多糖作为免疫佐剂的研究进展

中国免疫学杂志2022年第38卷
多糖作为免疫佐剂的研究进展①
姜红蕾
王凤山(山东大学药学院生化与生物技术药物研究所,济南250012)
中图分类号R392
文献标志码
A
文章编号
1000-484X (2022)05-0638-05
[摘
要]多糖能够作用于免疫系统,引起免疫应答,并且具有良好的生物相容性、低毒,是优秀的疫苗佐剂候选药物。
多糖的来源广泛,种类繁多,不同多糖所产生的免疫效果也不相同。本文系统地综述了近年来关于具有疫苗佐剂活性多糖的研究,包括壳聚糖、菊糖、葡聚糖、脂多糖、中药多糖等,并展望了多糖作为佐剂的应用前景。
[关键词]多糖;佐剂;免疫;疫苗
Research progress of polysaccharides as immunoadjuvants
JIANG Honglei ,WANG Fengshan.Institute of Biochemical and Biotechnological Drugs ,School of Pharmaceutical Sciences ,Shandong University ,Jinan 250012,China
[Abstract ]Polysaccharides ,which generally have good biocompatibility and low toxicity and can induce immune responses ,
are good candidates for vaccine adjuvants.There are many different kinds of polysaccharides due to that they come from a wide variety of sources and different polysaccharides can induce different immune responses.This article systematically summarizes the recent studies
on the vaccine adjuvant activities of polysaccharides adjuvant activities ,including chitosan ,inulin ,glucan ,lipopolysaccharide and
the polysaccharides from Chinese medicinal herbs.In addition ,the future of polysaccharides as immunoadjuvants is prospected.
[Key words ]Polysaccharide ;Adjuvant ;Immunity ;Vaccine
接种疫苗是产生充分的保护性免疫反应来预防和控制传染病传播的最有效策略。疫苗需要有强的免疫原性才能刺激机体产生免疫应答,但单纯由抗原组成的疫苗往往因其免疫原性弱而无法起到预防感染性疾病的作用,因此需要佐剂(adjuvant )来增强免疫反应。目前,铝佐剂是FDA 唯一批准用于人体的佐剂,虽然已经使用了80余年,却只能诱导Th2型免疫反应[1]。欧洲批准使用的MF59(水包油型乳剂)可同时引起Th1和Th2型免疫应答,但其会在注射部位引起不良反应[2]
。因此,开发新型的佐剂以克服现有佐剂的不足具有重要意义。许多多糖具有促进机体特异性免疫和非特异性免疫的作用,且具有低毒、安全等特点,可能成为理想的疫苗佐剂。本文综述了壳聚糖、菊糖、葡聚糖、脂多糖(lipopolysaccharide ,LPS )、中药多糖等作为免疫佐剂的研究,并对其作为佐剂的前景进行了展望。
1壳聚糖
壳聚糖(chitosan )是由几丁质N -脱乙酰化形成
的天然多聚糖。在酸性介质中,壳聚糖分子上的氨基以-NH 3+的形式存在,是唯一一种阳离子多糖,这一
特性使壳聚糖能够被制成微颗粒、纳米颗粒等剂型[3]
