证明膜蛋白流动性的经典实验
免疫荧光技术（Immunofluorescence technique ）又称荧光抗体技术。它是在免疫学、数控转塔冲床模具
生物化学和显微镜技术的基础上建立起来的一项技术。荧光是指一个分子或原子吸收了给予的能量后，即刻引起发光；停止能量供给，发光亦瞬即停止。荧光素是一种可吸收激发光的光便能产生荧光，并能作为染料使用的有机化合物，亦称荧光素。
发生原理---基态 激发态
产生特点：激发---即刻产生二氧化氯发生器加药
停止激发---瞬间消失
种类---光致荧光，化学荧光，X线荧光，阴极射线荧光
该技术的主要优缺点
主要优点：特异性强、敏感性高、速度快。
主要缺点：非特异性染问题尚未完全解决，结果判定的客观性不足，技术程序也还比较复杂
免疫荧光技术- 基本原理
免疫学的基本反应是抗原-抗体反应。由于抗原抗体反应具有高度的特异性，所以当抗原抗体发生反应时，只要知道其中的一个因素，就可以查出另一个因素。免疫荧光技术就是将不影响抗原抗体活性的荧光素标记在抗体（或抗原）上，与其相应的抗原（或抗体）结合后，在荧光显微镜下呈现一种特异性荧光反应。 直接法
将标记的特异性荧光抗体，直接加在抗原标本上，经一定的温度和时间的染，用水洗去未参加反应的多余荧光抗体，室温下干燥后封片、镜检。 间接法
如检查未知抗原，先用已知未标记的特异抗体（第一抗体）与抗原标本进行反应，用水洗去未反应的抗体，再用标记的抗抗体（第二抗体）与抗原标本反应，使之形成抗原—抗体—抗体复合物，再用水洗去未反应的标记抗体，干燥、封片后镜检。如果检查未知抗体，则表明抗原标本是已知的，待检血清为第一抗体，其它步骤的抗原检查相同。标记的抗抗体是抗球蛋白抗体，同于血清球蛋白有种的特异性，如免疫抗鸡血清球蛋白只对鸡的球蛋白发生反应，因此，制备标记抗体适用于鸡任何抗原的诊断。
技术分类
1 荧光抗体技术(荧光显微镜技术)
抗原抗体反应后，利用荧光显微镜判定结果的检测方法。
2 免疫荧光测定技术
长链二元酸抗原抗体反应后，利用特殊仪器测定荧光强度而推算被测物浓度的检测方法
荧光物质
1、荧光素：许多物质都可产生荧光现象，但并非都可用作荧光素。只有那些能产生明显的荧光并能作为染料使用的有机化合物才能称为免疫荧光素或荧光染料。
常用的荧光素有：
（1）异硫氰酸荧光素为黄或橙黄结晶粉末，易溶于水或酒精等溶剂。分子量为389.4，最大吸收光波长为490--495nm，最大发射光波长520--530nm，呈现明亮的黄绿荧光，有两种同分异结构，其中异构体Ⅰ型在效率、稳定性、与蛋白质结合能力等方面都更好，在冷暗干燥处可保存多年，是应用
最广泛的荧光素。其主要优点是：①人眼对黄绿较为敏感，②通常切片标本中的绿荧光少于红。
(2)四乙基罗丹明（rhodamine，RIB200）为橘红粉末，不溶于水，易溶于酒精和丙酮。性质稳定，可长期保存。结构式：最大吸收光波长为570nm，最大发射光波长为595～600nm，呈橘红荧光。电阻加热炉
(3)四甲基异硫氰酸罗丹明（tetramethylrhodamineisothiocyanate，TRITC）结构式：最大吸引光波长为550nm，最大发射光波长为620nm，呈橙红荧光。与FITC的翠绿荧光对比鲜明，可配合用于双重标记或对比染。其异硫氰基可与蛋白质结合，但荧光效率较低。
2、其他荧光物质
1）酶作用后产生荧光的物质某些化合物本身无荧光效应，一旦经酶作用便形成具有强荧光的物质。例如4-甲基伞酮-β-D半乳糖苷受β-半乳糖苷酶的作用分解成4-甲基伞酮，后者可发出荧光，激发光波长为360nm，发射光波长为450nm。其他如碱性酸酶的底物4-甲基伞酮磷酸盐和辣根过氧化物酶的底物对羟基等。
2）镧系螯合物某些3价稀土镧系元素如铕（Eu3 ）、铽（Tb3 ）、铈（Ce3 ）等的螯合物经激发后也可发射特征性的荧光，其中以Eu3 应用最广。Eu3 螯合物的激发光波长范围宽，发射光波长范围窄，荧光衰变时间长，最适合用于分辨荧光免疫测定。
