成纤维细胞分离方法

成纤维细胞分离方法
胰酶消化法1
一、取得小鼠胚胎
1. 性成熟母小鼠与种公鼠按1公(♂):2母(♀)比例合笼。
2. 每天早上观察母小鼠阴道口。有乳白或蛋黄冻胶状物(阴道栓)即确定为怀孕。见栓当天上午定为怀孕的0.5d。
3. 取怀孕12.5~1
4.5 d母鼠,断颈处死,无菌条件下暴露子宫
4. 用镊子提起近子宫颈端,分离子宫系膜,剪断子宫角。
智能电位器5. 取出整个子宫,置于有PBS的平皿内。用PBS洗涤三次,弃除表面残余血迹。
6. 沿子宫系膜侧剪开子宫,取出带有胎膜的胚胎,置于另一盛有PBS的平皿内,充分洗涤,
弃除表面红细胞。
7. 用小镊子撕破胎膜,取出胎鼠,弃除胎膜,用PBS洗涤三次。
8. 去除胚胎头部、内脏和四肢,将躯干部置于另一盛有PBS的平皿内,用PBS 至少洗涤三次,充分弃除红细胞。
二、取得小鼠胚胎成纤维细胞(MEF)
1. 用无菌眼科小剪刀或刮胡刀片将鼠胚躯干剪(切)成1mm3以下的碎块,吸置于离心管内。
2. 加适量胰酶,将离心管置于培养箱中10-20分钟
3. 取出离心管,反复吹打,加足量培养液终止消化。
4. 离心1000转,5分钟。
5. 弃掉上清,加适量培养液,反复吹打20次。
6. 分装到T75中,一般每2个胚胎可以制成一个T75的原代细胞。
7. 置37℃、5%CO2、饱和湿度培养箱培养。
8. 待细胞长3-7天细胞互相重叠爬满整个培养瓶底时即可1:3-1:6传代。
9. 吸弃培养液上清。
10. PBS(不含钙镁)冲洗两次。
11. 加0.125%胰酶-0.02EDT消化。
眼模12. 在显微镜下观察,当少量细胞漂浮,贴壁的细胞层出现裂隙时,用移液管吹打冲洗瓶底5-6次。
圣诞灯
13. 即刻加MEF培养液终止消化。
14. 1000转,5分钟离心。吸弃上清。
15. 加足培养液,吹打制成单细胞悬液,分装到各T75中。完成传代。
16. 原代细胞中还有少量组织块未被充分消化,在以后的每次传代过程中要尽量制成单细
胞悬液,组织块会逐渐消失。
17. 原代细胞中混有一些杂细胞,一般传到第3代时,杂细胞逐渐减少。小鼠胚胎成纤维细胞为梭状;但连成片时,细胞互相交联,形态不典型。最多不超过六代。
三、MEF的冻存
1. 当细胞90%-100% 融合时,尤其细胞少量堆聚可冷冻。
2. 处理方法同二的9-14,每75 cm2的细胞加3 ml 冻存液重悬细胞。
3. 每个冻存管编号加1 ml细胞悬液。
4. 置入程序降温盒-80℃过夜,放入液氮长期保存。
四、灭活MEF制备饲养层细胞
1. 取新的培养瓶,加0.1% Gelatin溶液覆盖预处理30分钟,用前吸掉Gelatin 溶液。
2. 取需要处理的MEF细胞,以10ug/ml浓度加丝裂霉素(Mitomycin C)混匀。
3. 置培养箱中3小时。
4. 吸弃废液。
5. 用DPBS洗5遍。
气泵接头6. 处理方法同二11-14。
7. 处理过的MEF加适量培养液重悬计数,以3.0×104/ cm2(MEF)铺在Gelatin 处理过的培养瓶上
8. 置培养箱中静置过夜,使其贴壁。混凝土泊松比
9. 铺好的饲养层在1-7天内有效,都可以支持mES生长并维持其全能性
胰酶消化法2
一、实验材料准备
1. 动物
孕期14至16天的孕鼠(小鼠)。最佳时间为E13.5d.(细胞增值能力比较快)2. 试剂
无Ca2+和Mg2+的PBS(D-PBS)、0.125%胰酶、0.53 mmol/L EDTA溶液、MEF 生长培养基(高糖DMEM加15%FBS)
3. 器械
眼科直剪3把、眼科直镊3把、眼科弯镊2把、玻璃平皿3套、200目尼龙滤网、50 ml和15 ml离心管和手术刀片。以上物品均需要高压灭菌消毒处理。
二、具体操作
1. 处死孕鼠,全身置于75%酒精里浸泡,然后在超净台中用剪刀和镊子将孕鼠皮肤剪开,用另外一组剪刀、镊子剪开腹部肌层,露出子宫,最后用第三组剪刀和镊子将子宫小心取出放在盛有D-PBS的玻璃平皿中,冲洗去血。
2. 用两把弯镊子将胚胎外的胞膜小心去除,然后夹掉头和内脏,将其余胚胎转移到一个装有30 ml D-PBS的50 ml离心管中,轻轻颠倒两次,倒掉D-PBS,再重复此步骤一次,注意
要留少许D-PBS,然后将胚胎转移到另一装有D-PBS 的平皿中,并用手术刀片将其细细切碎。
3. 用200 μl的移液反复、快速地吹打平皿中的液体,转移至15 ml离心管中,于4℃1500 rpm离心5分钟,倒掉上清,以10 ml胰酶重悬沉淀,放在37℃水浴中消化30分钟,且每隔五分钟轻轻晃动,使之充分消化。
4. 将上层细胞悬液倒入一个装有10 ml MEF生长培养基的50 ml离心管中,用200目的尼龙网过滤后,以1 500 rpm离心5分钟收集细胞,再用30 ml MEF 生长培养基洗涤两次。
5. 细胞沉淀用15 ml MEF生长培养基重悬后进行细胞计数(一般8只14天的胎鼠可获得2-3×107细胞)。
6. 3×106细胞悬浮于15 ml MEF生长培养基中,接种到200 ml培养瓶中。
7. 24小时后更换新鲜的MEF生长培养基。
8. 细胞长满后,先用D-PBS冲洗,倒掉后加胰酶消化(此步时间不宜过长,作者一般不超过五分钟),按1:5传代。
9. 细胞再次长到覆盖率80-90%左右,将其消化后,常规冻存(冻存液要现配)。
注意事项:paas系统
1. 原代培养,一定要避免污染。
2. MEF生存能力有限,如果不冻存,体外存活十代左右。
3.冻存后复苏的细胞只能传代一次,因为这些细胞繁殖能力有限。
4. 消化细胞时间不要过长

本文发布于:2024-09-22 01:41:05,感谢您对本站的认可!

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