壳聚糖作为免疫佐剂的特性由NISHIMURA 等[4]在
1984年首次报道。在之后的30多年间,对壳聚糖进
行了大量研究。壳聚糖可通过TLR4促进树突状细胞(dendritic cells ,DC ),能上调CD80和CD86表达,但未能激活T 细胞产生相应的细胞因子[5],这表明单纯壳聚糖不能引起T 细胞相关免疫反应。而壳聚糖及其衍生物与抗原结合后,可弥补壳聚糖本身的免疫缺陷。研究表明壳聚糖包裹卵清蛋白(OVA )的纳米颗粒后可刺激主要组织相容性复合体(MHC )Ⅰ类分子的表达,显著上调共刺激因子CD40、CD80、CD86的表达,促进细胞因子IL -6、IL -12、MIP -1、TNF -α的分泌,并刺激CD4+和CD8+T 细胞的增殖[6-7]。壳聚糖颗粒已被证实可激活NLRP3炎症小体,该途径可促进中性粒细胞的募集和抗原提呈细胞(APC )的成熟,并可产生以IL -1β和IL -18等细胞因子分泌为特征的炎症环境[8]。也有
研究表明,壳聚糖可通过参与cGAS -STING 途径激
doi :10.3969/j.issn.1000-484X.2022.05.023
①本文受山东省科技重大专项(2015ZDJS04002)资助。
作者简介:姜红蕾,女,在读硕士,主要从事微生物与生化药学方面
的研究,E -mail :840094220@qq 。
通信作者及指导教师:王凤山,男,博士,教授,博士生导师,主要从
事生化与生物技术方面的研究,E -mail :fswang@sdu.edu 。
··638
姜红蕾等多糖作为免疫佐剂的研究进展第5期
活DC并促进Th1反应[9]。这表明壳聚糖能够通过多个途径刺激产生免疫应答。
近年来,壳聚糖在黏膜疫苗佐剂中也展现出了独特应用前景。壳聚糖由于其独特的阳离子特性,具良
好的黏膜黏附性,能延长抗原的滞留时间,并且能打开黏膜上皮细胞间的紧密连接,使抗原被黏膜APC识别引起一系列免疫应答[10]。将EV71肠病毒的衣壳蛋白VP1与壳聚糖混合,通过灌胃免疫小鼠后发现产生大量IgG抗体,诱导脾细胞产生高水平的Th1、Th2和Th3免疫反应,且在小肠道、阴道、粪便、呼吸道中检测出大量的VP1特异性IgA抗体,说明VP1与壳聚糖混合给药后可引起小鼠黏膜免疫应答[11]。将O-季铵化壳聚糖和硫酸化可德兰多糖制备形成纳米颗粒荷载OVA抗原,对小鼠滴鼻给药后,在其口腔和阴道黏膜部位中也均发现了OVA 特异性IgA的表达[12]。由壳聚糖(ChiSysTM)、单磷酰脂质(MPL)和诺如病毒VLP抗原制成的粉末喷雾疫苗(NV-VLP)已进行了Ⅰ期临床试验,其结果表明,在人体中NV-VLP具有良好的耐受性,无严重不良反应,并引起肠黏膜组织(诺如病毒的进入部位)分泌IgA[13]。
2菊糖
菊糖(inulin),又名菊粉,是一种的天然果糖聚合物,是植物体内的一种贮存多糖。菊糖主要存在
α、β、γ、δ4种构型。其中α、β构型在常温下溶解,而γ构型菊糖要达到37℃溶解。δ菊糖需要在40℃下才能溶解,但当其开始冷却后需要反复加热处理才可以重新转化为δ-菊糖。在1946年科学家就发现了可溶的菊糖,这些溶解性的菊糖不能激活补体或增强适应性免疫应答,表明菊糖的免疫作用与其颗粒的特定包装结构密切相关[14]。菊糖的γ和δ构型都具有免疫佐剂性质。其中,γ-菊糖能够使巨噬
细胞表面的C3片段沉积,从而导致T细胞活化,但γ-菊糖在消毒时结构和性质不稳定[15]。而δ构型具有很好的温度稳定性,其在伽马射线灭菌后结构无变化,还具有很好的免疫活性。目前δ-菊糖主要被制备成Advax TM作为免疫佐剂使用,Advax TM是由直径1~2µm的层状晶体圆形δ-菊糖微粒,这种特殊的微粒结构是Advax TM激活免疫系统的关键[16]。在研究中,证实了Advax TM对乙型肝炎病毒(HBV)、日本脑炎病毒、SARS冠状病毒、艾滋病毒(HIV)、呼吸道合胞病毒(RSV)、李斯特菌、杆菌等多种病原微生物有免疫佐剂作用。早期研究中,用Advax TM和乙
