方法一：
1.首先需要把细胞养在玻璃片上（悬浮细胞需要用多聚赖氨酸包被过的玻璃片） 2.然后在4％PFA里面室温下固定30分钟，PBS洗两次，0.1% TX-100室温下作用1－2分
钟使细胞膜通透。
3.接下来进行荧光标记，需要在一个大的容器（面积大，扁平状的，比如大的培养皿）里面，
放一张用水打湿的滤纸，以保持湿度。
4.剪一片合适大小的parafilm，在上面滴上稀释在1％BSA/TBS中的一抗（稀释倍数依具体
抗体而定），每个玻璃片30ul足够，把玻璃片盖在上面（细胞面朝下），室温下孵育30分钟，然后在PBS里洗三次。 5.接下来二抗孵育步骤同上。
6.最后，在载玻片加上mounting medium（大约每个玻璃片加10ul），把玻璃片放上去（细
胞面朝下），37度30分钟，然后就可以在荧光显微镜下观察了。
7.抗体很重要，不能有非特异性结合。你可以先做WB检测一下你的抗体，看看有没有杂带。
8.双标的话，可以把两个一抗一起加或者分别标记两次（可以都试一下看看那种方法合适）。
如果一个抗体需要二抗，一个是直接荧光标记的，可以把荧光标记的那个和另外一个的二抗一起加。
方法二：
1.选取一抗时要来源于两种不同的动物，我用的是来源于rabbit和rat的抗体，二抗则是不
同荧光信号标记的，我用的是donkey anti-rabbit-FITC（绿）和donkey anti-rat-Tex-Red（红）。
2.我的做法是两种一抗同时孵育，然后两种二抗同时孵育。抗体浓度、孵育时间要仔细摸索，
我感觉一抗4度孵育过夜比较好，背景比较清晰。
3.我的阳性对照用的是阳性组织切片，阴性对照则分别是家兔和大鼠的IgG，荧光标记物对
照是PBS+荧光标记物。
4.封闭血清与二抗来源动物一致，我用的是10%的正常donkey血清。
5.其余步骤同一般免疫荧光单标操作。
方法三：
1.片子的制作：可以做细胞爬片，细胞甩片，还有直接在24well/12well/96well中直接染
2.细胞爬片的制作：直接购买公司的已经处理过的细胞爬片，要是自己制作的话，就用无菌 的盖玻片用多聚赖氨酸处理后让细胞自己爬片
3.细胞甩片：需要甩片机将细胞悬液均匀甩到玻片上。
4.其实小的well的话，可以直接拿来染，没问题的。
5.固定：用PBS洗去培养液，用固定液（如甲醇和丙酮；4%多聚甲醛；酒精。。。）固定细胞。
6.内源性过氧化物酶处理，3%过氧化氢处理细胞（选作，二抗连HRP得必做，其他的如做
免疫荧光染不用做）。
7.通透（胞浆蛋白和细胞核蛋白需要做；细胞膜蛋白不需要做），一般选用Triton-X100来做
细胞通透，浓度和时间需要摸索，一般是0.1-5%，处理时间为1-30分钟，级个别需要到1-2小时。
8.封闭：洗去通透液，用二抗同源的血清约10%的浓度in PBS中封闭半小时，也可以选用
5-10%脱脂奶粉。封闭结束后千万不要洗，直接上一抗。
9.一抗：具体你想做什么样的蛋白，咨询抗体公司如santa cruze,。选取具体
的抗体，但是一抗的稀释浓度也是要摸索，抗体稀释液可以购买抗体公司现成的，对于新手还是挺好的。时间一般是4度过夜或者37度1小时。一抗最好还是选用外国抗体公司的抗体。
10.洗去一抗。
11.上二抗，二抗一般抗体公司会给你推荐的，你在其中选上一个就行了，自己选国产的也
行，就是选在哪个动物体内做的一抗，二抗就选抗那个动物的就行了。二抗的浓度也是需要摸索的，抗体稀释液和一抗相同就行了。二抗的时间一般是37度半小时。
12.底物显（选作，二抗连得是酶的必做，按试剂盒的说明书添加就行了，显时间可能
需要摸索，以免显过度引起假阳性；二抗连得是荧光报告的不用做）
13.洗去二抗，染核
14.DAPI或者Hoechst染核
15.洗去染核液，加PBS，上镜观察。
方法四：
(1)细胞准备。对单层生长细胞，在传代培养时，将细胞接种到预先放置有处理过的盖玻片的
培养皿中，待细胞接近长成单层后取出盖玻片，PBS洗两次；对悬浮生长细胞，取对数生长细胞，用PBS离心洗涤(1000rpm，5min)2次，用细胞离心甩片机制备细胞片或直接制备细胞涂片。
(2)固定。根据需要选择适当的固定剂固定细胞。固定完毕后的细胞可置于含叠氮纳的PBS
中4℃保存3个月。PBS洗涤3×5 min。
(3)通透。使用交联剂(如多聚甲醛)固定后的细胞，一般需要在加入抗体孵育前，对细胞进行
通透处理，以保证抗体能够到达抗原部位。选择通透剂应充分考虑抗原蛋白的性质。通透的时间一般在5-15min。通透后用PBS洗涤3×5 min。
(4)封闭。使用封闭液对细胞进行封闭，时间一般为30min。
(5)一抗结合。室温孵育1h或者4℃过夜。PBST漂洗3次，每次冲洗5min。
(6)二抗结合。间接免疫荧光需要使用二抗。室温避光孵育1h。PBST漂洗3次，每次冲洗5min
后，再用蒸馏水漂洗一次。
(7)封片及检测。滴加封片剂一滴，封片，荧光显微镜检查。
方法五：
1．漂洗血清蛋白PH7.2-7.4，37度PBS 2小时.