免疫荧光技术的实验步骤
1. 直接免疫荧光法测抗原
（1）基本原理：将荧光素标记在相应的抗体上，直接与相应抗原反应。其优点是方法简便、特异性高，非特异性荧光染少。缺点是敏感性偏低；而且每检查一种抗原就需要制备一种荧光抗体。此法常用于细菌、病毒等微生物的快速检查和肾炎活检、皮肤活检的免疫病理检查。
（2）试剂与仪器：磷酸盐缓冲盐水（PBS）：0.01mol/L，pH7.4、荧光标记的抗体溶液：以0.01mol/L，pH7.4的PBS进行稀释、缓冲甘油：分析纯无荧光的甘油9份+ pH9.2 0.2M 碳酸盐缓冲液1份配制、搪瓷桶三只（内有0.01mol/L，pH7.4的PBS 1500ml）、有盖搪瓷盒一只（内铺一层浸湿的纱布垫）、荧光显微镜、玻片架、滤纸、37℃温箱等。
（3）实验步骤
①滴加0.01mol/L，pH7.4的PBS于待检标本片上，10min后弃去，使标本保持一定湿度。
②滴加适当稀释的荧光标记的抗体溶液，使其完全覆盖标本，置于有盖搪瓷盒内，保温一定时间（参考：30min）。
③取出玻片，置玻片架上，先用0.01mol/L，pH7.4的PBS冲洗后，再按顺序过
0.01mol/L，pH7.4的PBS三缸浸泡，每缸3-5 min，不时振荡。
④取出玻片，用滤纸吸去多余水分，但不使标本干燥，加一滴缓冲甘油，以盖玻片覆盖。
⑤立即用荧光显微镜观察。观察标本的特异性荧光强度，一般可用“+”表示：（-）无荧光；（±）极弱的可疑荧光；（+）荧光较弱，但清楚可见；（++）荧光明亮；（+++ --++++）
荧光闪亮。待检标本特异性荧光染强度达“++”以上，而各种对照显示为（±）或（-），即可判定为阳性。
（4）注意事项：1对荧光标记的抗体的稀释，要保证抗体的蛋白有一定的浓度，一般稀释度不应超过1：20，抗体浓度过低，会导致产生的荧光过弱，影响结果的观察。
2染的温度和时间需要根据各种不同的标本及抗原而变化，染时间可以从10 min 到数小时，一般30 min已足够。染温度多采用室温（25℃左右），高于37℃可加强染效果，但对不耐热的抗原（如流行性乙型脑炎病毒）可采用0-2℃的低温，延长染时间。低温染过夜较37℃30 min效果好的多。
3为了保证荧光染的正确性，首次试验时需设置下述对照，以排除某些非特异性荧光染的干扰。
①标本自发荧光对照：标本加1-2滴0.01mol/L，pH7.4的PBS。
②特异性对照（抑制试验）：标本加未标记的特异性抗体，再加荧光标记的特异性抗体。
③阳性对照：已知的阳性标本加荧光标记的特异性抗体。
如果标本自发荧光对照和特异性对照呈无荧光或弱荧光，阳性对照和待检标本呈强荧光，则为特异性阳性染。
韩先良
4一般标本在高压汞灯下照射超过3min，就有荧光减弱现象，经荧光染的标本最好在当天观察，随着时间的延长，荧光强度会逐渐下降。
2.间接免疫荧光法测抗体
电力滤波（1）基本原理：染程序分为两步，第一步，用未知未标记的抗体（待检标本）加到已知抗原标本上，在湿盒中37℃保温30min，使抗原抗体充分结合，然后洗涤，除去未结合的抗体。第二步，加上荧光标记的抗球蛋白抗体或抗IgG、IgM抗体。如果第一步发生了抗原抗体反应，标记的抗球蛋白抗体就会和已结合抗原的抗体进一步结合，从而可鉴定未知抗体。
（2）试剂与仪器：磷酸盐缓冲盐水（PBS）：0.01mol/L，pH7.4、缓冲甘油：分析纯无荧光的甘油9份+ pH9.2 0.2M碳酸盐缓冲液1份配制。荧光标记的抗人球蛋白抗体：以0.01mol/L，pH7.4的PBS进行稀释。搪瓷桶三只（内有0.01mol/L，pH7.4的PBS 1500ml）有盖搪瓷盒一只（内铺一层浸湿的纱
布垫）、荧光显微镜、玻片架、滤纸、37℃温箱等。
（3）实验步骤1
1 滴加0.01mol/L，pH7.4的PBS于已知抗原标本片，10min后弃去，使标本片保持一定湿度。