型肝炎表面抗原(HBsAg)联合免疫小鼠后发现,HBsAg特异性抗体滴度升高,能促进CD4+和CD8+T 细胞增殖和Th1、Th2和Th17细胞因子产生[17]。与明矾组相比用,Advax TM至少可节省4倍的抗原剂量。Advax TM用于流感疫苗中也能使免疫细胞增殖,使特异性抗体提高,且效果持久,在免疫后1年免疫作用仍然十分明显。由Advax TM为佐剂制成的乙肝疫苗和流感疫苗已经完成临床Ⅰ期试验,其结果表明Advax TM具有良好的耐受性,未发现安全性问题[18-19]。除了可以用于传统的免疫方式,Advax TM也可通过黏膜给药。TOMAR等[20]将Advax TM与灭活流感病毒混合制成喷雾剂,通过鼻内免疫后与未加佐剂组相比,能够引起更高的全身、黏膜和细胞免疫应答。肺内免疫时,Advax TM可增加肺内因子CXCR3、CD69和CD103的表达。因此,Advax TM是一种很好的潜在黏膜佐剂。
目前,尽管对Advax TM有大量研究,但Advax TM的免疫机制尚不明确。推测其主要作用机制是先激
活APC,与抗原结合,诱导与增强抗原呈递和抗原特异性相关的表型变化,包括使CD4+和CD8+T细胞增殖,以及抗原刺激的IFNγ、IL-4、IL-5、IL-6、IL-10、IL-13、IL-17和GM-CSF的表达上调。并且,不同于传统的佐剂明矾,Advax TM没有强烈的Th2或Th1偏倚。同时,Advax TM佐剂不能诱导巨噬细胞产生促炎细胞因子TNF-α和IL-1,不会诱导炎症小体活化[17]。其佐剂作用不依赖于抗原吸收,因为即使在抗原免疫前1d注射Advax TM,抗体反应也会增强。
3葡聚糖
葡聚糖可分为α-葡聚糖和β-葡聚糖。大多数葡聚糖来源于植物或微生物,种类繁多。具有佐剂活性的α-葡聚糖主要有右旋糖酐,β-葡聚糖主要有海带多糖、香菇多糖、酵母聚糖等。
3.1α-葡聚糖右旋糖酐(dextran)是由多个葡萄糖缩合而成的同聚多糖。右旋糖酐硫酸化后具有广泛的促炎作用,是一种有效的引起细胞介导的迟发型超敏反应的免疫佐剂[21]。二乙基氨基乙基(DEAE)-葡聚糖是右旋糖酐的衍生物,已被用作兽用佐剂。在另一项研究中发现,乙酰化葡聚糖(Ac-DEX)微粒可调节疫苗的释放和抗原的递送。CHEN等[22]将Ac-DEX微粒和OVA共同免疫小鼠后发现,Ac-DEX微粒作为佐剂可以诱导更强的IgG、IgG1和IgG2a水平,这可能是由于增强了细胞摄取和促进了细胞内的通路。此外,与铝佐剂组相比,
·
·639
中国免疫学杂志2022年第38卷
Ac-DEX微粒产生了更平衡的Th1/Th2应答。研究还表明,Ac-DEX微粒可通过调节抗原的释放从而改变到达最强免疫的时间。这为生产更加安全有效的疫苗佐剂提供了研究基础。
3.2β-葡聚糖β-葡聚糖主要来源于生物的细胞壁,如酵母、某些种类的海藻等。在研究中,β-葡聚糖没有明显的毒性或副作用。由于不同种类β-葡聚糖结构的差异,其免疫作用也存在差异。总的来说,β-葡聚糖可作为病原相关分子模式(PAMP)被免疫细胞表面的Toll样受体、dectin-1、CR3和CD5受体识别。β-葡聚糖和受体间的相互作用触发细胞内信号激活免疫相关分子的表达和调节免疫应答。从酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)细胞壁上获得的β-葡聚糖能激活巨噬细胞、单核细胞、DC,导致炎症,刺激分泌TNF-α、IL-8、活性氧自由基(ROS)和花生四烯酸等炎症因子[23]。有研究发现,dectin-1受体的激活同时活化了Toll样受体介导的NF-κB,dectin-1受体和Toll样受体协同介导细胞因子的产生[24]。还有研究表明,蘑菇多糖可降低OVA诱导的Th2免疫应答,增强Th1型免疫应答,从而表明其不仅能够激活固有免疫应答,也能激活适应性免疫应答[25]。将葡聚糖制备成微粒后作为抗原载体也能引起强免疫反应。DEEPE等[26]用葡聚糖微粒包裹荚膜组织胞浆菌的碱性提取物鼻腔免疫小鼠,发现肺和脾脏的菌落数明显下降,且肺内的IFN-γ、IL-17分泌增加,引起Th1和Th1
