免疫学实验报告

免疫实验—抗血清制备及抗体效价检测
cn-m摘要用具有抗原性的物质牛血清白蛋白(BSA)注入到健康动物例如鼠、兔的机体后,将引起免疫应答,并会形成浆细胞,分泌抗体。抗体主要存在于血清中,经多次免疫,使血清中的抗体量达到要求浓度,然后采集动物血液,再从血液中分离析出血清,从而获得抗血清。抗血清,是指含有免疫蛋白的血清。抗体效价指抗体的物理状态及其在体内滞留时间,以其与抗原反应的多少来表示其免疫效果。此次实验主要是进行小鼠的牛血清白蛋白(BSA)抗血清的制备过程,并通过酶免疫吸附试验(ELISA)对其进行抗体效价检测。
关键字:牛血清白蛋白(BSA) 抗血清  抗体效价  免疫
实验过程
本次实验一共分为三个分实验:
实验一:免疫
实验二:抽血、放血,分离抗血清     
实验三:ELISA测定抗体效价
实验一:免疫
一、抗血清制备的原理
用具有抗原性的物质注入到健康动物的机体后,将引起免疫应答,并会形成浆细胞,分泌抗体。抗体主要存在于血清中,经多次免疫,使血清中的抗体量达到要求浓度,然后采集动物血液,再从血液中分离析出血清,从而获得抗血清。
二、目的
制备高效价的抗血清
三、实验仪器、材料和试剂
实验仪器:1mL 注射器,酒精棉球,剪刀
材料:家兔,小鼠
试剂:3%~5%溶液或80%~90%,牛血清白蛋白(BSA)
三、方法和步骤
1、动物编号
左前腿上部为1,左腰部为2,左后腿为3,头部为4,背部为5,尾基部为6,右侧从前至后依次为7、8、9。红表示十位数,用黄表示个位数。免疫前用金属编号牌固定兔耳,或用染料涂沫在动物的背部,作出明确的标记。
2、动物抓取及注射按
如下图所示抓取目标动物
家兔为300~600 μg/次(400),每次不超过2mL;小鼠为10~100 μg /次(10-20,20~40 μg / ml),每次不超过0.5mL。
小鼠腹腔注射
以左手抓住动物,使腹部向上,右手将注射针头于左(或右)下腹部刺入皮下,使针头向前推?0.51.0cm,再以45度角穿过腹肌,固定针头,缓缓注入药液,为避免伤及内脏,可使动物处于头低位,使内脏移向上腹。
兔子可以分别尝试皮下(脚掌)、皮内、耳静脉、肌肉注射
实验二:抽血、放血,分离抗血清
一、采血
小鼠采血
(一)、尾部采血:需血量少时可用此方法。将小鼠放在在有开孔的离心管内,显露尾部,将尾端剪去约 5mm,从尾根部向尾端部按摩,血即从断端流出。
(二)、小鼠睚眦采血:将毛细管折断,使其断口锋利。采血时,左手拇指和食指抓住鼠两耳之间的皮肤使鼠固定,并用中指配合,轻轻压迫颈部两侧,阻碍静脉回流,使眼球充分外突,提示眼眶后静脉丛充血。用毛细管的断口,右手拇指、食指和中指握住毛细管,
将其尖端插入内眼角与眼球之间,轻轻向眼底方向刺入约 2~3mm,手指旋转捻动毛细管以刺破静脉丛,鼠血顺毛细管流入 1.5mL 无菌离心管中,收集鼠血。采血结束后,拔出取血管,放松左手,出血即停止。用本法短期内可重复采血。小鼠一次可采血 0.2—0.3 ml,大鼠一次可采 0.5—0.1ml
家兔的采血
(一)、耳静脉抽血:将家兔置于兔固定箱内,对家兔进行耳静脉抽血,此法用于小量抽血,验血测抗体效价,以便决定加强免疫或放血,与耳静脉注射方式相反。
(二)、心脏抽血:家兔固定(仰卧)---准确到心脏部位---剪毛(心脏部位)---消毒---进针(50ml注射器接带硅胶管的12号针头)抽血,抽至50ml,从硅胶管接头处取下注射器,拔针头,将血液注入100ml无菌空三角瓶,再重复上述操作继续抽血,直至抽完。
(三)、颈动脉放血:家兔固定(仰卧,身体及头部固定)---剪毛(颈部)---颈动脉管(消毒---剖开颈部;开皮、膜、肌肉,到气管两边的颈动脉管(桃红,有脉动))---小心分开动脉上的肌肉、神经(2条,白)等---开口(见图)---放血,接入100ml无菌空三角瓶。
注意:看到气管,停用所有锐器,可用止血钳、钝玻棒。注意不要剪破毛细动脉管!!!
二、抗血清的分离,保存
1、斜置装血液的三角瓶0.5-1h;
2、用无菌玻棒剥落、松动瓶壁上的血块(利于血清析出);
3、原样包扎好,做好记号,放进冰箱(4℃)过夜;
4、次日:估计分离的血清量并观察描述血清颜;去血块,离心取上清(3000rpm,20min),加叠氮钠(终浓度为0.1%),混匀,分装小管,作好标记,-20或-80℃保存待测。图像拼接
实验三:酶免疫吸附试验法(ELISA)测定抗体效价
一、ELISA原理
酶联免疫吸附测定(enzyme-linked immunosorbent assay 简称ELISA)是在免疫酶技术的
基础上发展起来的一种新型的免疫测定技术。ELISA过程包括抗原(抗体)包被在固相载体上,加待测抗体(抗原), 再加相应酶标记抗体(抗原),生成抗原(抗体)--待测抗体(抗原)--酶标记抗体的复合物,再与该酶的底物反应生成有产物。借助分光光度计的光吸收计算抗体(抗原)的量。