2．-20度甲醇固定20分钟后，自然、干燥10分钟
3．PBS洗净：3min＊3
4．1%Triton：25min-30min.配成50ultriton+5mlpBS
5．PBS洗净：2＊5min
6．羊血清封闭：37度，20分钟
7．一抗，4度过夜，一般要大于18小时或者37度1-2小时
8．4度PBS洗净，３min＊5次
9．二抗37度小于一小时
10．37度PBS洗净，3＊3min
11．凉干封片（封闭液PH8.5）
细胞免疫荧光步骤：
1.细胞爬片；首先是玻片的处理，普通的盖玻片用砂轮划成自己要的大小的小方块，先用洗
衣粉洗干净，用水冲静烤干，然后泡酸过夜，捞酸后流水洗净，烤干，置于器皿中高压灭菌，然后再烤箱中大约8小时烤干备用。
爬片可以在培养皿六孔板或24孔板中都可，我选择在培养皿中爬。一为节约经费（培养皿可以重复利用）二来觉得培养皿口大，操作比较方便。培养皿消毒同上，消毒时记得消两把镊子
具体操作是：用胰酶消化好细胞，充分吹打，使之成单细胞悬液（注意：这一点很重要，关系到将来爬出来片子的质量）
取出消毒的培养皿，可以先加少量培养基（以使玻片与培养皿紧密接触），将玻片小心放入摆放其中，然后将单细胞悬液一滴一滴的滴到玻片上。最后盖上培养皿置于37度5％CO2的暖箱中培养，根据细胞生长状况，24小时或更长时间适时取出爬片。
爬片置于37度PBS中洗三次，每次3到5秒钟，然后在4％多聚甲醛中固定15分钟，然后再用37度去离子水将甲醛冲干净，注意手法轻柔，要不然掉片很厉害。同时操作过程中注
意玻片的正反面，要不然真的是前功尽弃。
将做好的爬片置于滤纸上晾干，然后用中性树胶粘在载玻片上。注意一定要等中性树胶彻底干了之后才能做后续实验，要不然玻片会掉下来的，就又是前功尽弃了做好的细胞爬片可以放在－20保存备用，具体能保存多长时间不太清楚，当然尽量早用。
2.4%多聚甲醛固定10min(固定细胞器用预冷的70%甲醇+30%丙酮)；
3.PBS漂洗5min；
4.0.5% Triton 穿孔15min(丙酮固定法不用透化处理)；
5.PBS漂洗2次，每次5min；
6.1%BSA封闭30min；
7.加入1%BSA稀释的一抗，于37℃杂交2h；
8.PBS漂洗2次，每次5min；
9.加入1%BSA稀释的二抗，于37℃杂交1h；
10.PBS漂洗2次，每次5min；
11.5ug/ml DAPI染2min；
12.抗淬灭封片剂封片。
抗淬灭封片剂:
2.5% DABCO (w/v)
50mM Tris(pH8.0)
90%甘油
细胞免疫荧光
细胞爬片
4%多聚甲醛固定10min
(固定细胞器用预冷的70%甲醇+30%丙酮)
PBS漂洗5min
0.5% Triton 穿孔15min
(丙酮固定法不用透化处理)
PBS漂洗2次，每次5min
1%BSA封闭30min
加入1%BSA稀释的一抗，于37℃杂交2h
PBS漂洗2次，每次5min
加入1%BSA稀释的二抗，于37℃杂交1h
PBS漂洗2次，每次5min
5ug/ml DAPI染2min
抗淬灭封片剂封片
2.5% DABCO (w/v)
抗淬灭封片剂50mM Tris(pH8.0)
90%甘油
0.25g DABCO
9ml甘油
0.5ml 1M Tris(Ph8.0) 70℃溶解，-20℃保存
0.5ml ddH2O
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