7T细胞免疫应答。为了引起更加强烈和平衡的免疫应答,LIU等[27]通过添加其他类型佐剂制成微粒来增强葡聚糖的佐剂性,调节免疫反应方向。近年来,进行了葡聚糖通过黏膜给药途径进行免疫的研究。例如,小鼠口服β-葡聚糖后,肠上皮内淋巴细胞数量增加,细胞因子IFN-γ分泌增加,迅速引起黏膜部位产生T细胞免疫应答[28]。在接触病原的早期,使黏膜部位快速产生免疫应答,防止组织感染的发生。
4LPS
LPS是革兰氏阴性菌外膜的一部分,一般占外膜的35%~45%。毫无疑问,LPS是天然免疫的诱导剂和增强剂。传统上,一般认为LPS能够被细胞上TLR4识别,激活MyD88(myeloid differentiation primary response gene88)和TIR(Toll/IL-1receptor)通路,诱导巨噬细胞活化和炎症细胞因子产生,使T 细胞的反应向Th1转移[29-30]。最近,有研究发现LPS 可触发caspase-11介导的非典型炎症小体[30-31]。而LPS无法作为人类佐剂使用主要是由于其能强烈激活MyD88通路,导致不必要的、潜在有害的炎症反应。从20世纪70年代开始,对LPS进行了大量的改造实验,并成功制备了毒性更低,免疫作用强的单磷酰脂质A(monophosphoryl lipid A,MPLA)。根据临床研究,MPLA是一种安全的佐剂[32-33]。MPLA是70多年来第1个被批准作为佐剂使用的TLR激动剂,也是第1个用于人类的新佐剂。MPLA在保留免疫刺激活性的同时降低毒性的主要原因之一是MyD88减少信号而TRIF(toll-interleukin1receptor domain-containing adapter inducing interferon-beta)途径保留信号[34]。
与MyD88相比,TRIF途径在允许TLR4激动剂介导的早期T细胞反应的刺激方面发挥更显著的作用。目前,由葛兰素史瑞克公司研制的AS01、AS02、AS04佐剂中都含有MPLA,已被批准用于疟疾疫苗、乙肝病毒疫苗、人乳头瘤病毒疫苗等多种疫苗中。表1为几种研究较多的多糖免疫作用及其作为佐剂的研究现状。
5中药多糖
除了以上所述的几类多糖以外,中药多糖也具有发展为佐剂的潜能。由于中药来源和种类广泛,中药多糖的种类也很繁多,每种中药多糖具有独特的免疫作用。总的来说,中药多糖可增强细胞因子的表达、CD4+和CD8+T细胞的活化以及NK细胞的活性,从而产生强大的免疫调节作用并促进人体的体液免疫功能。科学家们对黄芪多糖、当归多糖、枸杞多糖、茯苓多糖、牛膝多糖、板蓝根多糖等的佐剂作用进行了大量研究,免疫效果也各有不同。黄芪多糖增强网状内皮系统吞噬细胞的吞噬作用,促进淋巴细胞转化,激活T细胞和B细胞,并能促进抗体形成,从而发挥免疫调节作用,并且可以增强递呈口蹄疫病毒、禽流感病毒、乙肝病毒等多种抗原的免疫原性[36-37]。当归多糖作为新城疫病毒疫苗佐剂可提高血凝反应,在免疫后期提高抗体滴度[38]。枸杞多糖能显著增强机体神经内分泌免疫网络的调节功能[39]。枸杞多糖脂质体可诱导DCs的成熟,诱导其活化,促进抗原特异性体液免疫应答,导致Th1和Th2细胞因子水平升高。枸杞多糖脂质体还可促进TLR4、MyD88、TRAF6、NF-κB基因表达[40]。茯苓多糖作为流感疫苗佐剂免疫效果强烈。在攻毒实验中,茯苓多糖能提高小鼠流
感病毒的致死剂量,提高了灭活流感疫苗的免疫效果[41]。多种中药多糖可以合理配伍制备成复合成多糖佐剂配方
··640
姜红蕾等多糖作为免疫佐剂的研究进展第5期
(CPS),从而引起更加广泛且强大的免疫应答。何云富等[42]以对猪O型口蹄疫病毒(FMDV)灭活抗原具有佐剂效应的黄芪多糖、人参多糖、木蟞子多糖、茯苓多糖和云芝多糖5种多糖为佐剂成分制备成CPS,免疫后虽然CPS不能刺激抗体分泌,但能显著提高血清中IL-2、TNF-α、IFN-γ的分泌,进一步扩大Th1应答效应,使机体发挥更有力的细胞免疫。
