并用吸水纸将水吸干。 一般凝胶时间为30min。
4 按前面方法配4%的浓缩胶,加入TEMED后立即摇匀即可灌胶。将剩余空间灌满浓缩胶然后将梳子插入浓缩胶中。灌胶时也要使胶沿玻璃板流下以免胶中有气泡产生。插梳子时
要使梳子保持水平。【由于胶凝固时体积会收缩减小,从而使加样孔的上样体积减小,所以在浓缩胶凝固的过程中要经常在两边补胶(其实说经常有点过了,补1-2次就行了,不补胶问题也不大)。待到浓缩胶凝固后,两手分别捏住梳子的两边竖直向上轻轻将其拔出。 】
5 将制作好的胶连同支架一起转移到电泳槽内槽中,制成一个封闭的体系。(可以在内槽中加入少量的running buffer,检测封闭系统是否漏液)
6 配制上样体系(总体积不超过20μl):根据测得的蛋白浓度计算检测蛋白的体积,(上样蛋白白含量后一般为20-50μg,实验中可以根据自己的实验需要进行选择,没有固定的量);按照以下配方配制上样体系:
标本号 | 浓度ug/ul | 每孔上样30ug | 6*loading | H2O | 上样量ul |
1号蛋白样品 | 11.33094 | 2.64761795 | 3.35 | 14.002382 | 20 |
2号蛋白样品 | 12.827676 | 2.338693263 | 刷镀液3.35 | 14.311307 | 20 |
3号蛋白样品 | 10.907963 | 2.750284244 | 3.35 | 13.899716 | 20 |
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上样前要将样品于沸水中煮5min使蛋白变性,然后再用13000 rpm 离心5min。(可以使用PCR仪进行变性,加快速度,这样就不用将水煮沸了,同时在水中煮蛋白样品有下面弊端:1.EP管容易炸开,样品丢失、2.容易进水,使样品体积增加,超过电泳最大上样量;3.也看可以在煮蛋白是不带锅盖)
7 加足够的电泳液后开始准备上样。(电泳液至少要漫过内测的小玻璃板。)用微量进样器贴壁吸取样品,将样品吸出不要吸进气泡。将加样器针头插至加样孔中缓慢加入样品。(加样太快可使样品冲出加样孔,若有气泡也可能使样品溢出。加入下一个样品时,进样器需在外槽电泳缓冲液中洗涤数次,以免交叉污染)
8 电泳:浓缩胶电压为80V较好,待样品过了浓缩胶进入分离胶时可以将电压调到120 V。待电泳至溴酚兰刚跑出即可终止电泳,进行转膜(如果目的条带比较大的话,可让目标蛋白跑开一些)。
三、 转膜 :
1. 转一张膜需准备12张11.3~11.8cm的滤纸和2张7.3~8.6cm的硝酸纤维素膜。切滤纸和
膜时一定要戴手套,因为手上的蛋白会污染膜。将切好的硝酸纤维素膜用甲醇浸泡2-3min,颜有变化即可转移至转膜液中浸泡。