二、实验仪器、材料、试剂
仪器:酶标板,酶标仪、保鲜膜、排
材料:牛血清白蛋白(BSA)—— 抗原,10 μg/ml溶液,包被液配制
鼠抗BSA—— 待测抗体样品,用PBST从1:1000开始倍比稀释,连续稀释8个稀释度
HRP标记羊抗小鼠IgG —— 二抗(按说明书稀释使用,用PBST稀释。)
试剂:包被缓冲液:0.05 M pH 9.6碳酸盐缓冲液(Na2CO3 1.59克,NaHCO3 2.93克,加水900ml,调pH,再定容至1L)
0.01M PBS溶液(NaCl 8.5 g, Na2HPO4.12H2O 2.85g或Na2HPO4.2H2O 1.13g,KCl 0.
羊角钩
2g, KH2PO4 0.27g,蒸馏水定容至1000ml,pH7.4)
PBST洗涤液:含0.05 % Tween 20的0.01 M 的PBS( pH 7.4 )
底物溶液:TMB( 3,3,5,5-四甲基联苯胺)
2M H2SO4 (市售浓硫酸为18.4 M,根据要配制的2M硫酸体积,吸管吸好相应体积浓硫酸沿着器壁缓慢加到水中)
三、实验方法和步骤
1.加抗原:取酶标板,加入100μl/孔的抗原溶液(用包被缓冲液稀释,用排加)
2.包被抗原:保鲜膜包好, 37℃ 1h或4 ℃过夜(抗原分子通过疏水作用力结合到96微孔板上)
3.封闭:甩干后以PBST(200μl/孔)洗涤3次,3min/次,每孔加入100 μl  5%(W/V)脱脂奶粉溶液(用PBS溶液配制)。保鲜膜包好, 37℃, 2h后(封闭的目的:降低背景干扰,避免假阳性),取出包被、封闭好抗原的酶标板,甩干孔内液体。以PBST(200μl/孔)
洗涤3次,3min/次
4.加待测血清:标记各孔,加入相应稀释度的抗体100μl/孔(用PBST稀释,按示意图用单加)。37℃,保鲜膜包好,60min后甩干孔内液体
5.加二抗:以PBST(200μl/孔)洗涤4次,3min/次。各孔加入酶标二抗100μl/孔,37℃,保鲜膜包好,45min后,甩干孔内液体
6.显:以PBST(200μl/孔)洗涤4次,3min/次。加入TMB底物溶液50μL/孔,避光显10min(抽屉中),然后每孔加入50 μl 2M 硫酸终止反应
7.结果分析
在酶标仪上,于450nm处测各孔OD值。阴性无,OD小于0.1;阳性黄,3个重复的平均值大于0.2,且为阴性对照OD值的2.0倍。
打开“酶免大师”,登录密码“1234”,设置参数,选“终点法检测”,建微板,点击“read”,等待读取各孔OD值,导出。
经免疫小鼠
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
A
0.208
0.188
0.193
0.04
0.047
0.047
B
0.148
0.141
0.144
0.048
0.044
0.044
防暴叉
C
0.1
0.091蒸汽喷嘴
0.092
0.039
0.039
0.039
D
0.072
0.056
0.063
0.04
0.045
0.039
E
0.064
0.057
0.054
0.043
0.038
0.045
F
0.057
O.O54
0.052
0.043
0.041
0.038
G
0.049
0.051
0.049
0.044
0.045
0.035
H
0.053
0.048
0.040
0.043
0.04
0.04
透水石
结论:
由于实验动物免疫效果不好等原因,所得OD值太小,小鼠免疫还可以,初步判断抗原效价为一价。未免疫家兔的血清测定的OD值很小,说明实验材料没有很大的污染。
穿插实验;玻片法血型鉴定
实验材料:
1、Ag:受检血样(红细胞悬液)
2、Ab:标准抗A血清、标准抗B血清(单克隆抗体,不同于标准A型血清、B型血清)。
实验方法和步骤:
1、受检抗原(血样)制备:
  用酒精棉球消毒手指---待干后用无菌5#针刺消毒部位---取一滴血(大绿豆大小)于盛有0.6ml生理盐水的离心管中,混匀。
2、加标准诊断血清到受检血样中,血型判定:
  取干净6孔白瓷盘一块(两人用),三孔先各加一滴血样---前两孔分别加入一滴抗A、抗B鉴定血清---用两根无菌牙签分别对前两孔进行混合,水平摇动---2min后观察结果。
实验结果分析

本文发布于:2024-09-22 04:33:14,感谢您对本站的认可!

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标签:抗体   血清   实验
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