6总结
作为佐剂,多糖无毒且副作用少。由于分子量相对较大、能与免疫细胞表面受体识别结合等特点,易作为抗原被多种免疫细胞识别,从而激发多种免疫机制。许多多糖还能够引起黏膜免疫应答,这为通过黏膜部位感染机体病原体疫苗的研究提供了新的策略和思路。多糖与其他免疫佐剂制成复合佐剂产生协同效应从而引发更加强烈全面免疫效果,也已逐步成为热点研究方向。由于多糖本身的多样化,每种多糖引起的免疫应答的机制并不清晰,需要进一步探索。且其生产质量控制也面临巨大挑战,需要制定更加详细严格的质量标准。这些将成为促进多糖疫苗佐剂的临床开发和商品化进程的关键。
参考文献:
[1]MBOW M L,DE GREGORIO E,VALIANTE N M,et al.New adjuvants for human vaccines[J].Curr Opin Immunol,2010,22
(3):411-416.DOI:10.i.2010.04.004.
[2]COFFMAN R L,SHER A,SEDER R A.Vaccine adjuvants:putting innate immunity to work[J].Immunity,2010,33(4):492-
503.DOI:10.i.2010.04.004.
[3]CHEUNG R C,NG T B,WONG J H,et al.Chitosan:an update on potential biomedical and pharmaceutical applications[J].Mar
Drugs,2015,13(8):5156-5186.DOI:10.3390/md13085156.
[4]NISHIMURA K,NISHIMURA S,NISHI N,et al.Immunological activity of chitin and its derivatives[J].Vaccine,1984,2(1):93-
99.DOI:10.1016/s0264-410x(98)90039-1.
[5]VILLIERS C,CHEVALLET M,DIEMER H,et al.From secre⁃tome analysis to immunology:chitosan induces major alterations
in the activation of dendritic cells via a TLR4-dependent mecha⁃
nism[J].Mol Cell Proteomics,2009,8(6):1252-1264.DOI:
10.1074/mcp.M800589-MCP200.
[6]KOPPOLU B,ZAHAROFF D A.The effect of antigen encapsula⁃tion in chitosan particles on uptake,activation and presentation
by antigen presenting cells[J].Biomaterials,2013,34(9):2359-
2369.DOI:10.1016/j.biomaterials.2012.11.066.
[7]LI P,WANG F.Polysaccharides:candidates of promising vaccine adjuvants[J].Drug Discov Ther,2015,9(2):88-93.DOI:10.
5582/ddt.2015.01025.
[8]BUETER C L,LEE C K,RATHINAM V A,et al.Chitosan but not chitin activates the inflammasome by a mechanism dependent
upon phagocytosis[J].J Biol Chem,2011,286(41):35447-
35455.DOI:10.1074/jbc.M111.274936.