2 滴加以0.01mol/L，pH7.4的PBS适当稀释的待检抗体标本，覆盖已知抗原标本片。将玻片置于有盖搪瓷盒内，37℃保温30min。
3 取出玻片，置于玻片架上，先用0.01mol/L，pH7.4的PBS冲洗1-2次，然后按顺序过0.01mol/L，pH7.4的PBS三缸浸泡，每缸5min，不时振荡。
4 取出玻片，用滤纸吸去多余水分，但不使标本干燥，滴加一滴一定稀释度的荧光标记的抗人球蛋白抗体。
5 将玻片平放在有盖搪瓷盒内，37℃保温30min。
6 重复操作3。
7 取出玻片，用滤纸吸去多余水分，滴加一滴缓冲甘油，再覆以盖玻片。
8 荧光显微镜高倍视野下观察，结果判定同直接法。
（4）注意事项
1. 荧光染后一般在1h内完成观察，或于4℃保存4h，时间过长，会使荧光减弱
2. 每次试验时，需设置以下三种对照：①阳性对照：阳性血清+荧光标记物②阴性对照：阴性血清+荧光标记物③荧光标记物对照：PBS+荧光标记物
3. 已知抗原标本片需在操作的各个步骤中，始终保持湿润，避免干燥。
4. 所滴加的待检抗体标本或荧光标记物，应始终保持在已知抗原标本片上，避免因放置不平使液体流失，从而造成非特异性荧光染。
淋巴细胞的成斑和成帽现象
当荧光抗体标记时间继续延长，已均匀分布在细胞表面的标记荧光会重新排列，聚集在细胞表面的某些部位，即所谓成斑现象。继而聚集在细胞的一端，即成帽现象。
淋巴细胞通过产生抗体对外源蛋白进行应答，抗体分子位于细胞质膜上。蛋白质能够在不同的动物中
诱导产生抗体，如果将小鼠的抗体注入兔子中，兔子将会产生抗小鼠抗体的抗体。可以从兔子的血液中分离这种抗体，并将这种抗体共价连接到荧光染料上，就可以通过荧光显微镜进行观察。当兔子的抗小鼠的抗体与小鼠的淋巴细胞混合时，带有标记的抗体就会同小鼠淋巴细胞质膜上的抗体结合，并分布在整个淋巴细胞的表面，但很快就会成块或成斑。导致这种现象的原因是抗体是多价的，每一个兔子的抗体能够同小鼠细胞质膜表面的多个抗体分子反应，也就是说小鼠的每一个膜抗体将同多个兔子的抗体反应。这样, 在小鼠淋巴细胞的细胞质膜表面形成“兔抗小鼠抗体分子-小鼠膜结合抗体”的斑。斑逐渐聚集扩大，当小鼠淋巴细胞质膜表面抗体全部同兔子的抗小鼠抗体结合后，将会在细胞表面的一侧形成“帽子”结构，最后通过内吞作用进入细胞。很显然，如果小鼠细胞质膜中的抗体蛋白不能自由的进行侧向扩散的话，斑和帽都是不能形成的。
光脱荧光恢复技术(fluorescence recovery after photobleaching FRAP) 这种方
法不仅能够证明膜的流动性，同时也能测量膜蛋白扩散的速率。
这一技术是研究膜流动性的一种方法。首先用荧光物质标记膜蛋白或膜脂, 然后用激光束照射细胞表面某一区域, 使被照射区域的荧光淬灭变暗形成一个漂白斑。由于膜的流动性，漂白斑周围的荧光物质随着膜蛋白或膜脂的流动逐渐将漂白斑覆盖，使淬灭区域的亮度逐渐增加, 最后恢复到与周围的荧光光强度相等。细胞膜蛋白的标记方法有很多种。可以用非特异性的染料，如异硫氰酸荧光素(fluores
cein isothiocyanate,FITC)将细胞膜蛋白全部进行标记。也可用特异性的探针，如荧光抗体，标记特异的膜蛋白。膜蛋白一旦被标记就可用激光束进行局部照射处理，使荧光脱，形成直径约为1μm 的白斑。若是可移动的膜蛋白，则会因蛋白的移动，使白斑消失，若是不能移动的蛋白.则白斑不会消失。根据荧光恢复的速度, 可推算膜脂的扩散速度为每秒钟为几个微米，而膜蛋白的扩散速度变化幅度较大，少数膜蛋白的扩散速度可达到膜脂的速度，大多数蛋白的扩散速度都比膜脂慢，还有一些膜蛋白完全限于某一个区域。正是这种限制，使膜形成一些特定的膜微区(membrane domain)，这些微区具有不同的蛋白组成和功能。这实际上是膜蛋白不对称分布带来膜功能的不对称。
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