抗菌实验
1.摇菌
将大肠杆菌、枯草杆菌的原抗菌膜菌液+5 mL培养液倒入10 mL离心管，37 °C摇床培养12 h。（最好早上8点摇菌）
2. 使用无菌操作台
在操作面板上打开操作台的通风与照明，点燃酒精灯，用乙醇对手进行消毒。
3.配制溶液
（1）配制培养液
培养液配方：酵母提取物 0.5% （wt%）；蛋白胨 1% （wt%）；氯化钠NaCl 1% （wt%）；去离子水 97.7% （wt%）
（2）配制培养基
培养液中加入 1.5% （wt%）琼脂粉并摇匀，放入高压锅中灭菌。灭菌完成后，取出冷却至50℃左右（不烫手的温度）倒入一次性培养皿中，每个培养皿 10-15 mL。在琼脂凝固后将培养皿倒置，以防止水汽冷凝后滴落。 注意：使用高压锅时留意水位。（加水、排水、定期换水）
（3）配制生理盐水
1%的NaCl溶液。
4.灭菌
（1）高温灭菌
将培养液、培养基、离心管、头等放入入高压锅中进行20 min 灭菌处理。（高压锅经过加热、恒温、散热三个过程，大约需要3 h）
（2）膜片紫外灭菌
将实验制得的膜裁至与载玻片大小相当，分别放入培养皿中。先用乙醇对载玻片灭菌，再打开紫外照射进行灭菌，正反面各20 min。
5.接触杀菌
（1）稀释菌液
用生理盐水（0.9% NaCl溶液）将稳定期的浓菌液稀释3~4次，每次取0.5 mL菌液和4.5 mL生理盐水摇匀。
取50 μL（或100 μL，视膜片大小而定）稀释后的菌液滴于膜片正面，再小心盖上载玻片，轻压，使菌液分散均匀。然后用封口膜密封，放入37℃培养箱培养1~2h。注意每次要做空白对照组稀释菌液。
6.涂板
（1）稀释：
将培养一定时间后的膜片及载玻片浸入提前量取的10mL生理盐水中，摇匀。
（2）涂板
取100μL摇匀稀释后的菌液滴加到培养基上，用小玻璃珠滚匀，封口，倒置放入37℃培养箱培养12h。
7.查看结果
12h后取出培养基，正面拍照，存档，数菌，计算杀菌率。
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