[9]CARROLL E C,JIN L,MORI A,et al.The vaccine adjuvant chitosan promotes cellular immunity via DNA sensor cGAS-
STING-dependent induction of typeⅠinterferons[J].Immunity,2016,44(3):597-608.DOI:10.1016/j.immuni.2016.02.004.[10]YU M,YANG Y,ZHU C,et al.Advances in the transepithelial transport of nanoparticles[J].Drug Discov Today,2016,21(7):
1155-1161.DOI:10.1016/j.drudis.2016.05.007.
确定取消[11]ZHANG F,HAO C,ZHANG S,et al.Oral immunization with recombinant enterovirus71VP1formulated with chitosan
protects mice against lethal challenge[J].Virol J,2014,11:80.
DOI:10.1186/1743-422X-11-80.
[12]ZHANG S,HUANG S,LU L,et al.Curdlan sulfate-O-linked quaternized chitosan nanoparticles:potential adjuvants to improve
the immunogenicity of exogenous antigens via intranasal vaccina⁃
tion[J].Int J Nanomed,2018,13:2377-2394.DOI:10.2147/
IJN.S158536.
[13]KAMARY S S,PASETTI M F,MENDELMAN P M,et al.
贺育民
Adjuvanted intranasal Norwalk virus-like particle vaccine elicits
antibodies and antibody-secreting cells that express homing
表1多糖的免疫作用及其研究现状
Tab.1Immunity and research status of polysaccharides
Type of polysaccharides Chitosan and related substances
Inulin
β-glucan
MPLA
Immunological function
1.Activate APCs by TLR4,promote the proliferation of CD4+and CD8+T cells;
2.Produce high level of IgG,and can regulate the balance of Th1/Th2responses;
3.Increase the uptake of antigen and the level of IgA by mucosal administration.
1.Unable to induce macrophage activation to produce inflammasome and activate NF-κB;
2.Increases the numbers of DC,NK,CD4+and CD8+T cells and produces high levels of IgG;
3.No strong Th2or Th1biased immunity.
1.Activates macrophages,monocytes,DC by recognizing Toll-like receptors,dectin1,CR3
and CD5receptors;
2.Increases the level of IgG,reduces the expression of IgM and elicits Th1,Th2and Th17
immune responses.
1.Recognized by immune cells through the TLR4receptor;
2.Preferentially activates TRIF while decreasing MyD88pathway activation;
3.Produces an appropriate amount of pro-inflammatory factors,increases CD4+and CD8+T
cells,and elicits Th1immune responses.
Phase of the research
PhaseⅠ/Ⅱa clinical trial
(ViscoGel)[35]
PhaseⅠclinical trial
(ChiSysTM)
PhaseⅠ/Ⅱclinical trial
(Advax TM)
Preclinical study
Listed
中国免疫学杂志2022年第38卷
receptors for mucosal and peripheral lymphoid tissues[J].J
Infect Dis,2010,202(11):1649-1658.DOI:10.1086/657087.[14]MCDONALD E J.The polyfructosans and difructose anhydrides [J].Adv Carbohyd Chem,1946,2:253-277.DOI:10.1016/
S0096-5332(08)60013-2.
气浮垫
[15]KEREKES K,COOPER P D,PRECHL J,et al.Adjuvant effect of gamma-inulin is mediated
by C3fragments deposited on
antigen-presenting cells[J].J Leukocyte Biol,2001,69(1):69-
74.DOI:10.1189/jlb.69.1.69.
[16]PETROVSKY N,COOPER P D.Advax TM,a novel microcrystal⁃line polysaccharide particle engineered from delta inulin,
provides robust adjuvant potency together with tolerability and
safety[J].Vaccine,2015,33(44):5920-5926.DOI:10.1016/
j.vaccine.2015.09.030.
[17]SAADE F,HONDA-OKUBO Y,TREC S,et al.A novel hepatitis
B vaccine containing Advax TM,a polysaccharide adjuvant derived
from delta inulin,induces robust humoral and cellular immunity
with minimal reactogenicity in preclinical testing[J].Vaccine,
2013,31(15):1999-2007.DOI:10.1016/j.vaccine.2012.
12.077.
[18]GORDON D,KELLEY P,HEINZEL S,et al.Immunogenicity and safety of Advax TM,a novel polysaccharide adjuvant based on
delta inulin,when formulated with hepatitis B surface antigen:
a randomized controlled Phase1study[J].Vaccine,2014,32
(48):6469-6477.DOI:10.1016/j.vaccine.2014.09.034.[19]GORDON D L,SAJKOV D,HONDA-OKUBO Y,et al.Human Phase1trial of low-dose inactivated seasonal influenza vaccine
formulated with Advax TM delta inulin adjuvant[J].Vaccine,
2016,34(33):3780-3786.DOI:10.1016/j.vaccine.2016.
05.071.
[20]TOMAR J,PATIL H P,BRACHO G,et al.Advax augments B and T cell responses upon infl
uenza vaccination via the respiratory
tract and enables complete protection of mice against lethal
influenza virus challenge[J].J Control Release,2018,288:
199-211.DOI:10.1016/j.jconrel.2018.09.006.
[21]YOTSUYA S,SHIKAMA H,IMAMURA M.Efficacy of the inflammatory cell infiltration inhibitor IS-741on colitis induced
by dextran sulfate sodium in the rat[J].Jpn J Pharmacol,2001,
87(2):151-157.DOI:10.1254/jjp.87.151.
[22]CHEN N,JOHNSON M M,COLLIER M A,et al.Tunable degradation of acetalated dextran microparticles enables
controlled vaccine adjuvant and antigen delivery to modulate
adaptive immune responses[J].J Control Release,2018,273:
147-159.DOI:10.1016/j.jconrel.2018.01.027.
[23]WILLMENT J A,GORDON S,BROWN G D.Characterization of the human beta-glucan receptor and its alternatively spliced
isoforms[J].J Biol Chem,2001,276(47):43818-43823.DOI:
10.1074/jbc.M107715200.
[24]GANTNER B N,SIMMONS R M,CANAVERA S J,et al.
Collaborative induction of inflammatory responses by dectin-1
and Toll-like receptor2[J].J Exp Med,2003,197(9):1107-
1117.DOI:10.1084/jem.20021787.
[25]WU Y S,CHEN S,WANG W,et al.Oral administration of MBG to modulate immune responses and suppress OVA-sensi⁃
tized allergy in a murine model[J].Evid-Based Compl Alt,
2014,2014:567427.DOI:10.1155/2014/567427.
[26]DEEPE G S JR,BUESING W R,OSTROFF G R,et al.Vacci⁃nation with an alkaline extract of Histoplasma capsulatum pack⁃
aged in glucan particles confers protective immunity in mice[J].
Vaccine,2018,36(23):3359-3367.DOI:10.1016/j.vaccine.
2018.04.047.
[27]LIU H,JIA Z,YANG C,et al.Aluminum hydroxide colloid vaccine encapsulated in yeast shells with enhanced humoral and绞车滚筒
硒肥料cellular immune responses[J].Biomaterials,2018,167:32-43.
DOI:10.1016/j.biomaterials.2018.03.014.
[28]TSUKADA C,YOKOYAMA H,MIYAJI C,et al.Immunopo⁃tentiation of intraepithelial lymphocytes in the intestine by oral
administrations of beta-glucan[J].Cell Immunol,2003,221
(1):1-5.DOI:10.1016/s0008-8749(03)00061-3.
[29]MCALEER J P,VELLA A T.Understanding how lipopolysaccha⁃ride impacts CD4T-cell immunity[J].Crit Rev Immunol,2008,
28(4):281-299.DOI:10.1615/critrevimmunol.v28.i4.20.
[30]KAYAGAKI N,WONG M T,STOWE I B,et al.Noncanonical inflammasome activation by intracellular LPS independent of
TLR4[J].Science,2013,341(6151):1246-1249.DOI:10.
1126/science.1240248.
[31]SHI J,ZHAO Y,WANG Y,et al.Inflammatory caspases are innate immune receptors for intracellular LPS[J].Nature,2014,
514(7521):187-192.DOI:10.1038/nature13683.
[32]GARCON N,VAN MECHELEN M.Recent clinical experience with vaccines using MPL and QS-21-containing adjuvant systems
[J].Expert Rev Vaccines,2011,10(4):471-486.DOI:10.
1586/erv.11.29.
液体收集系统[33]ZUGHAIER S M,ZIMMER S M,DATTA A,et al.Differential induction of the toll-like receptor4-MyD88-dependent and inde⁃
pendent signaling pathways by endotoxins[J].Infect Immun,
2005,73(5):2940-2950.DOI:10.1128/IAI.73.5.2940-2950.
2005.
[34]MATA-HARO V,CEKIC C,MARTIN M,et al.The vaccine adjuvant monophosphoryl lipid A as a TRIF-biased agonist of
TLR4[J].Science,2007,316(5831):1628-1632.DOI:10.
1126/science.1138963.
[35]NEIMERT-ANDERSSON T,BINNMYR J,ENOKSSON M,et al.
Evaluation of safety and efficacy as an adjuvant for the chitosan-
based vaccine delivery vehicle ViscoGel in a single-blind
randomised PhaseⅠ/Ⅱa clinical trial[J].Vaccine,2014,32
(45):5967-5974.DOI:10.1016/j.vaccine.2014.08.057.[36]LI J F,ZHONG Y G,LI H R,et al.Enhancement of Astragalus polysaccharide on the immune responses in pigs inoculated with
foot-and-mouth disease virus vaccine[J].Int J Biol Macromol,
2011,49(3):362-368.DOI:10.1016/j.ijbiomac.2011.05.015.
[37]BOLHASSANI A,TALEBI S,ANVAR A.Endogenous and exogenous natural adjuvants for vaccine development[J].Mini
Rev Med Chem,2017,17(15):1442-1456.DOI:10.2174/
1389557517666170228115801.
[38]GU P F,XU S W,ZHOU S Z,et al.Optimization of angelica sinensis polysaccharide-loaded poly(lactic-co-glycolicacid)
nanoparticles by RSM and its immunological activity in vitro
[J].Int J Biol Macromol,2018,107:222-229.DOI:10.1016/j.
ijbiomac.2017.08.176.
[39]LIU Y M,WU F Y,FENG J T,et al.Biological activity of Lycium barbarum polysaccharide and its application in animal produc⁃
tion[J].Feed Res,2017,22:22-25.DOI:10.13557/jki.
issn1002-2813.2017.22.006.
[40]BO R,LIU Z,ZHANG J,et al.Mechanism of Lycium bar⁃barum polysaccharides liposomes on activating murine dendritic
cells[J].Carbohyd Polym,2019,205:540-549.DOI:10.1016/
j.carbpol.2018.10.057.
[41]LI S,WANG Y X,LI H X,et al.Poria total polysaccharide adjuvant effect on H1N1influenza vaccine and hepatitis B vac⁃
cine antigen[J].Chin J Pharmacol Toxicol,2015,29:60-64.[42]何云富,令世鑫,张邵博,等.复合多糖的佐剂效应研究[J].
甘肃畜牧兽医,2019,49(3):59-62.DOI:10.15979/jki.
cn62-1064/s.2019.03.022.
[收稿2020⁃03⁃18修回2021⁃07⁃08]
(编辑陈阳)邮发代号12-89半年价240.00元单价20.00元

本文发布于:2024-09-21 22:05:19,感谢您对本站的认可!

本文链接:https://www.17tex.com/tex/1/285241.html

版权声明:本站内容均来自互联网,仅供演示用,请勿用于商业和其他非法用途。如果侵犯了您的权益请与我们联系,我们将在24小时内删除。

标签:免疫   多糖   佐剂
留言与评论(共有 0 条评论)
   
验证码:
Copyright ©2019-2024 Comsenz Inc.Powered by © 易纺专利技术学习网 豫ICP备2022007602号 豫公网安备41160202000603 站长QQ:729038198 关于我们 投诉建议